ПОИСК Статьи Рисунки Таблицы Биотестирование относительно водорослей из "Экологическая пронрамма аква-лайф Выпуск 3" Растворенные в воде токсичные вещества влияют на скорость роста пресноводных водорослей. Стандартный метод определения этого влияния установлен ИСО 8692. [c.431] Сущность метода заключается в том, что штаммы одного вида водорослей культивируют на протяжении нескольких поколений в среде с загрязняющимивеществами. [c.431] Ингибирование роста водорослей измеряют относительно темпа роста контрольных культур. [c.431] используемая для приготовления питательной среды, должна быть деионизированной и не должна содержать следов меди. [c.431] Питательные растворы, приготовленные согласно табл. 11.2. Указанные растворы стерилизуют мембранной фильтрацией или автоклавированием при 120 С в течение 15 мин (кроме раствора 4, который стерилизуют только мембранной фильтрацией). Растворы хранят в темноте при 4 С. [c.431] Прибор для измерения плотности клеток водорослей (микроскоп со счетной камерой, нефелометр и т.п.). [c.431] Прибор для мембранной фильтрации. [c.431] Камера или помещение с регулируемой температурой. [c.431] Концентрат хштательных веществ готовят добавлением к 100 мл исходного раствора 1 10 мл раствора 2, 10 мл раствора 3 и 10 мл раствора 4, затем доводят до 1 л водой. [c.432] Раствор готовят каждый раз заново, перед использованием оставляют на ночь в контакте с воздухом или барботируют чистым воздухом в течение 30 мин. pH раствора должен быть 8,3 0,2. [c.432] Смешивают одну часть по объему концентрата питательных веществ с восьмью частями воды. Затем добавляют достаточное количество клеток из исходной культуры водорослей так, чтобы при доведении обьема до 10 частей разбавлением водой, плотность клеток составила порядка 10 клеток на миллилитр. [c.432] Если возможно, концентрации выбирают таким образом, чтобы получить несколько (4—5) уровней эффекта в диапазоне от 10% до 90% ингибирования роста. [c.433] Подходящий диапазон концентрации лучше всего определить, выполнив предварительное испытание на выявление диапазона, охватывающее несколько порядков абсолютных величин разницы в исследуемых концентрациях. [c.433] Регулирование водородного показателя не должно вызывать химической реакции с веществом, подлежащим исследованию (например, выпадение осадка, комплексообразование), и не должно существенно изменять концентрацию раствора исследуемого вещества. [c.433] Исследуемые растворы готовят смешиванием соответствующих объемов исходных растворов исследуемого вещества, воды, концентрата питательных веществ и инокулума в сосудах для испытания. [c.433] Количество инокулума, добавленного во все сосуды, должно быть достаточным, чтобы дать исходную плотность клеток в исследуемых растворах 10 клеток на миллилитр. [c.433] В контрольные сосуды следует добавить только воду, концентрат питательных веществ и инокулум без исследуемого вещества. Затем приготавливают по три репликата каждой концентрации исследуемого вещества и шесть идентичных контрольных сосудов. Измеряют водородный показатель пробы исследуемых растворов при каждой концентрации и контрольной группы. [c.433] Примечание — Важно отметить, что метод измерения, в особенности тип датчика, будет влиять на измеренное значение. Сферические датчики (которые реагируют на свет под всеми углами выше и ниже плоскости измерения) и косинусные датчики (которые реагируют на свет под всеми углами выше плоскости измерения) предпочтительнее однонаправленных датчиков и будут давать более. высокие показания для многоточечного источника света, описываемого ниже типа. [c.434] Оговоренную выше интенсивность можно было бы получить, используя флуоресцентные лампы мощностью от 4 до 7,3 Вт с цветовой температурой 4300 К при расстоянии приблизительно 0,35 м от среды с культурой водорослей. [c.434] Вернуться к основной статье