Сальмонеллы паратифов

На 4-й день исследования учитывают изменения сред пестрого ряда (см. табл. 2.10). Возбудители сальмонеллеза так же, как сальмонеллы паратифа В, не ферментируют лактозу и сахарозу, расщепляют глюкозу, маннит и мальтозу с образованием кислоты и газа, не образуют индола и (за небольшим исключением) выделяют сероводород (см. цв. вклейку, рис. 8, г). [c.152]

Наиболее ранним и надежным методом бактериологической диагностики является выделение возбудителей из крови гемокультура). Сальмонеллы брюшного тифа и паратифов содержатся в крови в течение всего лихорадочного периода и даже в первые дни нормальной температуры (особенно при брюшном тифе у вакцинированных). В ранние сроки от начала заболевания интенсивность бактериемии выше, чем в конце лихорадочного периода, поэтому для проведения исследования в начале болезни необходимо 10 мл крови, а в более поздние сроки — 15 — 20 мл. [c.146]

Исследование воды на присутствие брюшнотифозного (паратифозного) фага обычно применяется в тех случаях, когда обнаружить бактерии не удается. Сточную воду пропускают через бактериальный фильтр. В стерильную чашку Петри вносят 1 —2 мл исследуемого фильтрата, наливают 15 — 20 мл охлажденного до 45 °С МПА и тщательно перемешивают. После застывания агара сеют секторами культуры сальмонелл брюшного тифа, паратифов А и В. Наличие негативных колоний подтверждает присутствие соответствующего фага. [c.151]

Группа сальмонелл, к числу которых относятся возбудители тифа и паратифа. [c.181]

На 2-й день отмечают появление бесцветных (лактозоотрицательных) колоний на средах Плоскирева, МакКонки или Эндо, а также черных колоний на висмутсульфит-агаре (сальмонеллы паратифа А не образуют сероводород и поэтому их колонии имеют зеленый цвет). После изучения морфологии колонии пересевают на полиуглеводную среду. При отсутствии типичных колоний на те же среды засевают материал со среды обогащения. [c.148]

Биологическое исследование. Возбудители сальмонеллеза в отличие от сальмонелл паратифа й патогенны для белых мышей. Этот признак используется для их дифференциации. В первый день исследования наряду с посевом патологического материала и пищевых продуктов производится пероральное заражение белых мышей. Через 1 — 2 сут мыши погибают от септицемии. При вскры- [c.152]

Экспериментальные исследования показали большую резистентность кишечной палочки по сравнению с патогенными микроорганизмами. Так, С. С. Спасский (1959) выявил, что коли-индекс, равный 3, может служить надежным показателем эффективного обеззараживания водопроводной воды хлором при заражении ее возбудителями бруцеллеза. А. Л. Сегельман (1954) обнаружила, что резистентность к хлору кишечной палочки значительно выше, чем лептоспир. Сравнительное изучение озоно-устойчивости показало, что она понижается в ряду кишечной палочки, сальмонеллы Бреслау и Гертнера, сальмонеллы паратифа В. Кишечная палочка может быть использована в качестве показателя эффективности обеззараживания воды озоном от этих возбудителей (К. К. Врочинский, 1963). Коли-индекс, равный 3, дает опреде- [c.11]

Внешние проявления РА зависят от вида АГ и величины клеток. У бактерий взаимодействие соматических АГ (0-АГ) со специфическими АТ происходит медленно и через 18 — 20 ч образуется мелкозернистый осадок. При встряхивании мелкие зерна аг-глютината не разбиваются. Подобная агглютинация наблюдается у возбудителей туляремии, бруцеллеза и др. Наличие жгутикового Я-АГ (сальмонеллы брюшного тифа, паратифов) обусловливает быстрое появление агглютинации. Через 2 —4 ч образуются легко разбивающиеся крупные рыхлые хлопья (рис. 1.22). [c.60]

Брюшной тиф и паратиф (тифоподобный сальмонеллез) вызываются представителями рода сальмонелла — Salmonella typhi и S. paratyphi соответственно. Симптомы у этих заболеваний сходны, но паратиф обычно протекает легче. [c.219]

Брюшной тиф и паратифы вызываются бактериями рода Salmonella, которые по антигенной структуре относятся к серо-группам D, А и В. Микробиологическая диагностика тифо-пара-тифозных заболеваний проводится на основании бактериологического и серологического исследований. Бактериоскопия первичного материала не применяется, так как в мазках из испражнений невозможно отличить сальмонеллы от кишечной палочки, а в другом материале (кровь, желчь) возбудителей слишком мало, чтобы их можно было обнаружить при микроскопии мазков. Исходя из особенностей патогенеза брюшного тифа, на 1-й неделе заболевания, в период бактериемии, возбудителей выделяют из крови (получение гемокультуры), со 2-й недели заболевания — из испражнений (получение копрокультуры), мочи или желчи. Антитела в сьшоротке накапливаются при брюшном тифе в конце 1-й недели заболевания. [c.181]

Первичный посев и выделение сальмонелл из кишечного содержимого. Бактериологическое исследование испражнений ведут по методике, обеспечивающей возможность выделения любого представителя патогенных кишечных бактерий, которые могут содержаться в исследуемом материале патогенные эшерихии, сальмонеллы, шигеллы. Из этих соображений посев материала производят параллельно на несколько сред, каждая из которых способствует преимущественному выделению того или иного возбудителя. Для выделения сальмонелл, в том числе бактерий брюшного тифа, паратифов, исследуемый материал высевают на дифференциально-диагностические среды висмут-сульфитный агар, среду Плоскирева и на среды обогащения—селенитовую среду накопления Лейерсона (рец. 74) или па магниевую среду <кМ (рец. 75). Наряду с перечисленными выше средами обогащения можно применять также жидкую среду Мюллера (рец. 72) и Кауфмана (рец. 73). При посеве в среды обогащения соотношение между за-севаемы.м материалом и питательной средой должно оставаться постоянным, равным 1 5. [c.213]

Ферментативная активность. Биохимическая активность сальмонелл достаточно высока, но они обладают меньшим набором ферментов, чем Е. oli, в частности не сбраживают лактозу. S. typhi менее активна, чем возбудители паратифов она ферментирует ряд углеводов без образования газа. [c.202]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология