Липополисахариды, биосинтез

Полипренилфосфатсахара-промежут. соединения при переносе остатков моно- или олигосахаридов на строящуюся углеводную цепь при биосинтезе полисахаридов и др. углеводсодержащих биополимеров (напр., гликопротеинов, липополисахаридов). Углеводный фрагмент связан с остатком полипренола через остаток фосфорной или пирофосфорной к-ты. В клетках эукариот полипренолы содержат от 14 до 24 изопреновых единиц, из к-рых концевая, несущая группу ОН, является насыщенной (долихолы), а бактериальные-10-12 единиц, среди к-рых нет насыщенных. В полипренилмонофосфатах углеводная часть обычно представляет собой остаток маннозы или глюкозы, в поли-пренилпирофосфатах-остаток глюкозы, галактозы или N-ацетилглюкозамина, а в нек-рых случаях - остаток олигосахарида. [c.581]

К центральной цепи биополимера присоединены короткие боковые цепи ( ядра ), построенные из остатков глюкозы, галактозы и N-ацетилглюкозамина боковые цепи имеют, вероятно, одинаковое строение у липополисахаридов самых различных штаммов бактерий. Последовательность моносахаридов в этих цепях полисахарида определена с помощью бес-клеточной системы, осуществляющей биосинтез липополисахарида . Добавляя к такой системе, выдёленной из мутантного штамма, который -синтезирует неполный полисахарид, известные предшественники при биосинтезе полисахарида — соответствующие нуклеозиддифосфатсахара (см. гл. 22) — удается последовательно нарастить в боковой цепи остатки галактозы, глюкозы и N-ацетилглюкозамина. [c.554]

Интересные изменения биосинтеза липополисахаридов сальмонелл были отмечены при действии некоторых фагов, изменяющих трансфери-рующие ферменты. Клетки Ei имеют в своих липополисахаридах а-галактозильные конечные остатки. После инфекции фагом появляются галактозильные остатки с -связями (клетки Ej). Дальнейшее заражение фагом приводит к присоединению, а-глюкозильных остатков к -галактозильным остаткам (клетки Ез) [c.213]

Во многих случаях биосинтез полисахаридов и углеводсодержащих биополимеров может осуществляться только за счет НДФС (биосинтез внешней цепи кора липополисахарида грамотрицательных бактерий, олигосахаридных цепей ганглиозидов, внешних олигосахаридных фрагментов гликопротеинов). Однако в реакциях, протекающих на поверхности раздела между водной и липидной фазой биологических мембран, для транспорта углеводных остатков через богатые липидами мембраны, для включения олигосахаридных строительных блоковой т. д. незаменимую роль играют липидные переносчики. [c.221]

Насыщенные р-окснкислоты входят в состав липополисахаридов клеточных стенок бактерий. Общая их формула СНз(СНг)л СН (ОН) СН2СООН (п = 6—14). р-Ок-сикнслоты D-ряда — промежуточные продукты биосинтеза жирных кислот, а р-оксикислоты L-ряда — промежуточные продукты р-окисления жирных кислот. [c.242]

Рис. 29. Схема структуры ядра липополисахарида Salmonella. Hep, L-гли-церо-О-манногептоза. Сахара прикреплены их редуцирующими концами к липиду А (1 4 и т.д.), поэтому структура не содержит редуцирующих групп. При биосинтезе ядра, справа налево, специфические ферменты добавляют следующую единицу

Липополисахариды таких мутантов содержат только такие сахара, как гептоза и глюкоза [412, 413]. Это понятно, поскольку другие сахара рамноза, манноза и тивелоза расположены после галактозы, а если она не образуется и не присоединяется, то не могут присоединяться и другие сахара. Это подтверждается также тем, что у названных мутантов идет накопление ТДФ-L -рамнозы и ЦДФ-тивелозы как предшественников. Эти данные свидетельствуют о большой акцепторной специфичности при биосинтезе данных липополисахаридов. [c.273]

Интересные изменения биосинтеза липополисахаридов сальмонелл были отмечены при действии некоторых фагов, изменяющих трансферирующие ферменты [414]. Клетки Ei имеют в своих липополисахаридах а-галактозильные конечные остатки. После инфекции фагом е появляются галактозильные [c.273]

Вторая функция фрагментов из РаЬ-участка молекулы IgG связана с неспецифической регуляцией ими биосинтеза антител. Образующиеся в организме фрагменты типа Fab и полученные с помощью пепсина Р(аЬ )2-фрагменты гомологичного gG усиливают in vivo и в культуре клеток селезенки кролика антигензависи-мую пролиферацию антителопродуцирующих клеток (Л. Бартова, Д. Евнин, А. Кульберг, Г. Маргулис, 1976—1983). Указанные фрагменты усиливают иммунный ответ на тимусзависимые антигены (гетерологичные эритроциты, гетерологичный гамма-глобулин), но не влияют на ответ в отношении такого тимус-независимого антигена, как липополисахарид из грамотрицательных бактерий кишечной группы. Свойство РаЬ -фрагментов усиливать иммунный ответ не связано с их антигенсвязывающими свойствами. С наибольшей очевидностью это следует из того факта, что полученный с помощью папаина РаЬ-фрагмент из нормального IgG лишен свойства усиливать иммунный ответ, хотя этим свойством обладает РаЬ -фрагмент, полученный из того же препарата IgG. Последнее имеет принципиальное значение для выяснения строения участка молекулы фрагмента, определяющего его свойство усиливать иммунный ответ. [c.156]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология