Уранилацетат в электронной микроскопии

Иммунная электронная микроскопия. ИЭМ позволяет обнаружить специфически связанные с антителами вирусные частицы. Преимуществом этого метода является одновременная концентрация вируса и его идентификация с помощью специфической сыворотки. Предложенные модификации ИЭМ предусматривают обработку вирусосодержащего материала антисывороткой в высоком титре, добавление к осадку фосфорно-вольфрамовой кислоты или уранилацетата с последующим нанесением на пленку (подложку) и высушиванием. При электронной микроскопии видны скопления вирусных частиц. [c.276]

Вторым способом является негативное контрастирование. В данном случае образец помещается в контрастирующий раствор, содержащий тяжелые атомы, например в раствор уранилацетата. Рассеивающие тяжелые атомы заполняют все пространство вокруг нерассеивающей макромолекулы, и поэтому на их фоне становится возможным наблюдение макромолекулы в электронном микроскопе (рис. 10.1, Б). К сожалению, это наблюдение нельзя назвать прямым, так как реально получают изображение не самой макромолекулы, а всей той рассеивающей области, где ее нет. [c.178]

Тонкие срезы располагают на необработанных сеточках для электронной микроскопии и через 24 ч окрашивают 5 мин,, помещая сеточки препаратами вниз в каплю насыщенного раствора уранилацетата в метаноле. [c.147]

Каждый акт заключительной фиксации, когда образец в течение пары часов находится в четырехокиси осмия, повышает содержание тял<елого металла в образце. Как указывалось ранее, полезно также разделить на блоки окрашенные образцы после фиксации солями таких тяжелых металлов, как свинец, висмут, уран и т. д. Свойства блоков тканей или больших образцов, оказывающие влияние на формирование изображения, улучшаются, если поместить эти блоки или образцы на 2 ч в свежеприготовленный насыщенный раствор уранилацетата при комнатной температуре. Перед обезвоживанием блоки тщательно промываются в дистиллированной воде и могут быть использованы как для просвечивающей, так и растровой электронной микроскопии. [c.256]

Чтобы обеспечить надлежащий контраст для наблюдения частиц под электронным микроскопом, выделенные 70S рибосомы наносятся на ультратонкую углеродную пленку пленка с прилипшими частицами обрабатывается раствором уранилацетата и высушивается на воздухе. Уранилацетат обволакивает частицы и заполняет полости и щели. Являясь менее электронноплотным материалом, чем уранилацетат, рибосомные частицы оказываются негативно контрасти-рованными на фоне уранилацетата. Стрелки указывают на палочкообразный стержень L7 / L12, описанный в тексте [c.62]

При приближении к молекулярным размерам наблюдения в электронном микроскопе становятся все более трудными. С ростом увеличения в микроскопе контуры фибриллярных элементов становятся расплывчатыми из-за фонового рассеяния. Для наблюдения в ярком поле необходимо использовать затенение негатива нанесением затеняющих соединений между фибриллярными элементами или около их контуров. Поэтому на разрешение единичных фибрилл влияют размеры пространства между фибриллами и зерен затеняющих соедннений. Размер внутрифибриллярных пространств в клеточной стенке во влажном состоянии составляет от 1,2 до 5 нм, а в сухом состоянии около 1 нм [146, 192]. Самые мелкие зерна затеняющих соединений (уранилацетата, нитрата тория) имеют диаметр 0,6—1 нм [43]. Они способны проникать во внутри-фибриллярные пространства, но ограничивают разрешающую способность значением примерно 1 нм. [c.80]

Вопрос — как разглядеть молекулу — может получить однозначный ответ еще до того, как эта книга выйдет из печати. Ответ будет таков молекулу можно разглядеть под электронным микроскопом. Уже существуют приборы с разрешающей способностью 0,2—0,3 нм, способные фотографировать атомы тяжелее серы. Подобная фотография позволяет однозначно решить вопрос о структурной формуле вещества, образующегося при введении двух атомов иода в молекулу 3,5-диацетиламинобензойной кислоты. Очевидно, что из двух вариантов формулы его соли с катионом уранилацетата [c.371]

Фотография получена в электронном микроскопе после обработки поверхности хлорсульфоновой кислотой и ее окраски уранилацетатом. Неокрашенные (яркие) пятна представляют собой поперечные сечения первичных фибрилл, рост которых обусловлен воздействием потока. Основные [c.255]

Обычно авторадиограммы изучают с помощью обычного микроскопа. Люсьен Каро и Роберт ван Тюберген разработали метод, позволяющий использовать электронный микроскоп с высоким разрешением. Для этого необходимо применять очень тонкий слой эмульсии, который бы не препятствовал наблюдению образца в электронный микроскоп. Тонкий срез ткани или клетку, заделанную в пластмассу и адсорбированную на решетке для электронного микроскопа, погружали в эмульсию, разбавленную настолько, чтобы наносился только монослой кристаллов галогенида серебра. При этом использовали очень мелкие (<0,1 мкм) кристаллы. После экспонирования и проявления срез ткани окрашивали уранилацетатом и изучали с помощью электронного микроскопа (рис. 6-12). Такой метод позволяет получить разрешение до 0,1 мкм. До сих пор метод использовали редко, но он явно заслуживает большего внимания. [c.149]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология