Вирусы чумы птиц

Оптимальное время инкубации, необходимое для получения максимального выхода вируса, зависит от конкретного штамма и должно быть определено экспериментально. Для некоторых штаммов вируса гриппа А, например вируса чумы птиц, максимальный выход достигается через 24—26 ч, в то же время большинство штаммов вируса гриппа А человека, а также вирусы типов В и С требуют 48—72 ч инкубации. [c.165]

Рис. 6.5. Электрофорез структурных белков очищенных вирионов вируса гриппа А в полиакриламидном геле. Вирус чумы птиц (штамм Добсон) был очищен зональным цен-

Первая полная последовательность сегмента РНК вируса гриппа была получена из гена НА вируса чумы птиц (A/FPV/Rosto k/34 [95]). Позднее были определены последовательности нескольких генов НА четырех различных подтипов [18, 43, 82, 120, 123]. Последовательности можно прямо сравнивать, выстраивая в ряд сохраненные цистеиновый, триптофановый и пролиновый остатки получбнных белков. В этом случае можно разделить делеции и/или вставки. [c.108]

Сайты расщепления НА трех различных подтипов (Н1, НЗ и НЮ) были изучены с использованием расщепления in vivo или расщепления трипсином или другими протезами. После обработки трипсином высокоочищенных вирусов в субъединицах НА1 отсутствует С-терминальный аргинин. Возможно, вирус, а не система хозяина, снабжает экзопептидазой карбоксипептидазы типа В, которая заканчивает это вырезание [41]. На сайте расщепления НА1/НА2 у НА вируса чумы птиц удалена промежуточная последовательность 6 аминокислот (пять основных) [42]. Это коррелировало с патогенными свойствами вируса и его способностью размножаться во многих различных типах клеток-хозяев [16]. [c.117]

Рис. 6.6. Определение активности вирионной РНК-зависимой РНК-полимеразы вируса гриппа. РНК-полимеразную активность вирионов, очищенных зональным центрифугированием (разд. 4.3.3.), определяли в присутствии и в отсутствие затравок. Реакции ставили в объеме 100 мкл, как описано в разд. 5.1.2. Пробы инкубировали при 31 °С, через указанные интервалы времени отбирали аликвоты по 10 мкл и определяли кислотонерастворимую радиоактивность. Из этих данных рассчитывали количество pH] -UTP, включившегося в кислотонерастворимый материал. Используемый в качестве затравки ApG добавляли до концентрации 0,3 мМ, а глобиновую мРНК — до концентрации 100 мкг/мл. Показано, что для данного вируса (вирус чумы птиц, штамм Росток) это оптимальные концентрации затравок. 1—реакция в присутствии затравки 2 — реакция в присутствии мРНК 3 — реакция в отсутствие ApG

Рис. 6.7. Электрофорез вирусных РНК и белков, меченных радиоактивной меткой, как описано в разд. 7. а — вирус метили >[ Р]-ортофосфатом в течение 24 ч и из очищенных вирионов экстрагировали РНК б — ФЭК метили [ 5]-метионином в течение 30 мин на разных сроках после заражения вирусом чумы птиц (штамм 34/Росток). Клетки разрушали кипячением в содержа щем ДД -Na буфере для нанесения проб и анализировали белки электрофо резом в 15%-ном полиакриламидном геле. К — белки из незараженных клеток Цифры под остальными дорожками обозначают время (в часах) после зара жения, когда вносили [ З]-метионин

Бубович В.И. Депротеинизация вируса чумы птиц изолированными плазматическими мембранами в присутствии производных адамантана //Антивирусная активность и механизм действия различных химических соединений, - Рига. 1979. - С. 115 -119. [c.285]

Новым аспектом в эволюции являются сохраняемые в лабораторных условиях запасы предположительно вымерших вирусов, исчезнувших в природе. Латентный механизм персистенции вирусов гриппа в природе неизвестен, но изолированные гены, возможно, сохраняют свою инфекционную потенцию вплоть до последующего поиска или включения в пересортированные вирусы. С помощью этой теории трудно объяснить вторичное появление в 1977 г. вируса H1N1, геном которого кажется почти идентичным геному штамма, циркулировавшего в начале 50-х годов [84]. В любом случае, если считать, что сохранение этих штаммов в лабораторных условиях является потенциальной частью общего экологического резервуара вируса, пул генов вируса гриппа простирается на другой период времени, включая все вирусы (и гены), выделенные и сохраняемые с 1901 г. i[59], когда впервые был выделен вирус чумы птиц (FPV). Однако многочисленные факторы ограничивают роль лабораторий как источников инфекции [53]. [c.26]

Влияние различных факторов на образование бляшек в суспензиях клеток было изучено Уотерсоном (1958). Он находит, что количество отдельных колоний вируса чумы птиц зависит от концентрации клеток куриных фибробластов, от состава питательной среды и от свойств используемой серии нейтрального красного. Снижение концентрации клеток в агаре с 220—97,5 10 до 50—32 10 ведет к уменьшению числа бляшек и резко затрудняет их иол счет. При введении в состав агарового покрытия 0,5% гидролизата лактальбумина, 0,1% дрожжевого экстракта и [c.177]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология