Солевой раствор Хэнкса

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса. [c.200]

Солевой раствор Хэнкса — 75 мл ЭТС — 25 мл Пенициллин — 500 ед./мл Стрептомицин — 500 мкг/мл [c.108]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса или ФСБ, свободные от Са + и Mg2+, и содержащие 1 мМ ЭДТА. [c.201]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса с РНКазой А (1000 ед/мл). [c.206]

Среда 199 Моргана, Мортона и Паркера на солевом растворе Хэнкса (двукратная). [c.226]

Среда 199 на солевом растворе Хэнкса (поддерживающая среда). [c.232]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса (модифицированный) [c.316]

Д. Сбалансированный солевой раствор Хэнкса (СРХ) [c.348]

Для изготовления 50% среды 199 применяют тот же 10-крат-ный концентрат, как и для классической среды. Однако на 100 л берут не 10, а 5 л десятикратного концентрата и 90 л воды. Затем в раствор добавляют 5 л свежеизготовленного 10-кратного солевого раствора Хэнкса с добавлением 5 г глутамина. Весь раствор тщательно перемешивают, добавляют в него 50 мл раствора D—G—Р и снова перемешивают. [c.34]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса или ФСБ в модификации Дюльбекко. [c.197]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса или ФСБА с пенициллином (250 ед/мл), стрептомицином (250 мкг/мл), кана-мицином (100 мкг/мл) или гентамицином (50 мкг/мл) и фунги-зоном (2,5 мкг/мл). [c.317]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса или ФСБА или ФСБА/ЭДТА до 1000 мл, как потребуется для получения полной дезагрегации. [c.317]

После инкубации с аллоантисывороткой клетки в тех же пробирках при 4°С отмывают (см. разд. IV,А) в сбалансированном солевом растворе Хэнкса (Flow Laboratories Ltd., Ирвин, Шотландия), содержащем 5% прогретой сыворотки плода коровы, 15,мМ буфер ГЭПЭС и 10 мМ азид натрия. В этой среде клетки находятся на протяжении всего опыта. Клетки (не более 2,5-10 на пробирку) тщательно ресуспендируют в 50 мкл среды и добавляют 50 мкЛ подходящего флуоресцирующего реагента (разве- [c.305]

Чаще всего для выделения РСВ используют линии клеток Нер-2 и HeLa (сублиния Bristol), однако описано использование культуры почек макак-резусов, линий BS- -I, MR -5, WI-38 и некоторых других. Лучшим материалом для выделения РСВ служат смывы слизистой носа или носоглотки больных детей. Смывы можно перенести в пробирку с небольшим количеством (2 мл) буферного раствора (например, солевого раствора Хэнкса, содержащего 0,5% желатина и антибиотики) или бульона (например, мясного экстракта с 0,5% БСА и антибиотиками). Содержимое пробирок перемешивают энергичным встряхиванием. Образцы следует держать в ледяной бане и как можно [c.133]

При стандартном пассировании лабораторных штаммов вирусный инокулят обычно представляет собой образец инфицированной аллантоисной или культуральной жидкости. Как правило, образцы перед использованием разводят солевым раствором Хэнкса до концентрации вируса 10 —10 БОЕ/мл 10 — 10 ГАЕ/мл), поскольку введение в яйцо большого количества вируса способствует образованию ДИЧ [4]. Если перед заражением разведенный вирус приходится хранить, то в раствор-для разведения следует ввести желатин (0,5%). Естественно, необходимо обеспечить стерильность вируса, используемого для заражения в тех случаях, когда это затруднительно, к инокуля-ту добавляют антибиотик гентамицин (конечная концентрация 50 мкг/мл). [c.164]

Для. приготовления культур человеческих фибробластов используют эмбрионы в возрасте 8—14 недель, которые получают в виде соскоба полости матки после искусственного аборта. Со-скобы помещают в стерильную стеклянную посуду. В боксе доставленный материал выкладывают на стерильную эмалированную кювету, а затем извлекают необходимые органы и ткани (сердце, легкие, кожно-мышечные фрагменты и т. д.). Эти органы переносят в чашку Петри или широкую пробирку с солевым раствором (Хэнкса, Эрла, Рингера и др.), содержащим в I мл от 200 до 400 ЕД пенициллина и стрептомицина. Указанным раствором ткань промывают 3—4 раза для максимального удаления форменных элементов крови. Обработанные ткани исследуют на стерильность. Следует отметить, что выход жизнеспособных клеток зависит от срока хранения ткани до момента приготовления культур чем короче этот период, тем выше процент жизнеспособных клеток (Е. М. Доссер, Т. Г, Мерцлина, Р. И. Рапопорт, 1959). [c.51]

Наиболее благоприятной для хранения клеток HeLa является температура 20—22°. В этом случае клетки сохраняются без большого ущерба в течение 15 суток в среде, содержащей коровью сыворотку, и до 25 суток в среде, состоящей из 0,5% гидролизата лактальбумина в солевом растворе Хэнкса и 5% сыворотки человека. [c.99]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология