Фибробласты куриного эмбриона

Рис. 6.2. Размножение вируса гриппа А в первичной культуре фибробластов куриного эмбриона (ФЭК). Динамику размножения вируса исследовали по накоплению вирусного гемагглютинина. Чашку с монослоем клеток ФЭК диаметром 15 см заражали с множественностью инфекции около 50 БОЕ/кл и в указанные моменты отбирали образцы культуральной жидкости объемом 0,25 мл для непосредственного определения гемагглютинирующей активности

Фибробласты куриного эмбриона Клетки зародыша перепела [c.184]

Этой плазмидой трансформируют культуру дефектных по тимидинкиназе животных клеток, обычно фибробластов куриного эмбриона, предварительно инфицированных ВКО дикого типа, который синтезирует функциональную тимидинкиназу. [c.239]

Вакцина представляет собой вирус клещевого энцефалита, выращенный в культуре клеток фибробластов куриного эмбриона и инактивированный формалином в конечной концентрации 1 2000. [c.728]

Исследования на раковых клетках усиливают этот парадокс. Больщинство таких клеток, в том числе и трансформированные хорошо изученными онкогенами, представленными на рис. 13-34, отличаются от их нормальных двойников тем, что для деления им не нужно прикрепляться к субстрату. Поскольку такая независимость от прикрепления дает возможность трансформированным клеткам расти в новых условиях, где нормальные контакты клеток между собой и с матриксом установить нельзя (разд. 13.3.6), можно предполагать, что она явилась результатом естественного отбора клеток, формирующих опухоли. Но почему многие раковые клетки не просто делятся независимо от прикрепления, но не прикрепляются прочно к внеклеточному матриксу лаже тогда, когда такая возможность существует Намек на ответ следует из наблюдений над трансформированными клетками, которые искусственно заставляют прикрепиться к культуральной чашке. Как отмечалось выше, фибробласты куриного эмбриона, трансформированные с помощью v-sr , вьщеляют в больших количествах активатор плазминогена, который ослабляет их прикрепление к чашке. Если такие клетки растут в присутствии антитела, блокирующего активность этой протеазы, го они более прочно прикрепляются к чашке и в го же время становятся более подверженными нормальному социальному контролю клеточного деления вместо образования многослойной структуры они проявляют тенденцию прекращать деление при взаимном контакте. Таким образом, прочное сцепление с внеклеточным матриксом, видимо, тормозит рост этих трансформированных клеток [c.434]

Инфекционность ВВС определяют, заражая вирусом моно- слойную или суспензионную культуру клеток ВНК-21. Как правило, предпочитают суспензионную культуру, поскольку в этом случае адсорбция проходит более равномерно. Для определения титра ВВС можно использовать и другие культуры, в частности фибробласты куриного эмбриона или L-клетки мыши [10, 16]. [c.117]

О. tsutsugamushi в исследуемом материале можно выявить путем заражения перевиваемой культуры клеток L и первично-трипси-низированных фибробластов куриного эмбриона. [c.240]

Обычно лабораторные культуры заражают либо адаптированным к размножению in vitro вирусом, либо неадаптированным, содержащимся в зараженных тканях или выделениях. Многие первичные клеточные культуры и перевиваемые линии, используемые для выделения рабдовирусов, детально рассмотрены в недавно опубликованном обзоре [8]. ВВС эффективно размножается почти во всех известных в настоящее время линиях клеток млекопитающих и птиц. Особенно высокий выход ВВС дает на первичной культуре фибробластов куриного эмбриона [9] или перевиваемой линии клеток ВНК-21 [Ю], причем одинаково высокие титры получают как при размножении вируса в монослойной, так и в суспензионной культурах [И]. Кривые нарастания титра ВВС в одиночном цикле размножения практически совпадают для двух типов культур. Выход дочерних частиц ВВС из клеток начинается через 2 ч после заражения после этого в течение 6—8 ч выход вируса нарастает по логарифмическому закону. Максимальный выход, достигающий 1000 БОЕ/кл, наблюдается через 10—12 ч после заражения. [c.113]

Культуры клеток (первичные — почек эмбриона человека, телят, собак, фибробласты куриных эмбрионов перевиваемые — МДСК) [c.445]

Вакцина против клещевого энцефалита является формолвак-циной, полученной из тканевой культуры фибробластов куриного эмбриона и выпускаемом в жидком виде во -флаконах (по 10 мл) или ампулах (по 5 мл) с гидроокисью алюминия (до 2 мг) в качестве адсорбента или в лиофильно высушенном виде с желатином (до [c.548]

Как и следовало ожидать, учитывая интенсивный углеводный обмен тканевых культур, клетки их богаты отложениями гликогена. Однако количество его и динамика появления в клетках оказались сильно варьирующими в разных культурах. Так, прежде всего выяснилось, что количество гликогена находится в некоторой зависимости от его содержания в исходных тканях. В клетках амниона, богатых в пределах организма отложениями гликогена, его много и в культуре. В корковом веществе почки гликоген гистохимически обнаруживается преимущественно в клетках главного отдела извитых канальцев, в мальпигиевых клубочках и в эпителии собирательных трубок. В соответствии с этим гликогена в культивируемых почечных клетках меньше, чем в клетках амниона. Наконец гликоген почти целиком отсутствует в клетках соединительной ткани организма и в культивируемых фибробластах куриного эмбриона. Так как по интенсивности размножения и некоторым другим проявлениям жизнедеятельности эти клетки практически не отличаются от имеющих эпителиальное происхождение, возникает остающийся пока без ответа вопрос с чем связано отсутствие отложения гликогена в фибробластах и не отражает ли оно какого-либо своеобразия в характере углеводного обмена фибробластических культур [c.214]

Гистохимическими методами изучена динамика содержания гликогена в клетках первично-эксплантированных (почечная ткань макаки-резус, клетки амниона человека, фибробласты куриного эмбриона) и перевиваемых (амнион человека, сердце макаки-циномоль-гус, НеЬа, Нер-2) однослойных культур ткани. Обнаружена зависимость интенсивности отложения гликогена от количества его в исходных тканевых клетках. В первично-эксплантированных культурах в течение первых суток культивирования отложение гликогена незначительно, оно усиливается на 3—4-е сутки культивирования. В перевиваемых клеточных линиях уже на первых этапах культивирования отмечены значительные отложения гликогена. Это связано, очевидно, с разной степенью адаптации клеток двух категорий [c.217]

Вирус классической чумы птиц избран как обладающий ге-магглютинирующими свойствами, по которым его можно обнаружить так же, как и по цитоиатическим проявлениям в культуре фибробластов куриного эмбриона. [c.39]

Фото 14. Зеркальная камера отсутствие зеркального ЦПЭ. Нормальная культура ткани. Х400. Контакт 72 ч. Стеклянная иод.южка. Культура фибробласта куриного эмбриона. [c.127]

Для проведения полноценных генетических экспериментов необходимо, чтобы вирус был способен к бляшкообразованшо на используемых клетках хозяина. Это требование в значительной степени ограничило изучение ts-мутантов вируса гриппа использованием штамма WSN при инфицировании фибробластов куриного эмбриона [94, 141, 142, 248] или клеток MDBK [260, 261] рекомбинанта Х-3311 (на основе штамма NWS-A1, репродуцированного на хорион-аллантоисной мембране), образующего бляшки в клеточной линии человеческой конъюнктивы 1-5С-4 [271] птичьего вируса гриппа А (FPV), репродуцированного в фибробластах куриного эмбриона [9, 150, 222] некоторых человеческих вирусов — кандидатов в вакцинные штаммы, выращенных на первичных клетках почки цыпленка, обезьяны или быка [137, 159]. Совсем недавно в качестве хозяина для выращивания человеческих вакцинных штаммов были использованы также клетки MD K [117, 243, 244, 245]. [c.188]

Недавно при помощи высокоразрешающего метода электрофореза в ПААГ полипептидов, меченных S-метионином, и последующей авторадиографии [106] ts-мутанты вируса FPV/Rosto k, полученные в Кембридже, были изучены по способности индуцировать синтез вирусспецифических белков в фибробластах куриного эмбриона. Подобный подход позволил четко охарактеризовать три стадии синтеза вирусспецифических белков в процессе нормальной продуктивной инфекции самую раннюю стадию (первичная транскрипция), когда все полипептиды синтезируются с эквивалентной скоростью, раннюю стадию (до 2 ч после заражения при 37 °С), когда происходит нарастание синтеза белков NP и NS1, и позднюю стадию, в которой без труда наблюдается нарастание синтеза полипептидов НА, М и NS2 [107, 109]. Ранняя и поздняя стадии схожи в клетках, инфицированных при 34 °С (пермиссивная температура), но при 40,5°С инфекция протекала быстрее, и картина позднего синтеза белков проявлялась уже к 2ч после заражения [145, 188]. Было изучено 9 мутантов с повреждениями в сегменте 1 РНК. Каждый раз картина синтеза вирусиндуциро-ванных белков при 34 °С была похожа на синтез белков вирусом дикого типа, а поздний белковый синтез наступал к 4—6 ч после [c.211]

Помимо наличия ts-свойства, биохимические опыты с еа-виру-сом А/Апп Arbor/6/60 выявили, что каждый сегмент содержит мутации относительно вируса дикого типа [44]. Однако фенотипический анализ са-вируса в процессе заражения клеток MD K или клеток фибробласта куриного эмбриона при 39 °С показал отсутствие дефекта по сравнению с вирусом дикого типа, за исключением более медленной скорости миграции белка Р2 [44]. Было решено, что са-мутации действуют на поздние реиликационные функции [119]. [c.234]

В культуре клеток. Наиболее распространенная и надежная система для размножения вирусов гриппа — монослойная первичная культура фибробластов куриного эмбриона (ФЭК), однако используют и первичные культуры клеток почек обезьян, крупного рогатого скота и собак (линии МВВК и МВСК). Хотя к инфекции чувствительны очень многие клеточные культуры, большинство их не поддерживают размножение вируса. В некоторых типах клеток проходит только неполный цикл репродукции (абортивная инфекция), при котором не формируются вирионы. В других клетках вирионы образуются и высвобождаются в среду, но не обладают инфекционностью. [c.167]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология