Протопласты изолированные

Изолированные протопласты за то короткое время, пока они не образовали клеточной стенки, могут сливаться между собой. Слияние может быть спонтанным. Оно происходит чаще при одноступенчатом способе выделения протопластов и если используются протопласты, изолированные из молодых тканей или суспензионных культур. По мнению Е. Кокинга (1972), спонтанное слияние осуществляется пассивно путем расширения плазмодесм, которыми связаны клетки в растительной ткани. [c.42]

Гибридизация соматических клеток осуществляется благодаря слиянию протопластов, изолированных из соматических клеток растений, и служит для создания новых генотипов, новых форм растений. Использование изолированных протопластов позволяет решать множество теоретических и практических задач. С их помощью можно вести селекцию на клеточном уровне, работать в малом объеме с большим числом индивидуальных клеток, осуществлять прямой перенос генов, изучать мембраны, вьщелять пла-ствды. Протопласты непременно участвуют в соматической гибридизации. Термин соматическая гибридизация , означающий процесс слияния протопластов соматических клеток, был введен №. Мельхерсом в 1974 г. [c.188]

Изолированные протопласты можно культивировать. Обычно для этого используют те же среды, на которых растут изолированные клетки и ткани. Сразу же после удаления ферментов у протопластов в культуре начинается образование клеточной стенки. Протопласт, регенерировавший стенку, ведет себя как изолированная клетка, способен делиться и формировать клон клеток. Регенерация целых растений из изолированных протопластов сопряжена с рядом трудностей. Получить регенерацию через эмбриогенез удалось пока только у растений моркови. Стимуляцией последовательного образования корней и побегов (органогенез) добились регенерации растений табака, петунии и некоторых других растений. Следует отметить, что протопласты, изолированные из генетически стабильной клеточной культуры, чаще регенерируют растения и с большим успехом используются при исследованиях генетической модификации протопластов. [c.178]

Протопласты, изолированные из стабильной клеточной культуры, с большей вероятностью регенерируют растения и более полезны для исследования генетической модификации протопластов, особенно их слияния. [c.36]

Трансформация растительных протопластов изолирован ной векторной ДНК......... [c.4]

Например, изменения в ответ на действие давления были зарегистрированы в опытах не на интактных клетках, а на протопластах, изолированных из мезофилла и эпидермиса коммелины [554], и поэтому оказались специфичными. Протопласты при нулевом давлении в микропипетке-присоске имели Е от О до 5 мВ. Увеличение [c.64]

РИС. и. Зависимость времени индуцирован- Ман пого ИУК разрыва протопластов, изолированных из листьев Ni otiana taba um L., от природы о. д. а. 158) if О [c.73]

Для проверки указанных предположений были проведены опыты с протопластами, изолированными из растущих листьев растений табака [158, 159]. Прежде всего оказалось, что интервал времени от введения в среду ИУК до разрыва протопластов в растворах различных осмотически действующих агентов (о.д.а.) —сахарозы, маннита и ПЭГ с одинаковым П== 0,87М.Па (это был заведомо гипертонический по отношению к П сока протопластов раствор) —определенным образом зависит от природы о.д.а. этот интервал увеличивается по мере уменьшения способности о.д.а. проникать в протопласты (рис. 14). О проникновении о.д.а. внутрь протопластов судили по изменению объема последних после пребывания их в течение 5 ч в растворах вышеуказанных о.д.а., имеющих одинаковую величину П, без добавления ИУК. Проведенные измерения показали, что лишь в растворах ПЭГ с молекулярной массой 3000 и 4000 объем протопластов со временем не изменялся в растворах же сахарозы, маннита и ПЭГ меньшей молекулярной массы этот объем несколько увеличивался (заметнее всего в сахарозе, менее заметно в маините и еще слабее в ПЭГ с молекулярной массой 400, 600, 1000), что может свидетельствовать о проникновении этих о.а.д. в протопласты. Непроникающими в протопласты можно, очевидно, считать ПЭГ с молекулярной массой 3000 и 4000. Однако при использовании последнего задерживался циклозис. Поэтому действие ИУК испытывалось в основном в растворах ПЭГ с молекулярной массой 3000. В этом растворе протопласты почти синхронно разрывались через 40 мин после введения 1-10 М ИУК (рис. 14). Инкубационная среда ие содержала (кроме о.д.а.) никаких минеральных или органических [c.73]

Трансформация протопластов изолированной ДНК. Впервые достоверная возможность химической трансформации растений бьша показана в опытах с двудольными. Их протопласты обрабатывали в присутствии полиэтиленгликоля вьщеленными Ti-плазмидами. После регенерации стенки клетки Tajin опухолевыми, а ДНК обнаружилась в ядрах, причем Т-ДНК оставалась в составе Ti-плазмид (Krens et ai, 1982). Этот результат позволил приступить к созданию векторов, предназначенных для переноса генов в растения без использования агробактерий. [c.382]

Протопласты, изолированные из суспензионной культуры сахарной свеклы, в течение 1-х суток культивирования формируют клеточную стенку на среде Щенка и Хильдебрандта или Као и Михайлюка. Первое деление происходит на 2—3-и сутки. В течение 7—10 сут образуются колонии из 4—8 клеток. Через 2 нед при перенесении образовавшихся клеток на среду Шенка н Хильдебрандта, содержащую 3 % сахарозы, колонии увеличиваются в размерах. Из них можно возобновить суспензию через 30—40 сут после получения протопластов. [c.175]

В настоящее время ведутся исследования с изолированными протопластами, которые выделяют путем разрушения клеточных стенок специальными ферментами. Из протопласта, изолированного из дифференцированной клетки мезофилла листа, получают целый растительный организм. Рост и дифферепциацля и в этом случае зависят от соотношения гормонов в питательной среде. [c.236]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология