Электродный потенциал аминокислот

Гюильбо и др. [663] исследовали катион-селективные стеклянные электроды Бекман 39047 и 39137 для определения уреазы, глутаминазы, аспарагиназы и оксидаз о- и L-аминокислот. К известному объему трис-буфера (pH 7,0) добавляют определенный объем анализируемого раствора фермента. Индикаторный электрод и электрод сравнения (нас.к.э.) погружают в раствор, после чего потенциал записывается автоматически. Потенциал, соответствующий наименьшей концентрации NH4, можно установить по калибровочной кривой. Большой положительный потенциал указывает на присутствие катионов щелочных металлов, которые воздействуют на электродную функцию. В этом случае в пробу добавляют небольшое количество катионообменной смолы (дауэкс 50 или подобной ей), перемешивают 5 мин, фильтруют и к профильтрованному раствору добавляют определенный объем соответствующего субстрата (мочевина, глутамин, аспарагин, о-пролин или г-тирозин). Потенциал меняется как функция концентрации образовавшихся ионов аммония. Количество имеющегося фермента можно рассчитать из кривой зависимости Д /мин от концентрации фермента. [c.212]

В некоторых случаях с успехом использовали электрохимические детекторы. Таката и Муто [9] при разделении фенолов, сахаров, аминокислот и карбоновых кислот воспользовались кулонометрпческим детектором в режиме постоянного потенциала. Сахара и фенолы регистрируют после предварительного перевода их в же-лезистосинеродистые соли окислением железоспнероди-стой солью и последующего окисления железистосинеродистых солей в ячейке детектора. Детектирование карбоновых кислот осуществляют с помощью вторичных электродных реакций л-бензохинона. Разделение аминокислот показано на рис. 9.5. Они детектируются после окисления ионов Си+ в u2+, которое можно представить уравнением [c.211]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология