Клеточная стенка возможность присутствия пек

ГОГО полового способа для введения в растение признака устойчивости к болезни. Однако сейчас стало возможным пара-сексуальное слияние культивируемых соматических клеток. Обычные растительные клетки не могут сливаться в культуре, так как их стенки препятствуют объединению протопластов. Однако с помощью смеси ферментов, разрушающих клеточные стенки, их можно растворить. Вначале для отделения одной клетки от другой используется пектиназа. Затем для разрушения стенок отдельных клеток применяют целлюлазу. Протопласты (содержимое живых клеток) можно затем собрать в иде осадка путем осторожного центрифугирования, обращаясь с ними как со свободноживущими микроорганизмами, лишенными оболочек (рис. 14.20). Если разрушение стенок производят в гипертоническом растворе, чтобы предотвратить разрыв протопластов, то изолированные ( голые ) протопласты остаются живыми. В соответствующих условиях у них может вновь образоваться стенка, они начинают делиться и затем регенерируют в целое растение. Если протопласты от двух разных видов растений смешать в присутствии индуцирующих слияние агентов, таких, как полиэтиленгликоль, то небольшая часть этих протопластов сольется друг с другом, образовав гетерокарионы (рис. 14.21), т. е. клетки, содержащие множество ядер от разных источников (рис. 14.22). При слиянии ядер могут образоваться настоящие парасексуальные гибриды. [c.436]

Как указывалось выше (см. 2.2), структурированный скелет клеточной стенки построен из целлюлозных фибрилл. Они присутствуют во всех клеточных стенках, содержащих целлюлозу, в том числе в бактериях, водорослях, семенных волосках, лубяных волокнах. Животный туницин также организован в виде фибрилл [128, 211]. Фибриллы представляют собой агрегаты молекул целлюлозы и содержат упорядоченные и менее упорядоченные участки. Из-за малого диаметра фибрилл подробные исследования их структуры стали возможными лишь с помощью электронной микроскопии. Увеличение разрешающей способности микроскопов и усо- [c.78]

Пероксидаза является индуцибельным ферментом, индукторами которого могут быть разнообразные физические, химические и биологические факторы, в том числе особого внимания заслуживают фитогормоны, как регуляторы многих физиологических процессов [Кулаева, 1978 Иштирякова, 1980]. Для пероксидазы доказано ее участие в образовании ауксина и этилена, восстановлении нитратов и нитритов, т. е. в азотном обмене, ростовых и дыхательных процессах [Рубин, Ладыгина, 1974]. В присутствии пероксидазы регулируется созревание и старение тканей, а также синтез лигнина, входящего в состав клеточных стенок. Возможно, физиолого-биохимическая роль пероксидазы клеточной стенки заключается в разрушении ИУК, которая может изменять физиологическое состояние клетки [Raa, 1973]. [c.19]

Вещество-рецептор — вещество, присутствующее в определенных участках клеточной стенки бактерии и делающее возможным заражение тем или иным специфическим бактериофагом. [c.452]

Но мы еще не закончили. Почему подкисление способствует растяжению клеточных стенок Чтобы ответить на этот вопрос, мы должны вернуться к структуре клеточной стенки растения (рис. 2.31). Стенка состоит из длинных молекул целлюлозы, связанных между собой полисахаридными мостиками, образованными смесью сахаров, таких, как галактоза, арабиноза и ксилоза. Полисахаридные мостики, составляющие часть стенки, обычно называют гемицеллюлозой. Длинные целлюлозные молекулы, соединенные друг с другом этими поперечными связями, обусловливают жесткость клеточной стенки. При необратимом растяжении клеточной стенки, что происходит обычно в процессе роста, целлюлозные цепи должны скользить относительно друг друга, и это может, быть достигнуто только в том случае, если поперечные связи между цепями целлюлозы будут разорваны. Когда растяжение стенки завершается, поперечные связи образуются вновь, фиксируя целлюлозные цепи в их новом положении (рис. 9.18). В результате размеры клетки увеличиваются. Чтобы кислота могла способствовать увеличению растяжимости стенки, она, очевидно, должна разрывать поперечные связи между молекулами целлюлозы. Было высказано предположение, что в клеточной стенке имеется рН-зависимый фермент, разрушающий такие связи. Этот фермент не действует при pH 6,0—7,0, но становится высокоактивным при pH около 5,0. Когда под влиянием ауксина, присутствующего внутри клетки, ионы Н+ накачиваются в клеточную стенку, фермент активируется и разрушает поперечные овязи целлюлозные цепи освобождаются и получают возможность скользить одна относительно другой. Такое скольжение осуществляется под действием тургорного давления клеточного содержимого, что вызывает растяжение стенки, и увеличение размеров клетки. Мы еще не знаем природу этого гипотетического фермента, о существовании которого свидетельствует то, что некоторые химические соединения, препятствующие обычно действию ферментов, способны ингибировать индуцированное кислотой растяжение стенок изолированных клеток. [c.281]

Постоянное увеличение содержания сиреневого альдегида указывает на то, что полимер, содержащий сиринговые группы, менее растворим, чем полимер, содержащий гваяциловые группы. Это может объясняться структурными различиями полимеров или различием в их расположении в клеточной стенке. Возможно также, что содержащий сиринговые группы лигнин растворяется в самом начале варки. Однако эти группы присутствуют в форме, при которой они не могут быть окислены до сиреневого альдегида. Результаты показывают также, что сумма альдегидов не имеет прямого отношения к количеству лигнина в щелоке, определенному ультрафиолетовой абсорбцией. Это вызывает сомнение в правильности определения содержания лигнина только измерением ультрафиолетового поглощения. [c.33]

Бактериальное окисление сульфидных минералов — электрохимический процесс. В присутствии нескольких сульфидов создаются гальванические пары, причем микроорганизмы окисляют прежде всего сульфид с меньшим электродным потенциалом. Это обусловливает возможность избирательного окисления отдельных минералов в концентратах. Окисляемое железо (II) поступает в пери-плазматическое пространство клеточной стенки, где электрон акцептируется медьсодержащим белком — рустицианином, а затем переносится по цитохромной цепи через цитоплазматическую мембрану. Возникающий при транспорте электронов и протонов потенциал обеспечивает синтез молекул аденозинтрифосфата (АТФ). [c.151]

Установлено [27], что размеры микрообластей отдельных комионентов в клеточной стенке древесины не превышают 2,0—5,0 нм. Доказательства микрогетерогенности вещества межфибриллярно-го пространства приведены в работах П. П. Эриньша и сотр. [7]. По всей вероятности, ГМЦ в этих микрорайонах не имеют кристаллической организации, а возможна лишь определенная ориентация их молекул. Тем более что присутствие в микрообластях смешанных полимеров молекулы лигнина, имеющего глобулярное строение, препятствует ассоциации молекул ГМЦ между собой и образованию термодинамически равновесной системы надмолекулярной структуры высокой стеиени ориентации. Ацетатные группы ГМЦ и другие ответвления также препятствуют их кристаллизации. [c.152]

Присутствие желтых пигментов (например, флавонов, антоцианинов или других гидрофильных соединений, которые могут находиться либо в клеточном соке, либо в клеточных стенках) может вызвать снижение или полное прекращение фотосинтеза в сравнительно длинноволновой области спектра. Возможно, что именно этой причиной объясняется обнаруженное Бернсом [55, 57] прекращение фотосинтеза в области к > 450—465 м у некоторых хвойных деревьев, например у ели и серебристой сосны (см. ниже). [c.594]

К посторонним (экстрактивным) веществам относятся в основном органические соединения, присутствующие в некоторых видах древесины. Боль-наинство их можно выделить посредством нейтральных растворителей, таких, как эфир, бензол, спирт, ацетон, бензин, вода или пар, и, насколько нам известно, они не являются частью клеточной стенки. Эти посторонние вещества часто называют экстрактивными веществами, хотя во многих случаях их полная экстракция дал<е из мелко раздробленной древесины чрезвычайно затруднительна, а временами и невозможна. Когда посторонний компонент нельзя выделить с помощью нейтрального растворителя, его присутствие может быть обнаружено при микроскопическом исследовании среза древесины (нанример, кристаллы щавелевокислого кальция, зерна крахмала и т. д.). В некоторых случаях оказалось возможным растворить клеточные стенки и оставить наиболее стойкие посторонние компоненты —вероятно в сильно измененном виде [II. [c.457]

Милл предположил, что в клеточных стенках флокулирующих дрожжей, находящихся в стадии дефлокуляции, присутствует гипотетическое вещество XN, наличие которого в достаточном количестве делает клетки нефлокулирующими. По мере уменьшения содержания этого вещества потенциальная способность клеток к флокуляции будет увеличиваться. Таким образом, по мнению Милла, различная способность дрожжей к флокуляции может отражать их различную способность к синтезу XN, Способность дрожжей к флокуляции будет развиваться у дрожжей нри росте в условиях ограниченной скорости синтеза вещества XN, возможно, вызванной истощением среды (или самого XN или веществ, требующихся для его синтеза). Согласно точке зрения Милла, группа веществ, замедляющих флокуляцию, может включать или само вещество XN илп промежуточные вещества его синтеза. [c.184]

В то же время было показано, что прямая конденсация нативного ант]1-геиа на нос11теле приводит к получению сорбента со слишком сильным сродством и элюирование антител возможно только в жестких условиях [4], например в присутствии б М гуанидин-НС1. В таких условиях наблюдается денатурация или нежелательные изменения в структуре антител. Для умеиь-[][ения сродства аффинных сорбентов в качестве исходного материала целесообразно использовать клеточные стенки родственных микроорганизмов, лающих перекрестную реакцию с исследуемым микроорганизмом, или изменить структуру исходного полисахарида путем обработки в кислых или щелочных условиях, аминированием и т. п. [c.191]

Большинство гидролитических ферментов микроорганизмов относят к индуцированным, т. е. предполагается, что образование этих ферментов возможно только в присутствии в среде (чаще всего) субстрата или того или иного специфического индуктора. Если большинство микроскопических грибов выделяет целлюлазу в окружающую среду, то у бактерий фермент очень часто связан со структурами клеточной стенки, и для его выделения клетка должна быть разрушена. [c.54]

Поскольку цепочки сахаров имеют ограниченную гибкость, даже небольшой N-связанный олигосахарид выдается над поверхностью гликопротеина (рис. 8-65), и может, таким образом, ограничивать присоединение других макромолекул к поверхности этого гликопротеина. В результате присутствие олигосахарида в некоторых случаях обусловливает относительную устойчивость гликопротеина к действию протеаз. Возможно, олигосахариды обеспечивали предковой эукариотической клетке защитную оболочку, которая, в отличие от жесткой клеточной стенки бактерий, позволяла ей изменять форму и двигаться. С тех пор олигосахариды могли модифицироваться для выполнения и других функций. [c.63]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология