Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Среда Эндо

    Среда Эндо (фуксин-сульфитный агар) [c.79]

    При наличии на среде Эндо колоний, типичных для группы кишечной палочки, — красных с металлическим блеском или без блеска, розовых с темным центром, розовых слизистых, бледно-розовых и бесцветных (не разлагающих лактозу) — приступают к микроскопическому их исследованию (мазок окрашивается по Граму). Выборочно изучают по 2—3 колонии разного типа из каждого объема исследуемой воды. Заключение о наличии бактерий группы кишечной палочки только по внешнему виду колоний, без их микроскопического исследования, недопустимо. В случае обнаружения в препарате смешанной культуры для дальнейшего микроскопического исследования выбирают другие колонии или производят рассев на чашку со средой Эндо с целью получения чистой культуры. При отсутствии в мазках грамотрицательных неспороносных палочек дается окончательный ответ (бактерии группы кишечной палочки не обнаружены). [c.148]


    Метод мембранных фильтров основан на концентрировании бактерий на мембранном фильтре из определенного объема анализируемой воды, выращивании их на среде Эндо при 37 0.5 С, дифференцировании выросших колоний и пересчете количества бактерий группы кишечных палочек на 1 л воды. Метод эффективен для контроля воды при централизованном водоснабжении. Малопригоден при исследовании воды с большим содержанием взвешенных частиц. [c.391]

    Метод мембранных фильтров —фильтрование воды через мембранные фильтры с последующим их инкубированием при 37°С на фуксин-сульфитной среде (Эндо) и подсчетом колоний, типичных для группы кишечной палочки. Результаты анализа выражаются в виде коли-индекса, т. е. количества кишечных палочек, содержащихся в 1 л воды. [c.121]

    Для определения бактерий кишечной группы посев производят ка среду ЭНДО поверхностным способом. Чашки Петри с застывшей в них средой ЭНДО вынимают из холодильника прямо перед посевом, и на поверхность среды выливают пробу, равномерным покачиванием чашки распределяя ее по всей площади. Затем открытые чашки ставят в вентилируемый барабан на просушивание, а когда вода испарится, их закрывают, переворачивают и ставят в термостат. [c.81]

    В связи с тем что В пробах молока могут быть другие бактерии, сбраживающие лактозу с образованием газа, для точного установления наличия кишечной палочки из забродившей жидкости делают посевы на специфическую среду Эндо. Если бродильная проба положительная и культура на среде Эндо дает ярко-красные колонии, можно считать установленным наличие в исследуемом субстрате кишечной палочки. Для полной же идентификации ее нужны еще дополнительные данные (отсутствие разложения желатины, отсутствие газа и кислоты при культуре на сахарозе и образование скатола и индола в мясо-пептонном бульоне). [c.207]

    Для определения колиформных бактерий в питьевой воде и воде очищенной используют метод мембранных фильтров. Исследуемую воду (3 по 100 мл) пропускают через 3 бактериальных фильтра из нитроцеллюлозы, которые затем помещают на среду Эндо и инкубируют при 37 °С 24 ч. Подсчитывают количество выросших на фильтрах лактозоположительных колоний, идентифицированных как колиформные бактерии. [c.419]

    Ниже приводятся схемы регистрации результатов исследований в журнале санитарно-бактериологических анализов воды (табл. 30). Результаты вносятся в журнал ежедневно, по мере выполнения отдельных этапов анализа. При выполнении анализа методом мембранных фильтров в этот журнал вклеивают снятые со среды Эндо фильтры после их обеззараживания. Фильтры вклеивают фотоклеем, который их не изменяет. (На фильтрах, снятых со среды Эндо, перед обеззараживанием по краю их обозначают № пробы и дозу посева воды простым карандашом). [c.143]


    Сухая среда Эндо [c.80]

    В основе бродильного метода лежит способность кишечных палочек сбраживать углеводы с образованием газообразных продуктов, главным образом водорода и углекислоты. Заданные объемы воды высевают в среду накопления бактерий, подращивают при 37 0,5°С и еще раз высевают их на плотную среду Эндо. дифференцируют после выращивания и определяют по таблице число бактерий группы кишечных палочек. [c.391]

    Для определения бактерий — показателей свежего фекального загрязнения — параллельно с посевом на среду Эндо производят посев 2—3 колоний из каждого сектора среды Эндо в лактозную среду с борной кислотой или желчно-лактозную среду с бриллиантовым зеленым и в дальнейшем проводят анализ, как при работе методом мембранных фильтров [c.394]

    Фильтры (снятые со среды Эндо) помещают в чашку Петри, на дне которой находится кружок фильтровальной бумаги. После [c.143]

    Метод прямого посева на среду Эндо. Исследование производится, как описывалось выше, причем на среду Эндо засевают. по 1 мл воды из каждого ее разведения (от [c.174]

    К нестандартным методам определения коли-титра воды относятся трехэтапный бродильный метод и метод прямого посева на среду Эндо. [c.147]

    Метод прямого посева воды на среду Эндо [c.149]

    Определение коли-титра воды открытых водоемов в местах наиболее интенсивного их загрязнения можно производить методом прямого посева на среду Эндо. Ввиду значительной загрязненности в данном случае количество пробирок с десятикратными разведениями исследуемой воды должно быть значительно большим, чем при исследовании мало загрязненной воды. Обычно степень разведения воды доводят не менее чем до 10 , что соответствует объему воды в 0,000001 мл. [c.149]

    При производстве санитарно-бактериологического исследования воды пользуются жидкими и плотными питательными средами. Из жидких сред употребляются мясо-пептонный бульон и глюкозо-пептонная среда Эйкмана. Наиболее употребительными плотными средами являются мясо-пептонный агар, фуксин-сульфитная среда Эндо и розоловый дифференциальный агар Киченко. [c.184]

    Готовая среда должна иметь кремовый цвет с легким розовым оттенком. Ярко-розовую или красную среду употреблять не следует, так как в ней лейкосоединение, содержащее фуксин, уже разрушено. Пригодность среды Эндо можно испытать, поместив на поверхность чашки кружок фильтровальной бумаги, смоченный 2% раствором формалина. Если вокруг кружка в течение 10 минут появится ореол красного цвета с металлическим блеском в зоне до двух миллиметров, среда может быть признана хорошей. [c.186]

    Бактериологическое исследование. Материал для выделения возбудителя — фекалии, кишечные биоптаты, лимфоузлы или ткань удаленного аппендикса, кровь, слизь из ротоглотки — отбирают в соответствии с клинической формой и фазой патогенеза заболевания. Для первичного посева материал, контаминиро-ванный сопутствующей микрофлорой, подвергают щелочной обработке. С этой целью используют 0,5%-й раствор гидроксида калия в 0,5%-м хлориде натрия, куда помещают бактериологическую петлю с материалом на 1 мин и затем этой же петлей делают посев на плотную среду. В качестве селективных используют агары IN, Серова или среду Эндо, которые после посева инкубируют при 32 °С в течение 24 — 48 ч или 24 ч при 37 °С и столько же при комнатной температуре. Одновременно материал помещают в среду накопления для холодового обогащения . Иерсинии в отличие от многих сопутствующих микроорганизмов хорошо растут при низких температурах в голодных средах, поэтому материал помещают в забуференный ИХН (pH 7,6) и выдерживают при температуре бытового холодильника (4... 10 °С). Высевы со среды накопления (из верхней части пробирки) делают на 3, 5, 10, 15-е сут на те же плотные среды. [c.155]

    О качестве проведенной дезинфекции изделий медицинского назначения судят по отсутствию золотистого стафилококка (S. aureus), синегнойной палочки Р. aeruginosa) и БГКП. Для этого методом смывов исследуют 1 % (не менее 3 — 5 единиц) одновременно обработанных изделий одного наименования. По 0,1 мл смывов, взятых марлевыми салфетками (5x5 см), наносят на поверхность желточно-солевого, кровяного агаров и среды Эндо и инкубируют засеянные чашки при 37 °С. Дезинфекцию считают эффективной, если через 48 ч на чашках не вырастают колонии указанных микроорганизмов. [c.436]

    Микробиологический анализ высокоомной воды на различных стадиях ее фильтрации производился по общепринятому методу подсчета общего количества бактерий и метода мембранных фильтров с последующим посевом на среду Эйкмана для идентификации кишечных палочек (ГОСТ 18396-73). В отдельных случаях производился высев проб воды на элективные среды среду Чапека, сраду Красильникова и сусло-агар. Для анализа отбирали 1 в 10 мл воды, а в слу11ае определения бактерий на среде Эндо - 333 мл. [c.27]

    Мембранный фильтр с выросшими на нем колониями бактерий переносят пинцетом на кружок фильтровальной бумаги большего диаметра, смоченный реактивом для определения оксидазной активности бактерий. Результат определяют через 2—4 мин. Колонии с синим ободком или посиневшие не учитывают. Мембранный фильтр после четкого проявления оксидазной реакции переносят на среду Эндо и не позднее чем через 5 мин пересеивают оксидазноотрицательные колонии в полужидкую среду с глюкозой инкубируют прн 37 0,5 С [c.390]


    При росте на секторах среды Эндо оксидазоотрицательных не окрашивающихся по Граму палочек 2—3 изолированные колонии разных типов из каждого сектора засевают в полужидкую среду с глюкозой и инкубируют 4—5 ч при 37 0,5° С. Образование кислоты и газа свидетельствует о наличии бактерий группы кишечных палочек. [c.394]

    Кроме химического анализа сточных вод проводят бактериологический (общее число бактерий сапрофи-тов, растуших на мясо-пептонном агаре, число бактерий oli на среде ЭНДО, некоторые (Ьормы патогенных микроорганизмов), радиологический (определение радиоактивного фона воды и осадков) и гельминтологический (определение количества яиц гельминтов в воде и осадках на разных стадиях очистки) анализы. [c.75]

    При посеве загрязненной воды для подавления роста сапрофитов, иногда заглушающих рост кишечной палочки, рекомендуется в среду Эндо перед разливом в чашки прибавить на 100 мл среды от 0,05 до 0,1 мл (90% жидкой перегнанной бесцветной карболовой кислоты ). Чашки с наложенньши на поверхность фуксин-сульфитной среды фильтрами дном вверх помещают в термостат при температуре 37°С на 18— 24 Часа. [c.133]

    Снятые со среды Эндо фйльтры помещают в сушильный шкаф, в. котором температура предварительно доведена до 170—180°С. Затем нагревание шкафа прекращают, выключив его из сети. Фильтры вынимают из шкафа после того, как температура снизится до 40—50°С. Обеззараженные фильтры с результатами посева наклеивают в графе Примечание журнала анализов или в отдельной тетради. [c.146]

    В чашку со средой Эндо вносят 1 мл воды из каждого разведения и распределяют равномерно шпаделем по поверхности среды. Посевы инкубируют при 43°С в течение 24 часов. Затем учитывают наличие на поверхности среды Эндо типичных для кишечной палочки колоний, без их подсчета. Наличие или отсутствие роста кишечной палочки отмечают в протоколе анализа соответствующим знаком (- - или —). [c.149]

    Можно также с мембранных фильтров сделать отпечатки на плотных элективных средах (Эндо, висмут-сульфитный агар, среда Плоскирева или Левина). Фильтры, снятые с плотной среды, после отпечатков помещают в среды накопления (желчный бульон и др.) с последующим высевом на среду Эндо через 24—48 часов. После отпечатков с фильтра материал распределяют шпаделем равномерно по поверхности питательной среды, как описано выше. [c.151]


Смотреть страницы где упоминается термин Среда Эндо: [c.291]    [c.37]    [c.139]    [c.141]    [c.148]    [c.155]    [c.161]    [c.421]    [c.23]    [c.388]    [c.390]    [c.392]    [c.393]    [c.394]    [c.54]    [c.55]    [c.121]    [c.147]    [c.153]    [c.164]    [c.170]   
Смотреть главы в:

Микробиология с техникой микробиологических исследований изд.4 -> Среда Эндо




ПОИСК







© 2025 chem21.info Реклама на сайте