Направленность репликации

Рис. 9.15. Пары БУ—А и БУ—Г. тем, что мы не знаем, какой вырожденный кодон находится в данном месте ДНК. Однако определение аминокислотного состава ряда ревертантов амбер-мутантов (т. е. результатов мутаций, приводящих к бессмысленному кодону УАГ) в белке головки фага Т 4 показало, что замены пар оснований в различных локусах цистрона происходят с разными вероятностями [143]. Мутации ЦАА-)-УАА в локусе г II фага Т4 индуцируются ЫНгОН с частотами, меняющимися в 20 раз в зависимости от локуса ДНК [144]. Сходные факты обнаружены при ультрафиолетовой реверсии этих мутаций [145]. Все приведенные выше факты могут объясняться и тем, что вероятности мутаций внутри цистрона зависят от направления репликации гена, близости контрольных, регулирующих элементов и т. д. Однако Кох получил прямые доказательства влияния соседних пар оснований на мутагенез [146].

Во всех случаях, кроме матричной полимеризации, пуассоновское распределение представляет верхний предел гомогенности полимеров, который может быть достигнут в любом полимеризационно.м процессе, в котором происходит рост линейных макромолекул в одном направлении . Репликация, включая матричную полимеризацию, приводит, конечно, к полимерам единого размера и структуры. Такие материалы образуются в биологических системах, например при синтезе ферментов в клетках. Примеры полимеризации небиологического характера с применением матриц были приведены в работе [5]. Современный обзор этой проблемы можно найти у Шульца [139 . [c.40]

Общее направление репликации Рнс. 38.16. Процесс полунепрерывной, одновременной репликации обеих цепей двухцепочечной ДНК. [c.76]

А — родительская молекула ДНК Б — промежуточные репликативные формы В — дочерние молекулы ДНК после завершения процесса репликации и расхождения 1 — точка начала репликации черными стрелками показано направление репликации [c.49]

А, Б, В сплошные линии — двунитевые молекулы ДНК, пунктирные — их копии при допущении консервативной репликации. Г антипараллельные нити ДНК (- - и —) изображены сплошными и пунктирными линиями. Стрелки — направление репликации [c.158]

Стрелка в опТ— направление переноса ДНК при конъюгации стрелки в оп V — направление репликации стрелки над генами — направление их транскрипции, координаты даны в т.п н [c.76]

Рис. 3.18. Строение 2-микронной ДНК дрожжей (формы А и В). Тонкие стрелки — локализация и направление транскрипции генов стрелки по диаметру — участки сайт-специфической рекомбинации стрелки в оп-сайте — направление репликации

Гены фага обозначены цифрами I -X через (+)-нить обозначена ДНК, выделяемая из фага комплементарная нить обозначена через (-). Стрелки на карте — направление репликации с разных ол-сайтов тонкие линии — (-)-нить штриховая линия — вновь синтезированная (+)-нить. Масштаб указан в т.п.н. [c.124]

Место начала репликации ДНК и направление репликации [c.44]

Один из методов, использованных для выяснения направления репликации у . oli, состоял в следующем. В хромосому бактерии в сайте att (рис. 15-1) встраивали профаг X, а во многие другие сайты, локализованные вдоль хромосомы, встраивали ДНК фага Ми-1 [189]. Особенно удобно использовать в этом случае фаг Ми-1, поскольку его включение может происходить во многих сайтах, локализованных в пределах хорошо картированных генов. Включение в пределах какого-то гена инактивирует этот ген (мутация добавки), что позволяет точно определить место локализации профага Ми-1. Удалось получить целую серию штаммов бактерий, содержащих как профаги X, так и фаг Ми-1, причем последний был локализован в различных участках хромосомы. Эти бактерии были, кроме того, ауксотрофны по определенным аминокислотам. Благодаря этому репликацию можно было останавливать. [c.272]

Скорость репликации в этих ядрах оказалась равной приблизительно 300 000 оснований в одну секунду, причем, согласно данным, полученным в этой же работе, репликационные внлки в хромосомах животных не могут двигаться быстрее, чем со скоростью - 50 оснований в секунду. Таким образом, можно было ожидать, что в хромосоме имеется как минимум 6000 вилок или одна вилка на 10 000 оснований. И такое большое число вилок в действительности удалось обнаружить [191]. Вилки появляются попарно, причем при внимательном изучении оказалось,, что во многих коротких участках содержится одноцепочечная ДНК, т. е. как будто бы одна цепь в вилке реплицируется быстрее другой. Строение одноцепочечных областей между двумя образуюш,ими пары вилками указывает на двустороннюю направленность репликации (рис. 15-29). Репликация в случае Ba illus subtilis также протекает в двух направлениях, однако вилки перемещаются в двух направлениях с разной скоростью [192]. Репликация ДНК фагов X и Т7 также протекает в двух, направлениях [193], тогда как митохондриальная ДНК мыши реплицируется лишь в одном направлении [194]. [c.274]

Процесс репликации ДНК в фагах и в митохондриях мышиных клеток, был исследован методом электронной микроскопии с использованием в качестве маркеров денатурационных петель. Эти петли представляют собой небольшие участки ДНК, денатурирующиеся в процессе подготовки препаратов для электронно-микроскопических исследований. Возможно, что эти петли ДНК образуются в участках с низким содержанием G -nap или в участках, обладающих по каким-либо другим причинам пониженной стабильностью по сравнению с остальными участками ДНК Петли чем-то напоминают гетеродуплексьь (разд. Г, 8, в), однако возникают они по другой причине. В кольцевой, митохондриальной ДНК мыши можно видеть две такие петли, отстоящие-одна от другой приблизительно на 180° и отличающиеся друг от друга. Использование этих петель в качестве маркеров позволило проследить-направление репликации. В настоящее время этот метод широко используется. [c.274]

Р-репликатор в локусе О интегрированного фактора F в клетке Hfr также активируется при контакте с реципиентной клеткой. Однако полуконсервативная репликация ДНК, активированная таким способом, не ограничивается геномом полового фактора, а захватывает практически всю хромосому (фиг. 119). При этом одна копия донорного генома продолжает двигаться локусом О вперед в Р -клетку до тех пор, пока конъюгационная трубка, соединяющая две клетки, остается неповрежденной. Таким образом, именно активация Р-репликатора и последующее непрерывное проталкивание одной из хромосом-реплик ответственны за реализацию способности к разрыву хромосомы в локусе О и превращение кольцевой хромосомы в линейную. Стрелка, поставленная на схематическом изображении полового фактора на фиг. 115, символизирует, таким образом, направление репликации, инициированной в 0-локусе F-репли-катора при его активации конъюгационным контактом, который в зависимости от положения интегрированной эписомы приводит к переносу Hfr-хромосомы или по часовой, или против часовой стрелки. [c.238]

Трансформация — важный метод генетического анализа, так как имеющиеся в природе способные к трансформации виды не имеют систем конъюгации, и только небольшое число видов имеет хорошо развитые системы трансдукции. В аспекте фундаментальной науки трансформация позволила составить представление о механизме генетической рекомбинации [25, 31], а в случае Ba illus subtilis ее изучение способствовало получению информации о начале и направлении репликации хромосомы [18]. Данные экспериментов по внутривидовой и межвидовой трансформации использовались также для определения степени генетического родства между определенными участками генома [31]. Такой подход стимулировал изучение родства с использованием анализа кинетики реассоциации ДНК (гл. 22) и новейших методических приемов при исследовании рекомбинантной ДНК. Использование трансформации и трансдукции тесно связано с методологией изучения рекомбинантной ДНК, где благодаря искусственной индукции компетентности возможно введение рекомбинантных молекул в клетки различных видов бактерий. [c.80]

Рис. 3.12 Генетическая карта плазмиды olEl Стрелки над генами — направление их транскрипции, стрелка у orN — направление репликации ДНК, горизонтальные стрелки — направление транскриптов PHKI и РНКП, р — промотор. Координаты даны в т п н

Тонкими стрелками показана положительная регуляция репликации плазмидных ДНК, толстыми указано направление репликации. Малая окружность вверху показьшает размер К8Р1010 в одном масштабе с КК2 [c.215]

Еще одно доказательство дву направленности репликации ДНК у Е.соИ было получено методом радиоавтографии. Для этого вначале репликацию проводили в среде, содержавшей ТИМИН, меченный тритием до умеренной удельной радиоактивности. Через несколько минут инкубации бактерии перенесли в среду, содержавшую высокоме-ченный тритием радиоактивный тимин. Пробы с двумя различными уровнями радиоактивности использовались для того, чтобы получить на радиоавтографах два типа цепочек зерен серебра цепочки с низкой плотностью зерен, соответствующие ДНК, синтезированной вначале, и цепочки с высокой плотностью, соответствуюпдае ДНК, синтезированной позже. Если бы репликация шла в одном направлении, были бы видны цепочки с высокой плотностью зерен на одном конце и низкой плотностью на другом. Если же репликация идет в двух направлениях, середина каждого отпечатка ДНК должна быаа бы иметь низкую плотность зерна, а концы - высокую (рис. 24.37). Радиоавтофафы дали наглядный ответ (рис. 24.38). Цепочки зерен серебра (отпечатки ДНК) во всех случаях имели более высокую плотность зерен на обоих концах, чем посередине, указывая тем самым, что репликация хромосомы Е.соИ идет в двух направлениях. [c.30]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология