Хэнкса раствор

Трижды промойте клетки суспендированием их в растворе Хэнкса > и центрифугированием при 200 е в течение 10 мин. [c.119]

Ресуспендируйте в растворе Хэнкса до конечной концентрации 5-10 клеток/мл (первая неделя), 10 клеток/мл (вторая неделя) и 10 клеток/мл (третья неделя). [c.119]

Добавьте в 100 мл раствора Хэнкса без бикарбоната натрия н фенолового красного н тщательно перемешайте в течение 30 мин при комнатной температуре. [c.131]

II. Разведите кровь четырьмя объемами ФСБ или раствора Хэнкса и нанесите 10 мл разведенной крови на слой из 5 мл Фиколла-Гипак в универсальном контейнере или центрифужной пробирке на 2,5 мл. Благодаря этой процедуре вы избавитесь от эритроцитов. [c.198]

VI. Суспендируйте конечный осадок в растворе Хэнкса до концентрации 10 клеток/мл и анализируйте проточной цитометрией. [c.198]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса. [c.200]

I. Поместите тань в раствор Хэнкса при 4°С. Разрежьте ткань на фрагменты размером 1 мм с помощью ножниц или перекрестных движений скальпелей и дважды промойте раствором Хэнкса. [c.200]

П. Слейте раствор Хэнкса и замените его раствором ферментов для дезагрегации в соотношении 10—15 мл на 1 г ткани. [c.200]

I. Суспендируйте клетки в растворе Хэнкса до концентрации 1 10 — 1-10 клеток/мл. [c.202]

II. Заполните резервуар прибора, содержащий обволакивающую жидкость, раствором Хэнкса. [c.202]

П1. Продавите маленькие кусочки ткани через иглу(1,20Х Х38 мм) и ресуспендируйте в растворе Хэнкса при 4°С. [c.203]

I. Удалите среду из культуральной посуды и дважды сполосните клетки раствором Хэнкса. [c.203]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса с РНКазой А (1000 ед/мл). [c.206]

Суспендируйте 2-10 клеток в 1 мл раствора Хэнкса с РНКазой. [c.206]

I. Перед выделением эмбрионов протрите тупой конец яйца ваткой, смоченной 70%-ным этанолом, для стерилизации поверхности скорлупы. Осторожно удалите верхний конец скорлупы, разрушив ее легкими ударами и отшелушив скорлупу. Внутреннюю мембрану скорлупы прорвите прямым пинцетом. Извлеките эмбрион, взяв его за голову изогнутым пинцетом, и аккуратно перенесите в чашку Петри. Тщательно промойте эмбрион раствором Хэнкса, удалите глаза и вручную измельчите с помощью изогнутых ножниц. [c.218]

П. Смешайте полученный гомогенат с равным объемом раствора Хэнкса и центрифугируйте смесь при 20 в течение [c.218]

II. Утром в день получения эксплантатов пропитайте 10 ыл стерильной дистиллированной воды или раствора Хэнкса слой ваты или фильтровальной бумаги, используя градуированную пипетку, и установите часовые стекла над отверстиями в подложке. Эти отверстия обеспечат прохождение света при работе с бинокулярной лупой и облегчат макроскопическое обследование эксплантата в ходе культивирования. [c.221]

VI. Перенесите от одного до трех эксплантатов на сгусток с помощью катарактного ножа или пипетки с широким кончиком. В последнем случае эксплантаты обрабатывают раствором Хэнкса, размещают на сгустке и избыток жидкости отсасывают с помощью капиллярной пипетки. [c.221]

II. Перенесите эксплантаты в лунку предметного стекла, за полненную раствором Хэнкса с 2% сыворотки и промойте [c.222]

I. Используя тонкие ножи и анатомические иглы, разделите орган или зачаток на кусочки соответствующего размера (не превышающие 2x1, 5X1 мм) в растворе Хэнкса. [c.223]

VI. Перенос эксплантатов осуществляйте с помощью скальпеля или пипетки с широким носиком. В последнем случае засосите в пипетку эксплантаты с раствором Хэнкса и перенесите на сгусток. Избыток раствора Хэнкса удалите капиллярной пипеткой. [c.224]

II. Переверните покровное стекло на столик бинокулярной лупы. С помощью тонкого пинцета и анатомических игл отделите эксплантаты от сгустка и перенесите их в лунку предметного стекла для промывки раствором Хэнкса (две смены раствора по 5 мин). [c.224]

Среда 199 Моргана, Мортона и Паркера на солевом растворе Хэнкса (двукратная). [c.226]

Среда 199 (однократная) на растворе Хэнкса. [c.226]

I. Отделите от эмбрионов органы или зачатки органов, используя бинокулярную лупу. В ходе препарирования поддерживайте влажность эмбрионов с помощью раствора Хэнкса, содержащего 2% сыворотки. [c.227]

II. Перенесите предназначенные для культивирования ткани в лунку предметного стекла и промойте их раствором Хэнкса. [c.227]

III. Перенесите ткани на агаровый гель с помощью двух катарактных ножей или путем осторожного отсасывания раствора Хэнкса с кусочками ткани в пипетку с широким носиком н нанесения на гель. [c.227]

Удалите крышку с эмбриологического часового стекла старой культуры, используя прогретые бритву или скальпель. Снимите эксплантаты со старого геля, применяя два катарактных ножа или катарактный нож и анатомическую иглу, и промойте эксплантаты раствором Хэнкса в лунке предметного стекла. Перенесите эксплантаты на новые гели и заклейте часовые стекла свежими стерилизованными стеклянными крышками, используя маленькую кисточку и парафин. [c.227]

Фосфатно-солевой буфер (ФСБ) Дюльбекко сходен с СБСР Хэнкса, но в ФСБ отсутствует бикарбонат, а содержание Na2HP04 и КН2РО4 повышено для обеспечения большей буферной емкости. ФСБ не используется в качестве основы для культуральных сред, но часто применяется для промывки клеточного монослоя. ФСБ составляется из трех частей (приложение 1 табл. 2). Раствор А ФСБ (ФСБ-А) лишен ионов Са + и Mg +, которые добавляются к ФСБ-А в виде отдельных растворов (ФСБ-Б и ФСБ-В) для получения полного ФСБ. [c.77]

Сбалансированные буферные солевые растворы (СБСР) Эрла и Хэнкса, концентрированные в 10 раз, без бикарбоната и глюкозы [c.222]

Перед употреблением довести pH до 7,4, добавив бикарбонат (20 мл 5,6%-ного раствора в СБСР Эрла и 3 мл 5.6%-ного раствора в СБСР Хэнкса) или буфер Hepes (5 мл 1,0 Я).Добавить глюкозу и другие требуемые ингредиенты. [c.222]

Аминокислоты и витамины растворяют в СБСР Эрла или Хэнкса. МСИ в модификации Дюльбекко готовят на СБСР Эрла, содержащем избыточные количества бикарбоната (3,7 г/л) и глюкозы (4,5 г/л), а также нитрат железа (0,1 мг Ре(ЫОз) -ШгО в 1 л). [c.227]

Готовится путем добавления 0,1—0,5 мл концентрированного раствора (ЮООХ) в 100 мл раствора Хэнкса без бикарбоната и фенолового красного н перемешивается, как и при приготовлении раствора (ЮООХ)- [c.131]

III. Нанесите 2—3 капли раствора Хэнкса на боковое отверстие и осторожно продавите этот раствор через оболочку скорлупы, используя иглу от шприца с калибром 26. Раствор Хэнкса должен просочиться и распространиться над хорионаллантоисной мембраной (ХМ) для облегчения ее отделения от оболочки. [c.135]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса или ФСБ в модификации Дюльбекко. [c.197]

Сбалансированный солевой раствор Хэнкса или ФСБ, свободные от Са + и Mg2+, и содержащие 1 мМ ЭДТА. [c.201]

V. Используя тонкие ножницы и часовой пинцет, удалите орган или часть органа, промойте его раствором Хэнкса и перенесите на стеклянную пластинку. С помощью катаракт-ных ножей, анатомических игл или ножей Сванн-Мортона, обрежьте ткань так, чтобы размер кусочка не превышал 2x2x2 мм. По возможности поместите стеклянную пластинку на кусочек черной бумаги (так будет легче препарировать). Весьма существенно, чтобы в ходе работы ткань увлажнялась раствором Хэнкса. [c.221]

Эксплантаты сначала помещают на полоски линзовой бумаги (см. разд. 7.1) либо ацетата вискозы, смоченные раствором Хэнкса, и эти полоски помещаются на сгусток. Этот метод не снижает жизнеспособность и рост эксплантированных тканей, предотвращает погружение ткани в разжижающуюся плазму и облегчает процесс смены среды. Вместо индивидуального подъема каждого эксплантата можно поднимать сразу все эксплантаты, расположенные на плотике, промывать их раствором Хэнкса, подсущивать на стерильной фильтровальной бумаге и помещать на свежий сгусток. [c.222]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология