Цианогенбромид NBr

А прибавляют 0,5 мл воды, в пробирки Б и В — по 0,5 мл цианогенбромида. После прибавления их оставляют на 5 минут, а затем охлаждают и приливают по 5 мл насыщенного р-аминофенола к каждой. Пробирки перевертывают для смешения и убирают в темный шкаф на 1 час, после чего колориметрируют. Если есть спектрофотометр, то пользуются длиной волны 400 тц, в фотоколориметре — фильтрами с максимальным пропусканием возможно близким к этой длине волны. [c.409]

Определяют поглощение света в холостом опыте (фильтрат крови + вода, пробирка А), затем в анализе (фильтрат крови -f цианогенбромид, пробирка Б) и, наконец,— в анализе с добавлением 4 цг никотиновой кислоты (пробирка В). Разность двух последних определений покажет, какое поглощение соответствует 4 рг никотиновой кислоты в данном объекте. Делением на 4 получают поглощение, отвечающее 1 рг никотиновой кислоты. Вычитают поглощение в холостом опыте из поглощения в анализе. Разность соответствует поглощению содержащейся в анализе никотиновой кислоты, и если разделить эту величину на поглощение, соответствующее 1 рг никотиновой кислоты, то получим содержание никотиновой кислоты в данной пробе в гаммах. Так как проба содержала фильтрат от 1 мл крови, то умножением на 100 получаем содержание никотиновой кислоты в рг в 100 мл, а делением этой величины на 1000— содержание ее в мг%. [c.409]

Реакция с конканавалином А, связанным с агарозой, активированной цианогенбромидом [c.82]

Эта система непрерывно совершенствуется. Так, найдено, что эффективными носителями могут служить Сефароза, активированная цианогенбромидом [11], и найлон-6 [43]. В данной системе иммобилизовано около 25 различных ферментов, причем практически без потери активности как самого фермента, так и испускающих свет компонентов. Используя проточную систему, можно определять NAD(P)H на уровне 6 фмоль. [c.492]

Специальное исследование этих вопросов было проведено в опытах на клетках лимфоузлов иммунизированного кролика (Fleis hman, 1967) и миеломных клетках мыши (Knopf е. а., 1967), меченных пульсовой аминокислотной меткой. Через различные сроки инкубации клеток с Н-лейцином из них выделяли Н-цепи, расщепляли на фрагменты (цианогенбромидом в случае иммуноглобулина кролика или папаином в случае миеломного иммуноглобулина) и определяли отношение радиоактивности этих фрагментов. Было показано, что соотношение радиоактивности ЫНг-концевого фрагмента (Fd) и СООН-концевого фрагмента (Рс), относительно низкое при 1—2-минутной метке, возрастает до 80% при 8-минутной. Аналогичные результаты были получены и при сопоставлении активностей NHz- и СООН-концевых пептидов Н-цепей кролика (рис. 21). Обнаруженное распределение пульсовой метки в [c.71]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология