Апикальные меристемы, культура

Апикальная (верхушечная) культура почечная — структура, состоящая из почечной апикальной меристемы с одним — до нескольких примордиальных листьев и обычными размерами от 0,1 до 1 мм в длину если включаются более зрелые листья, то такая структура может достигать в длину нескольких сантиметров. [c.492]

Модульная природа растений особенно хорошо демонстрируется при выращивании меристем в культуре. Используя подходящую питательную среду, можно заставить выделенные из растения апикальные меристемы расти и регенерировать, образуя нормальное растение. Этот метод в настоящее время нашел широкое применение в садоводстве для размножения ценных экземпляров роз, орхидей, а также некоторых сельскохозяйственных культур, как, например, земляника и сахарный тростник. [c.429]

Физиология и биохимия действия. Действие ГА на растения наиболее типично проявляется в удлинении их стебля (рис. 2.10). Особенно наглядно это прослеживается у карликовых растений и у длиннодневных растений, находящихся в фазе розетки. У последних гиббереллин способствует образованию цветоноса, а часто и зацветанию. Места действия ГА — апикальные и интеркалярные меристемы, где под влиянием этого фитогормона активируется деление клеток. Ускоряется также растяжение клеток, однако непосредственно на этот процесс ГА действует слабо. Гиббереллины не стимулируют рост корня, а в повышенных концентрациях даже ухудшают его состояние. Как правило, добавки ГА не требуется и при выращивании культуры тканей. Обработка гиббереллином выводит семена и клубни некоторых растений из состояния покоя. [c.44]

Чем больше размер экспланта, тем легче идет морфогенез, в результате которого получается целое растение, но тем больше вероятность присутствия вирусов в экспланте. У многих видов и сортов растений зона, свободная от вирусных частиц, различна. Так, при клонировании апикальной меристемы картофеля размером 0,2 мм (конус нарастания с одним листовым зачатком) 70 % полученных растений были свободны от У-вируса картофеля, но только 10 % — от Х-вируса. В некоторых случаях не удается найти оптимальное соотношение между размером меристематического экспланта и морфогенезом в нем, и при этом избавиться от вирусной инфекцрш. Приходится дополнять метод культуры меристем термо- или(и) хемитерапией. Так, предварительная термотерапия исходных растений позволяет получать свободные от вирусов растения-регенеранты из меристемных эксплантов размером от 0,3 мм до 0,8 мм. Вместе с тем этот прием может вызвать отставание растений в росте, деформацию органов, увеличение латентных (скрытых) инфекций. [c.199]

В культуре ткаии каллусиых клеток при определенном соотношении ауксииа и цитокинина в среде молено вызвать диффереицировку стеблевых почек или зачатков корней. Поэтому естественно предположить, что оба эти фитогормоиа необходимы для возникновения новой апикальной меристемы корпя. Гиббереллины заметно подавляют образование адвентивных корней у стеблевых черенков, по причины этого неизвестны. [c.197]

Тепловая обработка и методы культуры апикальной меристемы применяются по отношению ко все возрастаюш ему числу вегетативно размио-жаюш ихся растений для получения не содержавшего вирусов материала, который затем может размножаться в условиях, сводящих к минимуму возможность повторного заражения. Эти достижения часто включают введение сертификационных систем. Инсектициды системного действия, иногда применяемые в распыленной форме во время посадки, в значительной степени защищают от некоторых персистентных вирусов (т. е. от вирусов, развитие которых в течение определенного времени проходит в организме насекомых), переносимых тлями. Болезни, возбудители которых (в данном случае неперсистентные) переносятся механическим способом на стилетах тлей, труднее контролировать. Проводимая в настоящее время работа позволяет преднолоншть, что покрытие растений очень тонкой пленкой растительного или минерального масла может служить полезным в коммерческом отношении приемом для снижения распространения таких болезней. [c.16]

Известно, что кинетии угнетает репликацию ряда вирусов. Некоторые исследователи вводили это вещество или сходные с ним соединения в среду для культивирования ткани. В какой степени подобные вещества влияют на количество вируса, обнаруншваемого в апикальной меристеме, выращиваемой в культуре ткани, пока неизвестно. [c.178]

Разные исследователи используют для культивирования апикальной меристемы самые различные питательные среды. Основные ингредиенты такой сред1.1 — соответствующие минеральные соли (макро- и микроэлементы), сахароза и один или несколько стимуляторов роста (например, индо-лилуксуспая или гибберелловая кислота) иногда культуру выращивают па агаре. [c.451]

Размер экспланта является еще одним фактором, определяющим успех мнкроразмножения. Чем меньше эксплант, тем меньшей регенерационной способностью он обладает, и наоборот. Экспланты большего размера, состоящие из паренхимы, проводящей ткани и камбия, могут независимо от соотношения фитогормонов в питательной среде спонтанно образовывать почки. С другой стороны, в крупном экспланте увеличивается возможность появления в его клетках вирусов и других патогенов, что препятствует оздоровлению размноженных в культуре тканей растений. Оптимальная величина экспланта зависит от видовых особенностей растения-донора и свойств органа, служащего источником первичного экспланта. Так, для малины был установлен размер первичного экспланта 2 мм, при котором 60 % апикальных верхушек растения регенерировали на среде Мореля. Для хмеля этот показатель колеблется от 0,1 до 0,2 мм, а для лука и чеснока оптимальный размер меристемы составляет 0,5—0,8 мм. [c.127]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология