Белки на кварцевых или стеклянных

Для озоления используют платиновую, никелевую,фарфоровую, кварцевую и стеклянную посуду. Были предприняты попытки избежать потерь иода путем высушивания пробы в восстановительной атмосфере [5.172], а также введением в пробу перед озолением растворов гидроксида илн карбоната натрия или калия. Значительно меньше иода теряется при добавлении к пробе солей калия, чем натрия [5.171, 5.173, 5.174], но в присутствии соединений натрия происходит более полное окисление. Не рекомендуется добавлять к пробе ацетаты щелочных металлов и соединения кальция [5.174]. Потери иода можно уменьшить, если нагревание проводить в тиглях или колбах, закрытых крышками [5.169, 5.172], в небольшой кварцевой окислительной трубке [5.175] или стеклянной трубке (длина 12,5 см, диаметр 1,25 см) [5.171, 5.173, 5.176]. Продолжительность озоления следует по возможности сокращать например, сыворотка белка озоляется 10 мин, если ее смешать с карбонатом и хлоратом натрия и нагреть до 600 °С в небольшой трубке для окисления [5.171 ]. В одном из методов растворяют большую часть иода в золе, полученной за очень короткое время озоления, а остаток подвергают дополнительному окислению [5.96, 5.169], [c.141]

Движение границы между белком и буфером в средней части кюветы можно наблюдать непосредственно только в том случае, если испытуемый белковый раствор окрашен, как, например, растворы гемоглобина или гемоцианина. Для регистрации движения неокрашенных белков была использована фотография в ультрафиолете (известно, что все белки поглощают ультрафиолетовый свет). Это потребовало замены стеклянных кювет кварцевыми. [c.89]

Наиболее распространенны.ми методами иммобилизации белка на кварцевых или стеклянных поверхностях являются физическая адсорбция и ковалентное связывание. По данному вопросу имеется значительное ко.тичество информации (см., например, обзоры [20], [34], [53-55]) и для подробного ознакомления отсылаем читателя к этим обзорам, а в этой главе ограничимся рассмотрением общих принципов. [c.528]

Электрофоретическое движение белковых частиц, несомненно, определяется их электрическим зарядом, т. е. ионизированными группами белковой молекулы. Возникает вопрос, только ли ионные группы, расположенные на поверхности глобулярных белковых частиц, обусловливают это движение или же ионные группы, спрятанные внутрь белковой частицы, также принимают в этом участие В опытах с различными клетками и бактериями было показано, что их электрофоретическое поведение определяется поверхностным слоем. Кроме того, было установлено в некоторых случаях, что кварцевые частицы, покрытые слоем адсорбированного белка, электрофоретически ведут себя таким же образом, как белок, из которого образован их поверхностный слой [87]. Из сказанного следует, что подвижность белковых частиц определяется потенциалом их поверхности. Поскольку этот потенциал выявляется только во время движения частицы или окружающего раствора в электрическом поле, его называют электрокинетическим потенциалом или -.-потенциалом. Его величина определяется путем электрофореза, или, если мы имеем дело с белковыми мембранами, путем электроосмоса, или, наконец, измерением потенциалов течения. Последние возникают в результате продавливания раствора через поры белковой мембраны. При исследовании величины С-потенциала покрытой белком поверхности, например, покрытых адсорбированным белком стеклянных капилляров, все три метода дают одинаковые [c.96]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология