Анализы на колиформную группу

Завершающий анализ колиформная группа отсутствует [c.67]

Завершающий анализ колиформная группа присутствует присутствуют грамположительные и грамотрицательные палочки повторяется штриховой посев на среду Эндо или ЭМГ [c.67]

АНАЛИЗЫ НА КОЛИФОРМНУЮ ГРУППУ [c.64]

Газ не выделяется анализ отрицательный, колиформная группа отсутствует [c.67]

В обобщенном виде стандарты на питьевую воду приведены в табл. 5.2. Контроль над бактериологическими показателями требует проведения анализов на содержание бактерий колиформной группы в пробах очищенной воды, взятых в различных точках распределительной системы (в пп. 3.7 и 3.8 детально описаны индикаторные организмы и методики лабораторных исследований). Бактериологические пробы должны быть взяты на потенциально опасных участках, например в резервуарах, тупиковых трубопроводах и на отдаленных участках распределительной системы. С одобрения штатного санитарного надзора ана- [c.118]

Колиформная группа бактерий определяется как совокупность аэробных и факультативно-анаэробных, неспорообразующих, грамотри-цательных палочек, вызывающих брожение лактозы с образованием газа в течение 48-часовой инкубации при 35°С. Первоначальный анализ на колиформы — предположительный, он основан на выделении газа из лактозы. Десятимиллилитровые порции водной пробы переносят с помощью стерильных пипеток в подготовленные бродильные трубки. Трубки содержат лактозу или лауриновую триптозу, бульон и перевернутые ампулы (сборники газа). Инокулированные трубки помещают в термостат с температурой 35 0,5°С. Рост бактерий с выделением газа, обнаруживаемого по появлению пузырьков в перевернутой ампуле, считается положительным анализом, показывающим, что колиформные бактерии могут присутствовать. Отрицательная реакция (отсутствие роста или рост без газа) исключает присутствие бактерий колиформной группы. [c.66]

Методику анализа, схематически показанную на рис. 3.7, нельзя использовать для непосредственной изоляции колиформ из воды, но ее применяют как подтверждающую после предположительного анализа. Сначала лроязводят посев замеренного объема пробы в бродильные трубки, содержащие лактозу или лауриново-триптозный бульон. Трубки, в которых наблюдается рост бактерий с выделением газа спустя 24 или 48 ч, используют для инокуляции культуры в среду, содержащую бульон ЕС. В этой среде пробу подвергают инкубации в водяной ванне при температуре 44,5 0,2°С, погружая трубку до верхнего уровня среды. Из-за жестких требований к температурному режиму, необходимому для проведения анализа на фекальные колиформы, стандартные термостаты, обычно используемые в бактериологических анализах, неприемлемы. Рост с выделением газа говорит о присутствии фекальной колиформной группы если же газ не выделяется, то это свидетельствует об отсутствии последней. [c.69]

Рис. 3.7. Последовательность проведения анализа для идентификации общей колиформ-нпй группы и фекально-колиформной группы при контроле качества воды

Объем пробы, подлежащей фильтрованию, зависит от ожидаемого количества бактерий. В идеальном варианте анализа получают около 50 колиформных колоний при общем количестве колоний не более 200. Ввиду того что предвидеть количество бактерий в пробе весьма затруднительно, следует анализировать два или три объема той же пробы. Когда объем фильтруемой пробы меньше 20 мл, в воронку перед фильтрованием добавляют небольшое количество дистиллированной воды для однородного распределения бактериальной взвеси по всей поверхности фильтра. Фильтровальные блоки следует стерилизовать перед началом каждого фильтрования. Быстрая очистка блоков от загрязнения после каждого фильтрования достигается путем использования ультрафиолетового стерилизатора, кипячения или обработки паром. Сначала фильтровальный аппарат устанавливают на склянку, в которой будет создаваться разрежение. Стерильный фильтр при помощи стерильного пинцета укладывают сеткой вверх на пористой пластине аппарата, а затем закрепляют воронку, которая удерживает мембрану. Пробу пропускают через фильтр под небольшим вакуумом. В верхнюю половину чашки для культуры помещают стерильную абсорбирующую прокладку и добавляют по каплям сверху обогащающую среду в количествах, достаточных для того, чтобы пропитать прокладку. Для колиформной группы применяют среду Эндо, а для фекальных колиформ — среду М-ЕС. Подготовленный фильтр пинцетом вынимают из фильтровального аппарата и помешают непосредственно на прокладку в чашке. Чашка вновь закрывается фильтром, и культура подвергается инкубации в течение 24 ч при температуре 35°С. Инкубацию на фекальные колиформы проводят, помещая чашки с культурой в водонепроницаемые пластиковые мешки и погружая их в водную ванну для инкубации при температуре 44,5°С. Окраска типичных колоний колиформ колеблется от розовой до темнокрасной с металлическим поверхностным блеском. Размер блестящего участка может изменяться от размера небольшой булавочной головки до полного покрытия всей поверхности колонии. Чашки, содержащие 20—80 колиформных колоний, считаются наиболее ценными. Плотность колиформ вычисляют в колиформах на 100 мл посредством умножения количества подсчитанных колоний на 100 и деления полученного результата на количество миллилитров фильтруемой пробы. [c.73]

При анализе проб воды объемом 10 мл, проводимом по методике определения содержания колиформ в бродильных трубках, не более чем в 10% проб (в любой месяц года) может быть отмечено присутствие бактерий колиформной группы. Если испытуемые пробы имеют объем 100 мл, то положительные результаты анализов (наличие колиформ) должны наблюдаться не более, чем в 60% всех проб. Когда используется методика определения содержания колиформ с помощью мембранных фильтров, то среднее арифметическое плотности колиформ из всех стандартных образцов, испытанных в течение месяца, не должно превышать 1 на 100 мл. [c.118]

Эффективность процесса дезинфекции определяется анализом на группу колиформных бактерий, являющихся индикаторами качества воды. Чувствительность бактерий к хлорированию хорошо известна, в то время как влияние хлорирования на простейшие и вирусы прослеживается не совсем четко. Личинки простейших и кишечные вирусы более устойчивы к действию хлора, чем колиформы и другие кишечные бактерии. Однако имеется очень мало данных, свидетельствующих о том, что существующая практика обработки воды несовершенна. Документально не были зафиксированы вспышки болезней, связанных с употреблением воды, содержащей вирусные или протозойные инфекции. [c.192]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология