Феназинметосульфат

Состав реакционной смеси для проявления активности лактатдегидрогеназы в полиакриламидном геле К-фосфатный буфер 100 мМ, pH 7,4 лактат натрия 100 мМ НАД 0,5 мМ феназинметосульфат 40 мкг/мл тетразолий нитросиний 400 мкг/мл. [c.339]

Феназинметосульфат — 0,1 М раствор готовить в день опыта и хранить защищенным от света — 1 мл. [c.461]

Для определения концентрации образовавшегося малата в спектрофотометрическую кювету вносят 3 мл среды для измерения концентрации малата, добавляют 50 мкМ дихлорфенолиндофенол, 1 мМ феназинметосульфат, малатдегидрогеназу — 50 мкг/мл и аспартатамино-трансферазу — 50 мкг/мл. Определяют значение оптической плотности раствора при длине волны 600 нм, соответствующей максимуму поглощения окисленной формы ДХФИФ (емм ° =20). В кювету добавляют 50—100 мкл раствора малата и фиксируют уменьшение оптической плотности, связанное с восстановлением дихлорфенолиндофенола. Рекомендуется определить указанным методом концентрацию приготовленного по навеске раствора L-малата. Рассчитывают концентрацию образующегося в результате реакции окисления янтарной кислоты малата и определяют стехиометрическое соотношение окисленного сукцината к образованному малату в отсутствие и в присутствии разобщителя. [c.462]

Зелен, крист. -I- <17% HjO Е о -1-0,219 В (pH 7, 30°С). Раств-сть р. HjO, X. р. EtOH. Акцептор электронов. В нейтр. раств. окисленная форма имеет сннюю окраску, восстановленная форма бесцветна. Восстанавливается флавопротеиновыми ферментами. Использ. как акцептор в р-ции Хилла. Восстановленное соединение использ. как донор электронов, напр, для нитратредуктазы. Окисление Oj протекает о. медл. Тв. в-во уст. на возд. прн хранении в темноте, медл. разл. на свету. Водн. раств. разл. при стоянии, особ, при кисл. pH. Восстанавливается аскорбиновой кисл., дитионитом, восстановленным феназинметосульфатом. [c.302]

После того как эти ферменты переведены в раствор, их можно испытывать то.пыю с искусственными акцепторами, такими, например, как феррицианид или ФМС (феназинметосульфат). [c.379]

На рис. 37 показано, какова может быть сложная последовательность электрон-транспортных реакций в ксантиноксидазе. Любая из трех нростетических групп ксантиноксидазы в принципе может выступать в качестве связывающего центра для субстрата или конечного акцептора электронов. Если субстратом служит ксантин, а акцептором — феназинметосульфат, то оба эти соединения связываются по одному и тому же, а именно по молибденсодержащему, центру [40, 41]. [c.276]

Во многих работах с изолированными хлоропластами процесс циклического фотофосфорилирования в отсутствие экзогенно добавленных переносчиков электронов протекал очень слабо. Обнаружить его можно было только при добавлении физиологических или нефизиологических кофакторов. Из последних найболее активными оказались феназинметосульфат и продукт его окисления пиоцианин (стр. 170 ). Сильно повышается образование АТФ, сопряженное с циклическим транспортом электронов, при добавлении, в суспензию хлоропластов ферредоксина ( поп, I9G5). ло, возможно, объясняется тем, что при изолировании хлоропластов ферредоксин, как водорастворимый белок, в значительной степени вымывается из них. [c.205]

Эффективность циклического фотофосфорилирования, как показали работы последних лет с изолированными хлоропластами, может быть достаточно высокой. В первых работах Арнона количество этерифицированного хлоропластами фосфора было невелико, порядка 2-4 мкмоль на I мг хлорофилла в I час. Но в дальнейших работах этого исследователя и других, по мере улучшения условий проведения опытов, подбора переносчиков, условий освещения стали получать большие величины. Так, в лаборатории Арнона через 2-3 года величина этого показателя достигала уже 500 мкмоль ( Allen et al., 1958). В работах других исследователей при интенсивности света около 150 ООО лк, короткой экспозиции, в присутствии феназинметосульфата и.пиоцианина количество образовавшегося АТФ в изолированных хлоропластах достигало 1000-2500 мкмоль на [c.221]

Вероятно, железо может определять активность энзима в зависимости от природы испытываемых систем. Можно думать, что электроны от сукцината к феназинметосульфату идут в следующем направлении [c.191]

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ФЕНАЗИНМЕТОСУЛЬФАТА И СРЕД С ГЕЛЬ-ОБРАЗУЮЩИМ поливиниловым СПИРТОМ (ГЕЛЬ-ПВС) [c.211]

Светочувствительный феназинметосульфат может при выявлении дегидрогеназ заменять липопротеидный комплекс фермента. Будучи неферментативным переносчиком водорода, он способен переносить водород непосредственно от ко( рмента на индикатор (схема на стр. 213). Благодаря этому г(ветную реакцию (образование формазана) коферментзависимых дегидрогеназ можно проводить без участия диафоразы. Важно, что благодаря назинмето-сульфату нитро-СТ сохраняет свою способность связывания со структурами (субстантивность). [c.211]

Добавление феназинметосульфата к инкубационной среде усиливает реакцию. 0,05 М малонат ведет к избирательному подавлению сукцинатдегидрогеназной активности. При точном соблюдении условий реакции количество продукта реакции линейно зависит от ферментативной активности. Этот факт подчеркивает важность гистохимического выявления сукцинатдегидрогеназы. [c.213]

Справочник биохимии (1991) -- [ c.295 , c.297 , c.303 ]

Реактивы и препараты для микроскопии (1980) -- [ c.235 ]

Биохимия растений (1968) -- [ c.119 ]

Биоэнергетика Введение в хемиосмотическую теорию (1985) -- [ c.143 ]

Биохимия мембран Биоэнергетика Мембранные преобразователи энергии (1989) -- [ c.70 , c.94 ]

Биосенсоры основы и приложения (1991) -- [ c.270 ]

Методы практической биохимии (1978) -- [ c.229 , c.234 ]

Основы биохимии (1999) -- [ c.146 ]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология