Конус нарастания

Отечественными биологами в последние годы был разработан и рекомендован для практического использования метод биологического контроля за развитием и ростом растений. Этот метод предусматривает фенологические наблюдения и регулярные учеты состояния конусов нарастания, а также определение этапов органогенеза органов размножения растений. [c.3]

Перед анализом восстанавливают эластичность растений и нормальную форму конуса нарастания. Используется способность протоплазмы клеток к обратимой гидратации (поглощение воды клетками). Упругость тканей восстанавливают кипятком. Засушенные растения перед самым анализом бросают в кипящую воду и кипятят около 10—15 минут, вынимают из воды и анализируют. Растение перестает быть ломким, и становится возможным определить фазу, число и разм ы развития органов. Конус нарастания особенно хорошо сохраняет упругость тканей и свою истинную форму. [c.6]

Почки и конусы нарастания крупных размеров можно фиксировать в кусочках марли мелкие органы помещают в маленькие пробирки минутки — объемом 3—5 мл. В пробирки наливают фиксатор, закрывают плотно ватным тампоном и ставят вместе с другими пробирками в банку с притертой пробкой, наполненную тем же фиксатором. [c.7]

В основаниях черешков товые побеги З — конус нарастания [c.113]

Для анатомических и гистохимических анализов растения консервируют в жидких фиксаторах. Лучшим фиксатором конусов нарастания у растений на I—VI этапах органогенеза является смесь из 6,5 части уксусной, а лучше пропионовой кислоты, 10 частей 40-процентного формалина и 83,5 части этилового 70-процентного спирта. [c.6]

Развитие генеративных органов растения у злаковых определяют по этапу органогенеза конуса нарастания главного побега. [c.8]

С этой целью конус нарастания побега отделяют от растения и рассматривают на предметном стекле под бинокулярной лупой или микроскопом. На I—V этапах органогенеза конус можно рассматривать целиком на сухом предметном стекле и без покровного стекла при малых увеличениях. [c.8]

Микрофотографирование — удобный способ документации единичных факторов и последовательного процесса органогенеза типов повреждения конусов нарастания растений насекомыми, морозами и другими факторами самих вредителей растений и т. д. [c.12]

Отрицательное влияние на размеры будущего колоса может оказать недостаток питательных веществ и влаги в почве, недостаток света и воздушная засуха. Все эти факторы могут вызвать недостаточное развитие колосковых бугорков в верхней части конуса нарастания. [c.14]

I этап органогенеза представлен в виде недифференцированного конуса нарастания — бугорка в 0,2—0,3 мм величиной, основание которого несколько шире, чем у пшеницы. Первый этап совпадает с фазой всходов (рис. 2). [c.16]

II этап начинается при развертывании третьего настоящего листа. В это же время у озимой ржи наступает фаза кущения. На этом этапе конус нарастания несколько вытягивается в длину и начинается дифференциация укороченного стебля на узлы и междоузлия. [c.16]

У конуса нарастания вытягивается в длину верхняя часть и усиленно дифференцируется его нижняя часть на отдельные сегменты — будущие междоузлия, формируются листовые валики. [c.16]

IV этап наступает при переходе ржи к фазе трубкования. На конусе нарастания начинают закладываться в виде бугорков зачаточные колоски этот процесс начинается ранней весной. Формирование колосков идет снизу вверх, то есть сначала они закладываются в нижней части конуса нарастания, затем в средней и позже — в верхней. [c.16]

I этап органогенеза у ячменя наблюдается в фазу всходов. Конус нарастания на этом этапе представляет собой бугорок величиной от 0,25 до 0,5 мм. [c.18]

На II этапе органогенеза конус нарастания незначительно удлиняется, у его основания формируются зачаточные узлы, обычно их бывает 5—6. Этот этап совпадает с фазой третьего листа. [c.18]

На III этапе органогенеза вытягивается верхняя часть конуса нарастания, а нижняя часть его дифференцируется на отдельные сегменты — зачаточные узлы стебля, одновременно формируются зачаточные листовые образования, которые впоследствии не развиваются. По времени этот этап органогенеза совпадает с фазой кущения. [c.18]

VI этап органогенеза тоже проходит в фазу трубкования. На конусе нарастания идет дальнейшее формирование генеративных элементов цветков — тычинок и пестика. В тканях пыльников образуются сначала тетрады, а затем одноядерная пыльца. [c.19]

На I этапе органогенеза конус нарастания представляет собой бугорок размером не более 0,3 мм. Этот этап совпадает с фазой всходов. [c.19]

Конус нарастания несколько вытягивается. В это время происходит дифференциация зачаточных стеблевых органов на узлы и междоузлия, которые в этот период бывают вплотную сдвинуты друг к другу. Избыточное азотное питание может вызвать преждевременный рост междоузлий, отчего снижается устойчивость растений к полеганию. Полегать они могут и от избыточного загущения посевов. Калийные и фосфорные удобрения, внесенные до посева или при ранней подкормке, задерживают вытягивание междоузлий и предотвращают полегание растений. [c.19]

I этап — конус нарастания недифференцирован и состоит в основном из эмбриональной ткани. В фазу всходов он представлен бугорком с широким основанием. У основания видны зачатки листьев. [c.22]

II этап — формируются междоузлия и узлы зачаточного конуса нарастания. [c.22]

III этап характеризуется ростом длины конуса нарастания, сегментацией его средней части и началом закладки бугорков первичных валиков в его нижней части, которые затем не развиваются. Этот этап проходит быстро — в течение 1—4 дней. [c.22]

IV этап характеризуется формированием соцветия — конусов нарастания, дающих начало веточкам второго порядка, и колосковых лопастей происходит усиленный рост конуса нарастания. Из каждой лопасти образуется два колосковых бугорка, а потом и сами колоски. В нижней части колоскового бугорка возникает складка, из нее развиваются колосковые чешуи. [c.23]

I этап — конус нарастания недифференцирован, его основание широкое, поверхность гладкая. [c.23]

II этап — конус нарастания начинает несколько вытягиваться и происходит заложение сильно сближенных узлов и обертки початка. [c.23]

III этап — продолжается вытягивание в длину конуса нарастания, сегментация основания и образование валиков, внешне похожих на настоящие зачаточные валики листьев валики эти впоследствии редуцируются. Продолжительность III этапа не более 3—5 дней. [c.23]

IV этап — у конуса нарастания развиваются лопасти, из которых образуется по два колоска. В свою очередь у основания колоскового бугорка образуется складка, которая превращается в колосковую чешую. [c.23]

Темпы роста и развития конусов нарастания генеративных побегов и их устойчивость к злаковым мухам существенно за- [c.25]

Понижение освещенности на 30—50% от естественной за счет исключения дневного освещения задерживало развитие пшениц на первых этапах органогенеза и способствовало уничтожению конусов нарастания у всходов личинками мухи. [c.26]

В 1949 г. было выяснено, что клетки меристематических тканей растений обычно не содержат вирусов. В 1952 г. Дж. Мораль и Г. Мартин предложили, используя культивирование меристем, получать здоровые, избавленные от вирусной инфекции растения. Они обнаружили, что при выращивании верхушки побега, состоящей из конуса нарастания и 2—3 листовых зачатков, на ней образуются сферические образования — протокормы. Протокормы можно делить, и каждую часть культивировать до образования корней и листовых примордиев, получая в большом количестве генетически однородные безвирусные растения. В настоящий момент культивирование меристем побега — наиболее эффективный способ оздоровления растительного материала от вирусов, вироидов и микоплазм. Однако при этом способе требуется соблюдать определенные правила. Как уже говорилось, чем меньше размер мери-стематического экспланта, тем труднее вызвать в нем морфогенез. [c.198]

Чем больше размер экспланта, тем легче идет морфогенез, в результате которого получается целое растение, но тем больше вероятность присутствия вирусов в экспланте. У многих видов и сортов растений зона, свободная от вирусных частиц, различна. Так, при клонировании апикальной меристемы картофеля размером 0,2 мм (конус нарастания с одним листовым зачатком) 70 % полученных растений были свободны от У-вируса картофеля, но только 10 % — от Х-вируса. В некоторых случаях не удается найти оптимальное соотношение между размером меристематического экспланта и морфогенезом в нем, и при этом избавиться от вирусной инфекцрш. Приходится дополнять метод культуры меристем термо- или(и) хемитерапией. Так, предварительная термотерапия исходных растений позволяет получать свободные от вирусов растения-регенеранты из меристемных эксплантов размером от 0,3 мм до 0,8 мм. Вместе с тем этот прием может вызвать отставание растений в росте, деформацию органов, увеличение латентных (скрытых) инфекций. [c.199]

В образцах из <с>-пирамиды, ориентированных параллельно зонам роста, после отжига выявляются центры молочно-белой окраски, которые декорируют акцессорный рельеф поверхности базиса (см. рис, 28, б). Вследствие тиндалевского рассеяния аналогичные явления наблюдаются и в неотожженных образцах при интенсивном боковом освещении. Плотность окраски понижается к вершинам куполовидных акцессорий, что может быть вызвано оттеснением примеси к границам конусов нарастания акцессорий. О возможности такого процесса свидетельствуют также результаты съемок кварцевых препаратов методом теневой проекции. На фотографиях отчетливо выявляется ячеистое распределение неструктурной примеси. Участки, обогащенные примесью, обнаруживаются при визуальном просмотре в поляризованном свете пластин, ориентированных перпендикулярно к оптической оси. В отожженных кристаллах молочно-белые пленки нередко возникают непосредственно на поверхности базиса. [c.116]

Культура меристем побега — выращивание in vitro на питательной среде изолированного из верхзгшки или паззш1ной почки побега конуса нарастания с одним или двумя листовыми примор-диями, с первоначальным размером менее 0,1 мм в длину. [c.495]

У молодых растений личинки повреждают пять—семь листьев, обычно начиная со второго. Шведская муха вызывает на кукурузе четыре типа повреждений на листьях округлые сквозные отверстия, листья разорваны продольно, растения отстают в росте центральный стебель поврежден растения образуют боковые стебли — пасынки центральный стебель поврежден, растения погибают. При раннем поврел<дении, когда личинка уничтожает конус нарастания, всходы погибают. Если пазушные почки целы, развиваются боковые побеги, но урол<ай зеленой массы в этом случае снижается на 54—84%. [c.49]

До V этапа растения можно консервировать целиком, если они не слишком большие, а с VI этапа органогенеза крупные Цветки отделяют от оси конуса нарастания и фиксируют отдельно. Начиная с VIII этапа органогенеза отдельно фиксируют тычинки и пестики. [c.7]

Конус нарастания нельзя долго рассматривать в воздушной среде он начинает подсыхать и деформироваться. В таких случаях его нужно помещать в разные среды для приготовления временных препаратов, лучшими из которых являются глицериновый гель и лактофенол. [c.9]

На предметное стекло стеклянной палочкой наносят 1 каплю геля или лактофенола, в нее помещают конус нарастания, или отдельные цветки, или его части и накрывают покровным стеклом. Для просветления тканей препарат выдерживают в глицериновом геле или лактофеноле под стеклянным колпаком или в коробке для препаратов от нескольких часов до нескольких дней. [c.9]

Если нет геля и лактофенола, конус нарастания рассматривают в капле дистиллированной или кипяченой воды. Но водный препарат менее удобен, им нужно пользоваться сразу, он долго не хранится. [c.9]

I этап представлен недиффереьщированным конусом нарастания. Совпадает он с фазой всходов и может продолжаться в течение всей осени, а иногда вплоть до весны, хотя в нормальных условиях развития озимые уходят на зимовку на II этапе органогенеза. [c.14]

На III этапе происходит дифференциация осей соцветия. В нижней части конуса нарастания становятся заметными от-дельнью сегменты — зачатки будущих члеников стержня колоса чем их больше формируется на III этапе органогенеза, тем будет больше члеников колосового стержня и тем длиннее станет колос. Обеспеченность элементами питания на этом этапе органогенеза чрезвычайно важна для нормального процесса сегментации конуса нарастания. Хорошая заправка почвы под основную вспашку и ранневесенняя подкормка озимых растений азотными и фосфорнокалийными удобрениями способствует увеличению числа колосков в колосе. Эффективность подкормки озимых весной по таломерзлой почве объясняется ранним наступлением вегетации у растений, когда они сразу переходят к третьему этапу органогенеза, а в холодных почвах бывают еще ослаблены микробиологические процессы. [c.14]

V этап органогенеза проходит в фазу трубкования. На конусе нарастания начинают формироваться цветки в колосках и закладываются колосковью чешуи. Продолжительность этого этапа обычно не менее 5—7 дней. [c.19]

IV этап органогенеза у яровой пшеницы наступает при переходе в фазу трубкования. На конусе нарастания закладываются колосковые лопасти — зачатки будущих колосков. На разреженных посевах при избыточном боковом освещении процесс формирования зачаточных колосков может задерживаться, и можно видеть израстание зачаточного колоса и другие аномалии в развитии растения. [c.20]

Биологический контроль помог нашим ученым определить, что устойчивость злаков к скрытностеблевым вредителям в равной мере зависит как от биологии насекомых, так и от развития конусов нарастания генеративных органов растений. [c.24]

На темпы роста и развития конусов нарастания генеративных побегов и на совпадение критических для повреждений периодов развития зерновых хлебов со временем лёта злаковых мух оказывают влияние сроки сева. В центрально-черно-земной зоне яровые хлеба ранних сроков сева меньше повреждаются шведской мухой. Запаздывание с севом на одну-две недели приводит к изреженности посевов. При позднем посеве появление всходов пшеницы, ячменя, овса совпадает с массовым лётом первого поколения шведской мухи. Озимые хлеба, наоборот, при ранних августовских сроках сева дают всходы ко времени наибольшей численности, а следовательно, и наибольшей вредоносности шведской и гессенской мух. [c.25]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология