Фиксированные препараты для световой микроскопии

Препарат—мазок предварительно просматривают под микроскопом. Споры сильно преломляют свет, однообразы по величине и по форме. Они имеют круглую или эллипсовидную форму телец внутри клеток. Мазок высушивают на воздухе и фиксируют спиртом. [c.71]

Для того чтобы рассмотреть характер хлопка активного ила и локализацию в нем организмов, применяют микрофотографирование. Перед фотографированием подвижные простейшие организмы активного ила лучше всего фиксировать парами осмиевой кислоты. Микрофотографическая установка представляет собой фотоаппарат, у которого роль объектива выполняет оптическая система микроскопа. При отсутствии специальной микрофотонасадки можно фотографировать препараты обычным фотоаппаратом. Большинство фотоаппаратов можно приспособить для микрофотографирования. Для работы с 35-мм пленкой можно применять малоформатные зеркальные камеры типа Зенит и Pra ti a. Соединение микроскопа с фотокамерой должно быть подвижным и в то же время светоне проницаемым. Для черно-белого микрофотографирования пригодны ахроматические объективы микроскопа. Для цветной фотографии применяют апохроматы. Но лучшие результаты дают специальные фотографические окуляры. В качестве источника света чаще всего применяют осветитель марки ОИ-20. Для получения наиболее контрастного изображения окрашенного препарата между источником света и микроскопом ставят светофильтры. Призматическая микрофотонасадка МФН-1 в сочетании с камерой МФН-2 (9X12 см) наиболее удобна при микрофотографировании активного ила в лабораторных условиях. Фокус устанавливают визуальным боковым тубусом, снабженным призмой, которая постоянно включена, кроме периода экспозиции. На резкость наводят по сетке визуального тубуса. [c.204]

Брюшко шмеля разрезали сверху по средней линии, вскрывали, оттягивали иголками края разреза, затем фиксировали и проводили цветную реакцию на железо при помощи ферроцианида калия. Как и у Apis (см. Kuterba h et al., 1982), у шмеля наблюдалось интенсивное окрашивание клеточных слоев, окружающих каждый брюшной сегмент. Однако в отличие от Apis у шмеля интенсивно развиты жировые клетки, вследствие чего голубая окраска эноцитов менее заметна. И все же, если удалить слой этих клеток и посмотреть препарат в световом микроскопе, голубое окрашивание становится хорошо различимым. После окращивания на железо фиксированных и заключенных в гликол-метакрилат срезов брюшных сегментов выявляются клетки, содержащие железо (рис. 7.1). На срезе на рис. 7.1 под кутикулой видна группа клеток с плотным зернистым материалом, который при просмотре в проходящем свете кажется голубым. При большем увеличении (рис. 7.2) гранулярная природа окрашенного материала становится еще очевиднее можно заметить также, что окрашены не все клетки. Следует указать, что данный участок был специально выбран для демонстрации позитивного окращивания клеток и что на других участках срезов окрашенных клеток было меньше. Гранулы распределены внутри клеток, по-видимому, более или менее равномерно, и при данном увеличении не удается заметить их связи с какой-либо определенной структурой. [c.254]

Для серологической характеристики, чтобы проверить микроколонии прямо на мембранах, можно использовать препараты флюоресцирующих антител [31]. После того как колонии проросли, они фиксируются формальдегидом, обрабатываются препаратом флюоресцирующих антител и проверяются на флюоресцентном микроскопе. Уже после нескольких часов инкубации образуются столь большие микроколонин, что их можно обнаружить с помощью флюоресценции. Этот метод позволяет проверить также полностью развившиеся колонии с помощью микроскопа для препарировальных работ с соответствующими источниками света и светофильтрами. [c.251]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология