Нуклеотиды выделение

Рис 6-6 Хроматограмма адениновых нуклеотидов, выделенных из мозга кры сы Условия те же что н на рис 6-5 [c.154]

Настоящая книга, издаваемая в серии научных трудов ВИР, освещает методы и методики по определению содержания нуклеиновых кислот в растительных тканях и препаратах. В ней также изложены — идентификация и количественный учет свободных нуклеотидов выделение нативных РНК и ДНК из растений фракционирование их на колонках определение нуклеотидного состава РНК и ДНК методами колоночной и бумажной хроматографии изучение свойств макромолекул нуклеиновых кислот, обнаружение их в клетке, цитофотометрия, определение состояния ДНК и РНК в клетке. [c.2]

Рис. 9.2. 2 - и З -Нуклеотиды, выделенные из рибонуклеиновой [c.205]

Нуклеотиды, выделенные при гидролизе нуклеиновых кислот, содержат только один моносахарид, которым в РНК является D-рибоза-(XLVI), а в ДНК — D-2-дезоксирибоза (XLVII). [c.185]

Д е 3 о кси р и б о 3 а. Выделение и идентификация дезоксирибозы как компонента ДНК были значительно более трудной задачей, ввиду большой неустойчивости этого моносахарида, которая характерна вообще для всех 2-дезоксисахаров. При первоначальных попытках выделить Моносахарид из ДНК посредством гидролиза получали только левули-човую кислоту, в которую превращалась дезоксирибоза. Лишь в 1930 г. Левину удалось, подвергая индивидуальные нуклеотиды, выделенные из ДНК, кислотному гидролизу в очень мягких условиях (0,01 N кислота в течение 10 мин.), выделить кристаллическую дезоксирибозу. Позднее она была получена также в виде дибензилмеркапталя при меркаптолизе ДНК действием дибензилмеркаптана. [c.187]

Состояние компетентности определяется способностью бактериальной клетки включать ДНК из окружающей среды. Это было продемонстрировано в эксперименте с использованием трансформирующей ДНК, меченной Р (в фосфодиэфирных мостиках, связывающих последовательные нуклеотиды), выделенной из 51г -пневмококков, которые были выращены в среде, содержащей Р. Насыщающие количества такой меченной Р ДНК добавляли к несинхронизированной немеченой 51г -куль-туре реципиента. После довольно продолжительного контакта с донорной ДНК клетки реципиента осаждали центрифугированием и отделяли от свободной ДНК. Затем определяли количество связанной Р-метки в осадке и подсчитывали число возникающих 81г -трансформантов. Этот эксперимент был выполнен еще в двух вариантах. В первом использовали меченную по Р донорную 51г -ДНК, к которой добавляли 10-кратный избыток немеченой 3 г -ДНК, во втором использовали реципиентные Str -бaктepии из синхронизированных культур, находящихся в максимальной и минимальной стадиях компетентности. Результаты трех экспериментов можно суммировать следующим образом количество меченной Р ДНК, приходящееся на одну реципиентную клетку в культуре при использовании чистой меченной донорной ДНК, было выше, чем в случае использования донорной ДНК, смешанной с немеченой 51г -ДНК. Кроме того, это количество было выше в случае использования синхронизированной реципиентной культуры в фазе максимальной компетентности, чем при использовании несинхронизированной культуры, причем включение в несинхронизированную культуру в свою очередь [c.166]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология