Проверка стерильности

Для проверки стерильности питательные среды после стерилизации выдер-ншвают 2—3 суток в термостате при температуре 25—27° С. В том случае, если на средах появляются микробы, их готовят вновь. [c.79]

После автоклавирования среды для проверки стерильности выдерживают 2—3 суток в термостате при 30°. Если в средах обнаруживается рост микроорганизмов, их готовят заново. [c.35]

Проверка стерильности (см. гл. 4) должна проводиться для каждого фильтрованного образца. [c.22]

Во многих отраслях промышленности, особенно в фармацевтической, приходится проводить испытания продукта на стерильность. Стандартный метод такого испытания состоит в том, что проба продукта помещается в питательную культуральную среду и проводится ее инкубация, при этом через некоторые промежутки времени проверяется, не произошло ли помутнения, что свидетельствовало бы о росте бактерий. Однако если в испытуемом продукте содержатся микробные ингибиторы, такие, как антибиотики или антисептики, то этот метод испытания на стерильность применять нельзя, поскольку ингибиторы препятствуют росту бактерий. До того как для проверки на стерильность начали применять мембранную фильтрацию, единственной возможностью, которая могла позволить испытать лекарственный аппарат, содержащий антимикробные агенты, на стерильность, было разбавление небольшой дозы лекарства в таком большом количестве культуральной среды, когда можно считать, что ингибитор не оказывает никакого действия. Однако из-за малости пробы при этом можно обнаружить присутствие микроорганизмов лишь в том случае, когда их очень много. В настоящее время для установления стерильности лекарств предпочитают использовать мембранную фильтрацию, чтобы выделить микроорганизмы из продукта, а затем определяют возможное присутствие жизнеспособных микроорганизмов на самой мембране, помещая ее в питательную среду. Методы мембранной фильтрации предписывается использовать согласно Фармакопее США 1979 г. [228], Европейской фармакопее 1978 г. [70], а также предписаниям Управления США по контролю за качеством пищевых продуктов, медикаментов и косметических средств (кодекс федеральных законов 21 436). Фармакопея США обязывает применять мембранную фильтрацию для испытания на стерильность не только продуктов, содержащих антибактериальные вещества, но и любых лекарственных средств, которые могут быть растворены в жидкости, не содержащей ингибиторы. Мембранная фильтрация рекомендуется также для проверки стерильности отдельных деталей шлангов различных медицинских устройств и инструментов, которые использук)тся для введения стерильных лекарств. Инструмент тщательно промывают стерильным бульоном или водой, а затем промывочную [c.200]

После стерилизации и охлаждения для проверки стерильности среду ставят на сутки в термостат. [c.596]

После приготовления среду не стерилизуют. Ее разливают по стерильным пробиркам п ставят в термостат на сутки для проверки стерильности. [c.605]

По окончании стерилизации под давлением в автоклаве или в текучем паре питательные среды выдерживают сутки в термостате для проверки стерильности, после чего их хранят в защищенном от пыли помещении (в шкафу или в ящике). [c.152]

Агаровую среду (партию из 25—30 пробирок) засевают стерильно спорами продуцента. Засеянные пробирки помещают на 7—12 суток в термостат с температурой 26—28°. За это время на поверхности агара вырастает продуцент в виде желтовато-белого мучнистого налета. Пробирки тщательно проверяют и дефектные (имеющие трещины, слабые ватные пробки или нетипичный рост продуцента) отбраковывают. На пробирки наклеивают этикетки с указанием названия продуцента, даты посева, номера партии посевного материала. После проверки стерильности и активности (количество окситетрациклина, образуемое штаммом) посевной материал передается на производство. [c.69]

Проверка стерильности должна проводиться для всех партий среды и трипсина перед их использованием. Поскольку некоторые тесты длятся несколько недель, важно иметь в своем распоряжении адекватные стоки. Использование нетестирован-ной среды — верный путь внести бактериальное загрязнение во все линии клеток, используемые в лаборатории. Культуры клеток также следует постоянно тестировать на загрязнение. Это тестирование включает в себя как анализ культуральной среды, в которой росли клетки, так и анализ самих клеток. [c.110]

Среду разливают в пробирки (по 10 мл), закрываемые ватно-марлевыми пробками. Затем пробирки стерилизуют в автоклаве 30 мин при избыточном давлении пара 1,0 кгс1см , охлаждают и помещают в термостат при температуре 32—34° С на 48 ч для проверки стерильности среды. Последнюю хранят при комнатной температуре не более 1 месяца. Посев культуры производят в 2—4 пробирки. Для посева выбирают пробирки, в которых культура хорошо развита, активна и проверена на чистоту. Засеянные пробирки выдерживают в термостатной камере при температуре 32—34° С в течение 24—48 ч для проверки стерильности, а затем их хранят при комнатной температуре. В производстве постоянно должны храниться не менее 2—4 пробирок со средой. Культуры пересевают на новую жидкую среду каждые 7—10 дней, а на твердую среду — 1 раз в 30 дней. [c.258]

Можно стерилизовать семена парами хлороформа (20 мин) или диоцидом (20 мин, 1 1000). Проверка стерильности семян проводится при посеве части семян на МПА или бобовый агар. После прорастания семян их переносят стерильным пинцетом в пробирки с агаровой средой, куда одновременно с посевом семян вносят 1 мл взвеси культуры клубеньковых бактерий. Пробирки снаружи обертывают плотной бумагой так, чтобы она закрывала слой агара и семена (для создания корням затемненных условий). Растения выращивают при естественном или искусственном освещении. По мере развития растений проводят наблюдения за образованием клубеньков, за массс й растений и содержанием в них азота. Контролем служат пробирки, в которые не вносили бактерий. Активные или эффектив- [c.185]

В Радиевом институте им. В. Г. Хлопина разработаны также условия стерилизации препарата — выделение из спиртового раствора в боксе под ультрафиолетовым облучением с последующим фильтрованием нафтидона через бактериальные фильтры. Проверка стерильности и апирогенности препарата выполнена на Второй станции переливания крови (Ленинград). [c.504]

Нельзя допускать образования пузырьков воздуха, незалитых частей дна чашки, попадания среды на края и крышку. Чашки оставляют на столе для застывания среды, после чего их помещают в термостат вверх дном не более чем по 4 чашки вместе. Посевы выращивают при 37 0,5°С в течение 24 2 ч. При обследовании водоемов, загрязненных сточными водами, выращивание посевов производят при 20—22° С в течение 48 2 ч. Для проверки стерильности питательной среды и воды, используемой для разведения, в каждом анализе ставят две контрольные Чашки — с питательным агаром и с посевом 1 мл стерильной воды. [c.189]

На 1 кг серозема вносилось по 20 мг Р2О5 в виде меченого монокальцийфосфата. Повторность в опыте трехкратная. Кроме фосфатов, в некоторые варианты вносились азотнокалийное удобрение и маннит с целью усиления биологической фиксации фосфатов. Опыт был проведен в стерильных и нестерильных условиях. Сосуды с почвой выдерживались в термостате в течение одного месяца-при температуре 25°. После этого была проведена проверка стерильности почвы, подтвердившая ее полную сохранность до конца опыта в стерильных сосудах и бурное развитие микробной деятельности в нестерильных условиях. Различие между неодинаково удобренными вариантами опыта установить не удалось, поэтому в табл. 9 приведены средние данные по трем вариантам (9 со- [c.13]

Процесс производства почвенного нитрагина слагается из следующих основных операций (Доросинский, 19656, 1970) 1) заготовка почвы, 2 расфасовка, стерилизация и проверка стерильности почвы, 3) выращивание маточной культуры клубеньковых бактерий, 4) внесение клубеньковых бактерий в почву, 5) выдерживание нитрагина для размножения клубеньковых бактерий, 6) проверка качества приготовленного нитрагина, 7) укупорка, этикетировка, хранение и рассылка готового нитрагина. [c.205]

Для лечения вялотекущих инфекций, например хронического фурункулеза и пиодермий стафилококковой этиологии, в бактериологической лаборатории можно приготовить гретую аутоеакцину. Для этого гной фурункула засевают на пластинчатый агар и на следующие сутки колонии стафилококка пересевают на скошенный агар (I этап). Чистую культуру стафилококка на скошенном апц>е смывают изотоническим раствором натрия хлорида, взвесь прогревают на водяной бане при температуре 70 °С в течение 1 ч и отсевают на питательный агар для проверки стерильности (П этап). С помощью стандарта мутности, изготовленного из пирекссгекла, взвесь стафилококка разводят до соответствующей концентрации и вновь проверяют на стерильность (Ш этап). [c.77]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология