Асимметричная транскрипция

В совокупности эти результаты показывают, что РНК-полимераза связывается, причем асимметрично, с участком ДНК размером около 44-50 п. н., если считать от стартовой точки против хода транскрипции, и около 20п. н.-по ходу транскрипции. Последние 25-30 п. п. в связывающем участке, расположенные против хода транскрипции, менее прочно взаимодействуют с ферментом. Эта область связывается с ферментом достаточно хорошо, чтобы быть экранированной при мягкой обработке эндо- или экзонуклеазами, но не может выдерживать более жесткие условия обработки, используемые для получения целых фрагментов связанного ферментом участка. Приведенные данные хорошо согласуются с моделью, согласно которой существует единый связывающий сайт для РНК-полимеразы, в котором (как мы увидим) некоторые точки контакта имеют более важное значение, чем другие. [c.143]

Рис. 3-19. Ферментативный синтез мРНК на матрице ДНК (асимметричная транскрипция ДНК).

Асимметричная транскрипция — механизм биологического синтеза РНК, доказывающий, что in vivo транскрибируется только одна полинуклеоТидная цепь ДНК-матрицы. [c.38]

Кроме ферментов в ядрах содержатся негистоновые белки, имеющие, по-видимому, отношение к структуре хроматина. К ним относятся так называемые H.MG-белки, принадлежащие к двум классам HMQ 14 и 17 и H.MG 1 и 2. (Название H.MQ-белков происходит от англ. high mobility group — группа [белков с высокой подвижностью, так как в обычных системах гель-электрофореза эти белки движутся быстрее других негистоновых белков хроматина.) Эти белки содержат много положительно и отрицательно заряженных аминокислотных остатков, причем они располагаются асимметрично iV-концевая часть богата кислыми остатками, а С-концевая — основными. Возможно, HMG-белки участвуют в процессах транскрипции и репликации. [c.238]

Гурский, Готтих и соавторы предложили код белково-нуклеинового узнавания, определяющий регуляцию транскрипции (1976). Предполагается, что участок регуляторного белка состоит из двух антипараллельных сегментов полипептидной цепи, образующих -структуру. Узнавание основано на комплементарности этой структуры и последовательности нуклеотидных нар ДНК. Важное свойство такой последовательности состоит в асимметричном распределении гуанинов между двумя нитями ДНК. В предлагаемом коде шесть аминокислотных остатков — Сер, Тре, Асп, Гис, Глн, Цис—и их последовательность в сте-реоспецифичном участке белка определяет последовательность пар оснований ДНК, с которой данный белок преимущественно связывается. Код, разработанный на основе стереохимии, подтвержден взаимодействием Лак-репрессора с Лак-опероном и другими примерами. [c.288]

Выше уже отмечалось, что каждая цепь ДНК имеет направление, т. е. представляет собой вектор (или асимметрична в пространстве). Более того, обе цепи ДНК в двойной спирали антипараллельны, т. е. направлены в противоположные стороны. Транскрипция происходит в одних местах с одной, в других — со второй цепи ДНК. При этом молекулы фермента движутся то в одном, то в обратном направлениях, как это указывает положение соответствующего промотора. В силу однониточности РНК, она не может образовать [c.192]

Комплементарность по отношению к ДНК. В настоящее время mohiho счв тать твердо установленным, по крайней мере для микроорганизмов, тот факт, что только одна из двух цепей ДНК (но ДНК при этом должна обязательно иметь двухцепочечную структуру) транскрибируется в РНК. Таким образом, транскрипция происходит асимметрично и избирательно, на одной [c.504]

Все типы РНК синтезируются одинаковым способом. Синтез РНК идет асимметрично, т. е. транскрипции подвергается только одна из двух цепей ДНК [4]. Этот процесс идет in vivo в условиях нормальной жизнедеятельности клетки. [c.41]

Предполагаемые способы образования процессированных псевдогенов полипептидов. Структура процессированных генов полипептидов позволяет предположить, что они являются ДНК-копиями соответствующих мРНК. Согласно одной из моделей, их образование и транспозиция осуществляются путем обратной транскрипции РНК с последующим встраиванием кДНК в геном в месте его асимметричного разрыва (рис. 10.45). При этом происходит [c.268]

Переключение типа спаривания инициируется сайт-специфической эвдонуклеазой (НО-эндонуклеазой), являющейся продуктом гена НО, Этот фермент делает двухцепочечный разрез в ДНК локуса МАТ, в результате эта область вырезается и затем ре синтезируется, при этом матрицей служит молчащий ген противоположного типа спаривания (рис. 10-30). Транскрипция гена НО, определяющего, когда и где происходит переключение, строго контр о Л1 у ется. С помощью генетического анализа было показано, что контроль обеспечивают по меньщей мере щесть регуляторных генов (от SWI 1 до SWI 6). В связи с тем, что при почковании дрожжевые клетки делятся асимметрично, одна из двух образовавшихся клеток больше ( материнская ), чем другая ( дочерняя ). Большинство материнских клеток в ходе дальнейшего роста переключает тип спаривания, а вновь образовавшиеся дочерние клетки (возникающие из почки) не синтезируют продукт гена НО и не способны переключаться до тех пор, пока г )и делении они не станут материнскими клетками (рис. 10-31). Асимметрия переключения оказалось связанной с асимметричным наследованием белка SWI 5, который Г5)исоединяется к ДНК перед геном НО и необходим для его транскрипции. Полагают, что белок SWI5 (либо его активная форма) наследуется лишь материнской клеткой Остается непонятным, почему этого белка нет в почке, но характер его наследования может служить моделью асимметричной сегрегации некоторых признаков, наблюдаемой у высших эукариот. [c.202]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология