Дифференциально-диагностические среды

Культивирование. Сальмонеллы — факультативные анаэробы. Они неприхотливы и растут без всяких особенностей на простых питательных средах при температуре 37 С и pH среды 7,2— 7,4. Элективной средой является, например, желчный бульон. При диагностике брюшного тифа, как и других кишечных инфекций, используют дифференциально-диагностические среды Эндо, Левина, висмут-сульфитный агар и др. [c.202]

Для выявления ферментов, расщепляющих углеводы, используют дифференциально-диагностические среды Гисса. При ферментации бактериями углеводов с образованием кислоты цвет среды меняется за счет находящегося в ней индикатора, что создает впечатление пестроты ( пестрый ряд). В зависимости от изучаемого рода и вида бактерий подбирают среды с соответствующими моно- и дисахарами (глюкоза, лактоза, мальтоза, сахароза и др.), полисахаридами (крахмал, гликоген, инулин и др.), высшими спиртами (глицерин, маннит и др.), в процессе ферментации которых образуются альдегиды, кислоты и газообразные продукты (СОз, Н2, СН4). [c.33]

Посев на дифференциально-диагностическую среду [c.53]

Культивирование. Кишечная палочка — факультативный анаэроб не требовательна к питательным средам, хорошо растет на простых питательных средах при температуре 37 и pH среды 7,2—7,4, вызывая диффузное помутнение жидкой среды и образуя обычные колонии на плотных средах. Для диагностики эшерихиозов широко используют дифференциально-диагностические среды Эндо, Левина и др. [c.197]

Биохимические признаки бактерий определяются набором конститутивных и индуцибельных ферментов, присущих определенному роду, виду, варианту. В бактериологической практике таксономическое значение имеют чаще всего сахаролитические и протеолитические признаки бактерий, которые определяют на дифференциально-диагностических средах. [c.48]

Для обнаружения патогенных бактерий максимальные объемы воды пропускают через мембранные фильтры, которые затем помешают в жидкие элективные среды или на поверхность плотных дифференциально-диагностических сред. [c.89]

Оставшийся от посева материал, являющийся питательной средой, благоприятной для бактерий, ставят в термостат вместе с посевами. В течение 10 дней из него производят высевы на плотные дифференциально-диагностические среды. [c.213]

Второй день исследования. 1. Просматривают посевы, сделанные на дифференциально-диагностических средах, простым глазом и через лупу (Х5 или Х10), чтобы не пропустить мелкие колонии. Если через 24 ч после произведенного посева на висмут-сульфитной среде роста колоний, характерных для сальмонелл, не видно, чашки оставляют в термостате еще на сутки. [c.214]

Дифференциально-диагностические среды обычно являются плотными, реже полужидкими в своем составе они имеют несколько ферментируемых субстратов и индикаторных систем, что позволяет использовать их не только для накопления чистой культуры в процессе ее выделения (см. ниже), но и одновременно проводить первичную идентификацию культуры по ряду фенотипических признаков. Так, на трехсахарном железосодержащем агаре можно определить способность культуры к продукции сероводорода, ферментацию глюкозы (до кислоты или кислоты и газа), лактозы, сахарозы (см. цв. вклейку, рис. 8), [c.28]

Различные представители бактерий рода сальмонелл на плотных дифференциально-диагностических средах образуют колонии с признаками, описанными в табл. 32. [c.214]

Дифференциально-диагностические среды позволяют различать бактерии по их росту, биохимической активности и другим признакам. В состав этих сред, кроме питательных веществ, обычно включают субстрат, по отношению к которому дифференцируются бактерии, и индикатор. В результате культивирования микробы, ферментирующие субстрат, способствуют накоплению продуктов расщепления, сдвигу pH, редокс-потенциала среды, что сопровождается окрашиванием среды и собственных колоний в цвет индикатора (см. цв. вклейку, рис. 7). [c.28]

Биохимические свойства большого количества культур аэробных и анаэробных бактерий нередко изучают с применением специальных микротестсистем и микробиологических анализаторов. Как правило, для этого используют полистироловые пластины с изолированными лунками, содержащими высушенные дифференциально-диагностические среды. При внесении небольшого количества стандартизованной суспензии испытуемой чистой культуры среда в лунках восстанавливается, а при последующем инкубировании в термостате культура вырастает в лунках, проявляя свои характерные изменения на соответствующих средах (см. цв. вклей- [c.34]

Рассмотрим негативное влияние микроорганизмов на здоровье человека, животных и растений. Необходимо иметь в виду, что развитие болезни — это обоюдный процесс, в котором не последнюю роль Ифает подвергшийся инфицированию макроорганизм. Болезнетворные микроорганизмы имеются среди вирусов, бактерий, грибов и простейших. Определение инфекционного агента проводится, как правило, по стандартной схеме с использованием дифференциально-диагностических сред и биохимических тестов. В настоящее время эта идентификация упрощена, так как разработаны тест-наборы для экспресс-методов, а также выпускаются готовые индикаторные среды. [c.307]

Дифференциально-диагностические питательные среды применяются для разграничения отдельных видов (или групп) микроорганизмов. Принцип построения дифференциально-диагностических сред основан на том, что разные виды бактерий различаются между собой по биохимической активности и имеют неодинаковый набор ферментов, расщепляющих субстраты, входящие в состав питательной среды. В состав дифференциально-диагностической среды входят следующие основные компоненты а) основная питательная среда, обеспечивающая размножение бактерий б) определенный химический субстрат (например, лактоза), различное отношение к которому является диагностическим признаком для данного микроба в) цветной индикатор (например, индикатор Андреде), изменение цвета которого свидетельствует о биохимической реакции и наличии данной ферментной системы у исследуемого микроорганизма. Дифференциально-диагностические среды широко используются в лабораторных микробиологических диагностических исследованиях для дифференциации и идентификации бактерий. [c.44]

Дифференциально-диагностические среды. Среды Г и с-са. К 1% пептонной воде добавляют 0,5% определенного углевода (глюкоза, лактоза, мальтоза, маннит и дрЛ и индикатор Андреде (кислый фуксин в 1 н. растворе КаОН) разливают по пробиркам, в которые помещают поплавок (трубка длиной около 3 см, один конец которой запаян) для улавливания газообразных продуктов, образующихся при разложении углеводов. Стерилизацию проводят текучим паром или паром под давлением 0,5 атм поплавок при этом заполняется питательной средой. Среда при pH 7,2—7,4 бесцветна. При разложении углеводов приобретают красный цвет. [c.46]

Для выделения культуры бактерий Е. oli исследуемый материал засевают на одну из дифференциально-диагностических сред (например, среду Эндо, на которой кишечная палочка образует красные колонии). Дальнейшая идентификация выделенной чистой культуры с определением серовара описана на с. 178). [c.143]

Получение копрокультуры. Испражнения засевают на одну из дифференциально-диагностических сред (Эндо или Левина). Для посева петлю кала вносят в пробирку с изотоническим раствором хлорида натрия и готовят суспензию. После оседания крупных комочков петлю тонкой суспензии наносят на поверхность агаровой среды — на одну половину чашки. Материал тщательно растирают щпателем по одной, а затем по другой половине чашки для получения изолированных колоний. Посевы инкубируют при ЗТС в течение 18—20 ч. Одновременно испражнения засевают на среду обогащения Мюллера или селенитовую среду. На этих средах удается получить рост возбудителя даже в том случае, когда он содержится в исследуемом материале в незначительном количестве. Посевы инкубируют при 37°С в течение 18—20 ч. [c.185]

Бактериологическое исследование. Описать характер колоний, выросши] на чашках с дифференциально-диагностической средой после посева испраж нений больного и остатков пищи — возможных источников пищевой токсикоин фекции. [c.194]

В состав дифференциально-диагностических сред, предназначенных для выявления сахаролитических и окислительно-восстановительных ферментов, вводят индикаторы нейтральную красную, метиленовый синий, лакмусовую настойку, кислый фуксин, бромтимоловый синий, водный голубой краситель и розоловую кислоту (ВР). Изменяя свою окраску при различных значениях pH, индикатор указывает на наличие или отсутствие расщепления, окисления или восстановления введенного в среду ингредиента. Однако индикатор не является обязательной составной частью сред, предназначенных для выявления ферментов. Так, наличие желатиназы и других протеолитических ферментов в культуре определяют по разжижению желатина, свернутого яичного или сывороточного белка. [c.37]

Первичный посев и выделение сальмонелл из кишечного содержимого. Бактериологическое исследование испражнений ведут по методике, обеспечивающей возможность выделения любого представителя патогенных кишечных бактерий, которые могут содержаться в исследуемом материале патогенные эшерихии, сальмонеллы, шигеллы. Из этих соображений посев материала производят параллельно на несколько сред, каждая из которых способствует преимущественному выделению того или иного возбудителя. Для выделения сальмонелл, в том числе бактерий брюшного тифа, паратифов, исследуемый материал высевают на дифференциально-диагностические среды висмут-сульфитный агар, среду Плоскирева и на среды обогащения—селенитовую среду накопления Лейерсона (рец. 74) или па магниевую среду <кМ (рец. 75). Наряду с перечисленными выше средами обогащения можно применять также жидкую среду Мюллера (рец. 72) и Кауфмана (рец. 73). При посеве в среды обогащения соотношение между за-севаемы.м материалом и питательной средой должно оставаться постоянным, равным 1 5. [c.213]

Характер роста бактерий тифопаратифозиой группы иа дифференциально-диагностических средах [c.215]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология