Пластины стерилизующие и фильтрующи

Фильтрующие и стерилизующие пластины по основным размерам и предельным отклонениям должны соответствовать следующим нормам (в мм). [c.284]

Пластины стерилизующие и фильтрующие—плоские диски из асбеста и целлюлозы (или другого растительного волокна) имеющие на одной стороне отпечаток сетки, а на другой—специфическую волнистость. Цвет белый, допускается серый оттенок, придаваемый асбестом. Пластины не должны иметь запаха. Выпускают двух марок пластины СФ—стерилизующие и пластины Ф— фильтрующие. [c.1242]

Пластины стерилизующие и фильтрующие диаметром 300 и 500 мм упаковывают в бумажные конверты по 5 штук. Пластины меньших диаметров укладывают в пачки по 50 штук и упаковывают в плотную бумагу. Конверты и пачки складывают в круглые картонные коробки соответствующего размера в поперечнике. В коробку помещают пластины одного размера и одной толщины. [c.284]

Материалы стерилизующие и фильтрующие Пластины / стерилизующие [c.121]

При фильтровании в особенно трудных условиях иногда применяют асбестовые ткани. В отличие от волокон биологического происхождения асбест имеет кристаллическое строение, вследствие чего асбестовые ткани почти не адсорбируют веществ из растворов. Асбестовые ткани достаточно стойки к кислотам и щелочам, выдерживают высокие температуры. Однако из-за малой прочности и хрупкости изготовление тканей из чистого асбеста затруднено. Поэтому для получения прочной ткани и благоприятных условий ткачества к асбесту добавляют хлопок (15—20%). Наличие же в асбесте хлопка, улучшая его физико-механические свойства, резко снижает их химическую и тепловую стойкость. Промышленностью, кроме чисто асбестовых тканей, пластин стерилизующих СФ и фильтрующих Ф , асбестовых с хлопком, выпускается полотно армированное, Полотно армированное представляет собой ткань саржевого или полотняного переплетения, изготовленную по основе из латунной проволоки, а по утку из асбестовой ровницы, скрученной вместе с латунной или медной проволокой в нить. В последнее время стали выпускаться ткани, изготовленные по основе и утку из асбестовой ровницы, скрученной вместе со стеклянной [c.71]

Пластины стерилизующие и фильтрующие—плоские диски из асбеста и целлюлозы (или другого растительного волокна), имею- [c.260]

Наряду с этим широкое распространение в Украине и странах СНГ нащли применяемые за рубежом фильтры "Миллипор". Изготавливаются такие фильтрующие пластины из тонких целлюлозных, тефлоновых, поливинилхлоридных и нейлоновых волокон, которые, обладая свойствами стерилизующей фильтрации, не адсорбируют из растворов лекарственные вещества. [c.372]

ПЛАСТИНЫ АСБЕСТО-ЦЕЛЛЮЛОЗНЫЕ ФИЛЬТРУЮЩИЕ И СТЕРИЛИЗУЮЩИЕ [c.165]

Стерилизующие и фильтрующие пластины применяются для стерилизации и фильтрации биологических, медицинских и других препаратов, а также воды. [c.165]

Стерилизующие и фильтрующие пластины готовятся из асбеста и целлюлозы. [c.166]

Стерилизующие ( СФ ) и фильтрующие ( Ф ) пластины состоят из асбеста и целлюлозы (или другого растительного волокна) и применяются в виде прокладок между сетчатыми рамами фильтр-прессов для стерилизации и фильтрования пропускаемых через фильтр-пресс жидкостей, сывороток, прочих биологических препаратов и воды. [c.72]

В растворе трипсина pH доводят до 7,5—7,6 полученный раствор фильтруют через ватно-марлевую прокладку, а затем стерилизуют через фильтр Зейтца. Для этого последовательно используют асбестовые пластины 3/400 и ЕК8-2. Готовый раствор проверяют на активность и стерильность. [c.20]

Специальный прибор для проведения анализов на колиформы с помощью мембранного фильтра включает в себя фильтровальные блоки, фильтрующие мембраны, адсорбирующие прокладки, пинцент и чашки для культур. Обычный лабораторный фильтровальный блок (рис. 3.9) состоит из воронки, крепящейся к приемнику, который имеет пористую пластину, поддерживающую фильтрующую мембрану. Фильтровальный аппарат, изготовленный из стекла, фарфора и нержавеющей стали, стерилизуют в автоклаве или ультрафиолетовым облучением. Для фильтрования аппарат устанавливают на фильтровальной колбе с боковой ручкой в колбе создают разрежение для пропускания пробы воды через фильтр. В полевых условиях маленький ручной насос (шприц) используют для пропускания пробы воды через маленький аппарат, в котором установлена фильтрующая мембрана. [c.72]

Фильтрование используют для промышленного отделения микроорганизмов, в частности дрожжей и актиномицетов, от культуральной жидкости или готового продукта, а также для холодной стерилизации жидкостей (инъекционных лекарственных препаратов, питательных сред и т.д.). Стерилизующее фильтрование нашло широкое применение в лабораторной микробиологической практике [33, 117, 174, 192, 426]. Особенно часто используются мембранные фильтры. Их получают главным образом из эфиров целлюлозы — нитро-, ацетил- или ацетата целлюлозы [186, 210, 253, 347, 529], а также синтетических полимеров [529]. Эти вещества растворяют в соответствующих органических растворителях (ацетоне, хлороформе, спиртах и др.), разливают тонкой пленкой и высушивают. Основным поставщиком мембранных фильтров является фирма Millipore orp. Bedford, USA, изготовляющая пластины высокой пористости (80—85%), самого различного назначения и диаметра пор — от 0,005 до 5 мкм скорость фильтрования через такие фильтры составляет 0,005—560 мл/см в минуту соответственно. Различные мембранные фильтры выпускаются также отечественной промышленностью — Мытищинской фабрикой мембранных фильтров. Характеристика фильтров приводится в обзоре Эриха [347] и монографии Т. И. Тихоненко [253]. [c.197]

Объем пробы, подлежащей фильтрованию, зависит от ожидаемого количества бактерий. В идеальном варианте анализа получают около 50 колиформных колоний при общем количестве колоний не более 200. Ввиду того что предвидеть количество бактерий в пробе весьма затруднительно, следует анализировать два или три объема той же пробы. Когда объем фильтруемой пробы меньше 20 мл, в воронку перед фильтрованием добавляют небольшое количество дистиллированной воды для однородного распределения бактериальной взвеси по всей поверхности фильтра. Фильтровальные блоки следует стерилизовать перед началом каждого фильтрования. Быстрая очистка блоков от загрязнения после каждого фильтрования достигается путем использования ультрафиолетового стерилизатора, кипячения или обработки паром. Сначала фильтровальный аппарат устанавливают на склянку, в которой будет создаваться разрежение. Стерильный фильтр при помощи стерильного пинцета укладывают сеткой вверх на пористой пластине аппарата, а затем закрепляют воронку, которая удерживает мембрану. Пробу пропускают через фильтр под небольшим вакуумом. В верхнюю половину чашки для культуры помещают стерильную абсорбирующую прокладку и добавляют по каплям сверху обогащающую среду в количествах, достаточных для того, чтобы пропитать прокладку. Для колиформной группы применяют среду Эндо, а для фекальных колиформ — среду М-ЕС. Подготовленный фильтр пинцетом вынимают из фильтровального аппарата и помешают непосредственно на прокладку в чашке. Чашка вновь закрывается фильтром, и культура подвергается инкубации в течение 24 ч при температуре 35°С. Инкубацию на фекальные колиформы проводят, помещая чашки с культурой в водонепроницаемые пластиковые мешки и погружая их в водную ванну для инкубации при температуре 44,5°С. Окраска типичных колоний колиформ колеблется от розовой до темнокрасной с металлическим поверхностным блеском. Размер блестящего участка может изменяться от размера небольшой булавочной головки до полного покрытия всей поверхности колонии. Чашки, содержащие 20—80 колиформных колоний, считаются наиболее ценными. Плотность колиформ вычисляют в колиформах на 100 мл посредством умножения количества подсчитанных колоний на 100 и деления полученного результата на количество миллилитров фильтруемой пробы. [c.73]

Для изготовления фильтрующих и стерилизующих пластин применяется асбест 3-го и 4-го сортов для изготовления же армированного асбестового полотна и асбостальных листов, кроме указанного асбеста, требуется соответственно применение медной или латунной проволоки и стальных листов. [c.91]

В реактор с питательной средой (37°С) засевают нативную взвесь бактерий из расчета 50—150 млн. клеток на 1 мл среды. Маточный фаг добавляют в количестве 0,01—0,1% объема питательной среды. Содержимое тщательно перемешивают воздухом. Воздух, подаваемый в реактор под давлением, поступает через стерильный ватно-угольный фильтр с активированным углем. Лизис проходит при температуре 37°С в течение 4—10 ч (в зависимости от вида бактериофага). Полноту лизиса определяют визуально (по полноте прозрачности). По завершении процесса добавляют консервант хинозол (0,01%). Через 1,5—2 ч после добавления консерванта фаголизат фильтруют через стерилизующие пластины и разливают в стерильных условиях во флаконы по 100, 50 и 25 мл. [c.580]

Фильтр заряжают пластинами марки EKS-2 и стерилизуют ав токлавированием под давлением 0,5 атм. (температура 110°) i течение 1 часа. [c.33]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология