Меристематические культуры

В садоводстве для избавления от вирусных инфекций есть два пути. Первый из них —I это тепловая обработка растительных тканей. Растения, находящиеся в состоянии активного роста, выдерживают в течение длительного времени при 35 °С, а ткани в состоянии покоя прогревают в течение 30 мин при 55°С таким путем удается достичь разрушения вируса без заметного повреждения самой растительной ткани (хотя предел безопасности при этом довольно легко переступить). Более безопасный путь заключается в использовании меристематических культур (см. гл. 14), но этот способ пригоден лишь для отдельных видов растений. У некоторых растений, например у хризантем, отделенные концы побегов быстро растут в культуре. Размножение вируса отстает при этом от роста растительной ткани, вследствие чего верхушка побега оказывается через какое-то время свободной от вируса эту верхушку отделяют и выращивают из нее целое растение, не зараженное вирусом. [c.477]

Охлаждение суспензионных, каллусных и различных организованных культур проводят обычно медленно (1—2°С в минуту), меристематические ткани, напротив, охлаждают очень быстро (от 50° до более чем 1000°С в минуту) также быстро проводят завершающее охлаждение изначально медленно охлаждаемых образцов. [c.531]

Возможно, что регуляция гомеостаза корневой и стеблевой меристем зависит от постоянного притока фитогормоиов из соседних ткаией. В таком случае именно в этих соседних взрослых тканях, синтезирующих и поставляющих гормоны, базируется стабильность апикальных меристем. Другая возмоле-иость заключается в том, что мернстематические клетки апекса побега и кончика корня детерминированы к развитию соответственно в побег и корень, т. е, у них возникают внутренние различия в активности генов, практически независимые от их клеточного окрулеения. Такое предположение противоречит современному представлению, о меристематических клетках как о полностью недетерминированных в отношении их будущего развития, ио мы улее видели при знакомстве с явлением смены фаз, что анекс стебля может в этом случае существовать в двух. альтернативных, ио устойчивых состояниях (ювенильное и взрослое). Поскольку хорошо известно, что ткани каллусов, возникающих из ювенильных и взрослых побегов, обладают внутренними различиями, даже если их выращивать изолированно в стерильной культуре, (с. 476), то возможно, что раз- [c.482]

Синхронизация (даже частичная) митозов в популяции меристематических клеток у проростков растений необходима в экспериментах по мутагенезу и полиплоидии, чтобы воздействовать специфическими химическими мутагенами и колхицином на определенную стадию митотического цикла при индуцировании генных и геномных мутаций, а также для радиобиологических, физиологических, биохимических и особенно цитологических исследований. В последних это важно для быстрого подсчета числа хромосом, изучения их морфологии, а также для эффективной работы с культурой растительных тканей и с моносомиками, особенно в тех случаях, когда необходимо увеличить количество метафаз для их анализа. [c.195]

Еще одним примером детерминации верхушечных меристем является смена фаз у древесных растений (с. 381). Смена фаз, несомненно, связана с внутренними изменениями меристематических клеток, так как если выращивать в стерильной культуре на одинаковой питательной среде каллусы из тканей ювенильных и взрослых побегов плюща, то эти культуры различа- ются между собой. Каллус нз ювенильных побегов растет быстрее и образует больше корней, чем каллус из взрослых побегов. Очевидно, здесь мы имеем дело с двумя сравнительно стабильными альтернативными состояниями детерминации, которые не связаны с генетическими изменениями (поскольку иа взрослых побегах образуются семена, из которых развиваются ювенильные проростки), но которые могут передаваться от одного поколения клеток к другому без утраты детерминации. [c.476]

Чем больше размер экспланта, тем легче идет морфогенез, в результате которого получается целое растение, но тем больше вероятность присутствия вирусов в экспланте. У многих видов и сортов растений зона, свободная от вирусных частиц, различна. Так, при клонировании апикальной меристемы картофеля размером 0,2 мм (конус нарастания с одним листовым зачатком) 70 % полученных растений были свободны от У-вируса картофеля, но только 10 % — от Х-вируса. В некоторых случаях не удается найти оптимальное соотношение между размером меристематического экспланта и морфогенезом в нем, и при этом избавиться от вирусной инфекцрш. Приходится дополнять метод культуры меристем термо- или(и) хемитерапией. Так, предварительная термотерапия исходных растений позволяет получать свободные от вирусов растения-регенеранты из меристемных эксплантов размером от 0,3 мм до 0,8 мм. Вместе с тем этот прием может вызвать отставание растений в росте, деформацию органов, увеличение латентных (скрытых) инфекций. [c.199]

Бамбардировку микрочастицами можно использовать также для введения чужеродной ДНК в суспензию растительных клеток, культуры клеток, меристематические ткани, незрелые зародыши, протокормы, колеоптили и пыльцу широкого круга растений (табл. 17.3). Кроме того. [c.380]

Микроразмножение in vitro можно рсуществ. ять из существующих в растении тканей меристемного типа (зародыш, верхушка основного побега) или позже образующиеся пазушные побеги, равно как и из дополнительных меристематических тканей (точки роста, эмбриоиды) изолированных органов растений, где они формируются непосредственно в родительской ткани из промежуточного каллуса или клеток суспензионных культур (см. рис. 140). [c.503]

В большинстве случаев верхзопечные (длиной 1—5 мм) и пазушные побеги заражены растительными вирусами, поэтому прибегают к использованию так называемой культуры верхушечных меристематических тканей, когда отрезают лишь 0,3—0,5 мм верхушки, содержащей меристему и 1—2 листовых примордия с последующей выдержкой при 30—40°С в течение 1,5—3 месяцев. Этот метод удачно использован и используется для оздоровления хозяйственно ценных растений. [c.504]

КО на неферментные белки иногда может приходиться значительная часть общего белка. Так, например, на долю двух запасных глобулинов в клетках семядолей гороха приходится более 80% общего количества белка (гл. 29) другие примеры подобного рода — глиадин пшеницы и гордеин ячменя. Каково же происхождение таких запасных белков Состав глобулинов семядолей гороха не представляет ничего необычного для белков. Может быть, глобулины — ферменты, которые утратили свои активные центры Мутации, приводящие к нарушению активного центра фермента, могут и не препятствовать синтезу ставшего неактивным белка. А если синтез фермента контролировался путем репрессии продуктом катализируемой реакции, то тем в больших количествах могли бы образоваться молекулы фермента, уже не обладающие ферментативной активностью. Однако состав глиадина и гордеина в достаточной мере необычен (40% глутамина и 14% пролина). Поэтому трудно представить, что они также возникли в результате утраты активного центра, но что впоследствии они сильно изменились, превратившись в эффективную форму запаса углерода и азота в легко доступном для растения виде. Оболочки меристематических клеток, а также клеток, выросших в культуре ткани, содержат до 40% общего белка клетг п [c.16]

Работы по поиску новых маркеров морфогенеза продолжаются. Клетки меристематических очагов и клетки, дающие начало эмбриоидным структурам, отличаются от каллусных интенсивным синтезом РНК и ДНК, что связано с особенностями их белкового обмена. Изменения в белковом обмене сходны с теми, которые протекают при дедифференцировке клетки, но итоги у них различны. По мнению Р.Г. Бутенко, специфика реакции определяется не общим усилением синтеза макромолекул, что необходимо для усиленной пролиферации, а теми уникальными синтезами, которые идут на этом общем фоне и обусловливают появление белков регуляторного типа. Переход к морфогенезу в культуре каллусных тканей сопровождается значительными изменениями дыхательного метаболизма. В целом дыхание (по СО2) усиливается, но изменяется его характер в направлении интенсификации пентозофосфатного пути. Возрастает активность дыхательных ферментов. Вслед за биохимической наступает структурная реорганизация клетки. Биохимическая дифференцировка клетки всегда предшествует структурной. В клетках, вступивших на путь морфогенеза, возрастает число рибосом, митохондрий, меняется их внутренняя структура. [c.102]

Резюмируя, можно отметить, что техника культивирования тканей растений позволяет получить длительную, пересадочную каллусную культуру из любых живых тканевых клеток интакт-ного растения. Клетки различно дифференцированные (в том числе и меристематические) переходят in vitro к сложному процессу дедифференцнации, теряют присущую им структурную организацию и специфические функции и индуцируются к делению, образуя первичный каллус. [c.17]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология