Липиды маскированные

Применение селективных детекторов [83, 84 с. 79-153] наряду с универсальными позволяет идентифицировать в продуктах пиролиза соединения различных классов и таким образом установить природу исходного образца. Примером эффективного использования селективного детектирования в ПГХ может служить применение рубидиевого термоионного детектора, проявляющего селективность к азотсодержащим соединениям [85]. При анализе биологических объектов методом ПГХ многие продукты пиролиза протеинов и нуклеиновых кислот маскируются продуктами пиролиза высокомолекулярных углеводородов и липидов. Селективное детектирование азотсодержащих соединений позволило осуществить четкую идентификацию биологических объектов. В качестве селективного детектора [c.78]

Аминокислотные остатки могут маскироваться углеводными цепями в глико-протеидах или липидами, если белок прочно ассоциирован с мембраной [164]. [c.32]

Для каждого типа липидных молекул характерна своя температура кооперативных фазово-структурных перестроек, определяемых как фазовый переход. При воздействии отрицательных или пониженных температур на липосомы, субклеточные органеллы или плазматические мембраны клеток перестройка их компонентов будет протекать по-разному. То, что многие плазматические мембраны сильно обогащены холестерином, обусловливает отсутствие во многих из них переходов, регистрируемых, например, методом дифференциальной сканирующей калориметрии (ДСК) или ЭПР-спектроскопии. Это является следствием специфического влияния холестерина на упаковку липидов и его способности в концентрации выше 33 моль% маскировать либо предотвращать фазово-структурные переходы. Поэтому, например, в мембранах эритроцитов жидкокристаллическое состояние липидов может сохраняться до температуры —20°С, а в мембранах митохондрий оно исчезает уже в области 0°С. [c.20]

Липидные гранулы. У дрожжей и мицелиальных грибов запасные липиды представлены нейтральными жирами, которые легко обнаруживаются в живых клетках без специальных методов окраски в виде сильно преломляющих свет капель. Бактерии в качестве резервных липидов образуют поли-р-оксимасляную кислоту. Гранулы поли-р-оксибутирата хорошо заметны при микроскопировании живых бактериальных клеток с фазово-контрастным устройством, однако чаще для их выявления клетки окрашивают ли-пофильными красителями — Суданом III или Суданом черным. Готовят тонкий мазок клеток, высушивают его на воздухе и фиксируют в пламени горелки. Заливают поверхность мазка раствором Судана черного и оставляют краситель на 5—15 мин. Избыток красителя сливают, просушивают препарат фильтровальной бумагой, просветляют в ксилоле, погружая в него несколько раз предметное стекло. Время просветления препарата не должно превышать 1 мин. После этого клетки дополнительно окрашивают в течение 10 с 0,1%-ным водным раствором сафранина. Более длительная обработка сафранином нежелательна, так как маскируется основная окраска. Гранулы поли- -оксибутирата окрашиваются в темный цвет, остальная часть клетки — в розовый. [c.109]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология