Мезофилл листа

Клетки губчатой паренхимы мезофилла листа (клетки имеют неправильную форму) [c.257]

В клетках мезофилла листа видны мелкие одиночные призматические кристаллы оксалата кальция, иногда встречаются крестообразно-сросшиеся кристаллы и реже мелкие друзы. [c.312]

Влияние уровня азотного питания растений сахарной свеклы на размеры клеток мезофилла листьев и число хлоропластов в этих клетках [c.79]

Как показали исследования, эти вещества способствуют лучшему проникновению гербицидов через кутикулу устьица в мезофилл листьев и ускоряют их передвижение в клетках растений. [c.63]

Рис. 5.13. Электронная микрофотография тонкого среза типичной растительной клетки — клетки мезофилла листа (х15 ООО).

У некоторых клеток, например у клеток мезофилла листа, на всем протяжении их жизни имеется только первичная клеточная стенка. Однако у большинства клеток на внутреннюю поверхность первичной клеточной стенки (снаружи от плазматической мембраны) отлагаются дополнительные слои целлюлозы, т. е. возникает вторичная клеточная стенка. В любом слое вторичного утолщения целлюлозные волокна располагаются под одним и тем же углом, но в разных слоях этот угол различен, чем и обеспечивается еще больщая прочность структуры. Такое расположение целлюлозных волокон показано на рис. 5.35. [c.205]

Рис. 18.4. Хлоропласт из клетки мезофилла листа [1332].

По мере того как вода поднимается вверх по корневой ксилеме, ее замещает вода из окружающих паренхимных клеток, например из клетки 1 на рис. 13.18, Л. В результате водный потенциал этой клетки снижается и в нее устремляется вода из соседней клетки 2 благодаря осмосу или просто по симпласту, как описано в разд. 13.3.2 для мезофилла листа. Тогда в свою очередь снижается и водный потенциал клетки 2, в нее начинает поступать вода из клетки 3 и так далее через весь корень до самого эпидермиса, образующего волоски. [c.126]

Выделяют одиночные клетки из клеточных суспензий, из тканей растений, например, из мезофилла листа после его мацерации ферментами, из культуры изолированных протопластов после восстановления клеточной стенки. [c.95]

В растении вода движется от поверхности корня до менисков на разделе вода—жидкость также в жидком состоянии. Из предыдущих разделов этой главы должно быть ясно, что большая часть общего потока фактически представляет собой поток воды и растворенных веществ и что основная зона сопротивления находится в корнях (см. также [359, 360, 395]). Поток через кору корня до эндодермы и через мезофилл листа по клеточным стенкам, по-видимому, движется вдоль градиентов матричного потенциала, или матричного давления йх/йх, а через ксилему — вдоль градиента гидростатического давления йР/йх. На всех этих этапах передвигается весь раствор целиком, особенно в ксилеме однако в клеточных стенках его передвижение затруднено явлениями обмена и поглощения ионов, которые влияют на состав и концентрацию раствора. У корней, не имеющих вторичного роста, основной источник сопротивления движению жидкой фазы находится, по-видимому, в эндодерме. В корнях с вторичным ростом главным барьером служат, очевидно, внешние камбиальные слои и пробка. Хотя мы и располагаем некоторыми данными, указывающими на то, что для эндодермы сг < 1, представляется приемлемым допущение, что фактической движущей силой потока воды является в этом случае с1Ч/йх. [c.237]

На устьичном пути водные мениски расположены в стенках мезофилла листа. Большинство исследователей принимает, что эти мениски располагаются на границе клеточных стенок и внутреннего воздуха [276, 491, 693] однако уже много лет назад было высказано предположение, что в период водного дефицита, вызванного быстрой транспирацией или недостаточным поступлением воды из почвы, мениски могут отступать в межфибриллярные пространства клеточных стенок, вследствие чего путь пара удлиняется и извилистость его увеличивается. Отмечалось, что за счет этого в стенках может возникнуть значительное сопротивление потоку пара г описанное явление было названо начинающимся подсыханием [388, 436, 437]. [c.273]

Древесная зелень отличается от остальной биомассы дерева наличием большого числа клеток, содержащих хлоропласты, главным образом, клеток палисадной и губчатой тканей мезофилла листа и в меньших количествах других зеленых тканей. Обычно хлоропласты окрашены в зеленый цвет, и именно их присутствию зелень обязана своим названием. Они содержат фотосиитетичесие пигменты двух классов - хлорофиллы и каротиноиды, поглощающие свет разных длин волн. Хлорофиллы относятся к зеленым пигментам и поглощают свет в синей и красной областях видимой части спектра при длинах волн соответственно около 450 нм и 650...700 нм. Каротиноиды - желтые и оранжевые пигменты, поглощающие свет в области 400...500 нм. [c.531]

Микроскопия. Клетки эпидермиса листьев как старых, так и молодых ветвей с поверхности многоугольные, в центре их видны светло-серые пятна (бугорки). На поперечном срезе листа— клетки эпидермиса более или менее равносторонние с сильно утолщенными наружными стенками и толстым слоем кутикулы, выступающей в виде бугорков устьица погружены в мезофилл листа. Листья изолатеральные. В листьях молодых ветвей палисадная ткань состоит из двух, реже трех рядов клеток губчатая ткань и межклетники хорошо выражены. В листьях старых ветвей палисадная ткань представлена тремя, реже четырьмя рядами клеток, клетки губчатой ткани неясно выражены. Главная жилка листьев как старых, так и молодых ветвей имеет кристаллоносную обкладку, встречаются друзы оксалата кальция. Эфиромасличные вместилища крупные, округлой или овальной формы, погружены в мезофилл и занимают часто более половины толщины листа внутри их заметны 1—2 слоя выделительных клеток. [c.257]

Микроскопия. При рассмотрении листа с поверхности видны клетки эпидермиса с верхней стороны с мало извилистыми стенками, с нижней — с более извилистыми. Устьица многочисленные с обеих сторон листа, окружены 3 (реже 4) околоустьичными клетками, из которых одна обычно мельче других (анизоцитный тип). Волоски многочисленные, двух типов — простые и головчатые. Простые волоски тонкостенные, одни из них 2—3-клеточ-ные, небольшие, другие — многоклеточные, очень крупные. Головчатые волоски с длинной многоклеточной ножкой и 4—8-клеточной (изредка 1—2-клеточной) железистой головкой. В мезофилле листа содержатся одиночные призматические кристаллы оксалата кальция нередко встречаются кристаллы в виде крестообразных сростков или тупоконечных друз. В крупных жилках имеются удлиненно-овальные клетки, заполненные кристаллическим песком. В молодых листьях содержатся только мелкие, едва заметные призматические кристаллы, расположенные вблизи жилок. [c.260]

Микроскопия. При рассмотрении листа с поверхности видны клетки эпидермиса верхней и нижней сторон с прямыми утолщенными стенками и нередко с бурым содержимым, стенки клеток верхнего эпидермиса часто четковидно-утолщенные. Кутикула по краю листа и над крупными жилками продольноскладчатая. Устьица окружены чаще 3 клетками эпидермиса, из которых одна значительно меньше других (анизоцитный тип). По краю пластинки 1—3 ряда клеток эпидермиса имеют толстые оболочки и слегка вытянуты в сосочек. В мезофилле листа много друз оксалата кальция. Характерно наличие механических волокон, расположенных чаще над жилками как с верхней, так и с нижней стороны, а также вдоль края пластинки листа. Волокна имеют извилистый контур и толстые оболочки. [c.330]

Микроскопия. При рассмотрении листа с поверхности видны клетки эпидермиса с извилистыми стенками устьица с обеих сторон листа, окружены 2—4 околоустьичными клетками (аномоцитный тип). На поверхности имеются мелкие бесцветные или светло-бурые железки, состоящие из 2—4 клеток. По краю пластинки и по жилке с нижней стороны листа расположены конусовидные пучковые волоски, сросшиеся из нескольких клеток. В мезофилле листа многочисленные крупные остроконечные друзы оксалата кальция и крупные округлые или овальные схизогенные вместилища с содержимым светло-бурого, бурого или золотисто-желтого цвета. [c.332]

Микроскопия. При рассмотрении листа с поверхности у обоих видов фиалки видны клетки эпидермиса, с нижней стороны более извилистые, чем с верхней устьица располагаются с обеих сторон и окружены 3—4 клетками эпидермиса (аномоцитный тип). Простые волоски нежнобородавчатые, с толстыми стенками и заостренным концом, располагаются преимущественно на жилках и по краю листа. Железистые волоски с многоклеточной головкой на широкой многоклеточной ножке, встречаются только по краю листа с углублениями между зубцами и на концах зубцов. В мезофилле листа видны многочисленные крупные друзы оксалата кальция. [c.341]

Основным показателем при определении подлинности сырья служат диагностические признаки анатомического строения. Проведенные исследования анатомического строения листа мальвы, и ахёёёё установить диагностические признаки (рис. 1) эпидермис листа с обеих сторон состоит из клеток с извилистыми стенками. Устьица мпогочислеппые па обеих сторонах листа, крупные, овальные, окружены 5-6 (реже 3-8) околоустьичными клетками (аномоцитный тип). Поверхность листа с обеих сторон и по краю опушена волосками трех типов простые, звездчатые и реже железистые. Простые волоски одноклеточные с толстыми стенками, широкой полостью и заостренной верхушкой, звездчатые, состоящие из 2-10 толстостенных лучей и железистые волоски с многоклеточной головкой на одноклеточной ножке. В мезофилле листа и вдоль жилок имеются многочисленные друзы оксалата кальция, вдоль жилок они иногда образуют цепочки. [c.58]

В 60-х годах два австралийских биохимика растений М. Хэтч и С. Слэк обнаружили, что у растений тропического происхождения первым продуктом, в виде которого фиксируется радиоактивная СО2, является четьфехуглеродное соединение оксалоацетат. Реакция, приводящая к фиксации СО2, протекает в клетках мезофилла листа (рис. 23-27) и катализируется фосфоенолтруват-кар-боксилазой [c.708]

О повышении концентрации соединений, присутствующих в неинфицированных растительных тканях, в результате вирусной инфекции впервые сообщил Бест [168]. Он наблюдал развитие флуоресцирующих ореолов вокруг очагов заражения пятнистым вилтом помидоров на листьях табака. Флуоресценция распространялась частично на непораженный зеленый мезофилл листа и радиально наружу по мере увеличения очага заражения (Реппел [169]). Реакция не специфична для пятнистого вилта помидоров, но, вероятно, приводит к поражению тканей табака. Флуоресцирующее соединение идентифицировано как скополетин (Бест [170]). [c.411]

Табенцким (1959) было показано, что под влиянием усиленного азотного питания увеличиваются не только размеры клеток мезофилла листьев сахарной свеклы, но и число хлоропластов в них (табл. 5). Повышение влажности почвы тоже благоприятно сказывается на числе [c.78]

Отток транспортных продуктов фотостнтеза от клеток мезофилла листьев к проводящим пучкам может осуществляться в принципе тремя путями за счет простой диффузии через толщу протоплазмы и оболочки клеток, за счет передвижения по плазмодесмам — прото- [c.267]

Попадая в мезофилл листа, гербициды включаются в общую транспортную систему — симпласт, которая состоит из протоплазмы клеток, соединенных плазмодесмами. Дальнейшее передвижение 2,4-Д аналогично передвижению продуктов ассимиляции, и в частности сахарозы, с той поправкой, что продукты фотосинтеза передвигаются по симпласту быстрее, чем 2,4-Д. [c.298]

НОГО сульфата. Если количество аккумулированной растением SO2 превышает обезвреживающую способность организма, возникают острые повреждения, но при равенстве обоих процессов некрозы не появляются. Нейтрализация SO2 осуществляется относительно быстро. При солнечном освещении уже через 1—2 ч после газации в мезофилле листьев не удавалось обнаружить SO2 (Thomas et al., 1950а). [c.48]

Итак, кутикула защищает мезофилл листа от повреждающего воздействия не только факторов внешней среды, но и различных чужеродных веществ, в том числе и пестицидов. Поскольку, однако, защитные функции кутикулы в значительной мере связаны с присутствием в ней большого количества липидов, липо-фильные вещества (например, растворенные в маслах пестициды) в отличие от гидрофильных способны относительно легко преодолевать ее. В то же время пространства между макромолекулами кутина у взрослых листьев частично заполнены волокнами целлюлозы и имеют в своем составе вещества с гидрофильными (гидроксильными, карбоксильными) группами. Этим объясняется возможность проникновения через кутикулу и кутику-лярные слои в клетки мезофилла воды и гидрофильных веществ. [c.198]

Гипотеза Мюнха чисто физическая, и не объясняет, почему ситовидные трубки должны оставаться живыми и метаболически активными. Она не объясняет также, каким образом клетки мезофилла листа способны загружать ситовидные трубки ассимилятами против осмотического градиента известно, что у флоэмы /о более отрицательный, чем у фотосинтезирующей ткани. С учетом этого гипотеза Мюнха бьша впоследствии дополнена — в нее включили механизм активной загрузки растворенных веществ в ситовидные трубки. Он подразумевает, что осмотический и гидростатический градиенты начинаются не в фотосинтезирующем мезофилле, а непосредственно во флоэме. Кроме того, полагают, что разгрузка флоэмы на уровне потребителей — тоже активный процесс. Такая современная версия гипотезы Мюнха называется гипотезой тока под давлением. [c.135]

Работы по увеличению фотосинтетической активности проводятся в направлении введения генов С4 фотосинтеза в Сз-растения, Ген фосфо-енолпируваткарбоксилазы (РЕРС) фотосинтетической системы кукурузы С4, кодирующий основной фермент, участвующий в фиксации атмосферного СО2 в клетках мезофилла листа, был клонирован и перенесен методом агробактериальной трансформации в Сз-растения риса. Анализ полученных трансгенных растений показал, что активность фермента в клетках риса в 2—3 раза выше, чем у кукурузы, что привело к увеличению фотосинтетической активности и урожайности. [c.69]

Наиболее важное диагностическое значение в листьях имеют следующие элементы и ткани Г Эпидермис — отмечают размеры и форму (очертание) клеток (клетки эпидермиса бывают с прямыми или извилистыми боковыми стенками, иногда с четковидным утолщением) наличие устьиц (с одной или с обеих сторон), иногда их форму и размеры, число околоустьичных клеток, наличие водяных устьиц (на верхушке и зубчиках листа) характер кутикулы (гладкая или складчатая). 2. Волоски—отмечают строение волосков (простые волоски одно — или многоклеточные, неразветвленные, ветвистые, звездчатые, пучковые и т. д. головчатые волоски, железистые). Обращают также внимание на толщину стенок волоска, на характер кутикулы, покрывающей волосок (гладкая, бородавчатая, складчатая). Отмечают расположение и количество волосков. 3. Железки эпидермальные — отмечают их строение, наличие содержимого (эфирное масло). 4. Вместилища погруженные с эфирным маслом или смолистым содержимым, секреторные ходы, млечники — в мякоти (мезофилле) листа или вдоль жилок. 5. Оксалат кальция в форме различных кристаллов в мякоти листа (одиночные кристаллы, друзы, рафиды, кристаллический песок) или вдоль жилок (кристаллоносная обкладка) могут встречаться кристаллы иной природы, [c.296]

Аллену с сотрудниками удалось показать, что некоторые из составных частей токсина паразитарных микроорганизмов оказывают на живую клетку действие, сходное с действием динитрофенола. Так же как Семпио, Аллен считает, что возрастание интенсивности дыхания больных растительных тканей зависит от разобщения дыхания и фосфорилирования, причем быстрое обращение фосфора дает возможность окисляться большему количеству молекул субстрата и тем самым обойти лимитирующее действие недостатка акцепторов фосфора. Аллен предполагает, что вещества, играющие роль разобщающих агентов, содержатся в токсине мильдью и других возбудителей болезни. Сходство между ДНФ и физиологически активными метаболитами паразитов распространяется и на другие процессы нарушаются процессы синтетические, распадаются запасные углеводы. Однако Аллен отмечает, что в начале заболевания мильдью подъему дыхания сопутствует активный синтез, выражающийся, в частности, в накоплении крахмала в клетках мезофилла листа. Он предполагает, что на этом этапе действуют вещества, более специфичные, чем ДНФ, и скорее повышающие использование, а не распад богатых энергией фосфатных соединений. [c.147]

Морфологические признаки, возникающие в отсутствие цинка, хорошо изучены в результате многочисленных гистологических и цитохимических исследований. Для листьев, не получавших цинк растений, всегда характерны заметные изменения в мезофилле. Укорачивание клеток палисадной ткани, сопровождающееся необычным увеличением ширины клеток (0,18 мм у больных и 0,009 мм у здоровых), отмечал Рид (Reed а. Dufrenoy, 1935) для цитрусовых. Изменения в палисадной ткани (увеличение клеток) в условиях цинковой недостаточности наблюдал Милликен (Milli an, 1953). Палисадная и губчатая ткани мезофилла листьев томатов и др. необычайно компактны, практически лишены межклеточного пространства. Число палисадных клеток в листьях мало, и по объему они в 10—12 раз превышают соответствующие клетки нормальных тканей. [c.134]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология