Препараты для микроскопа

Отделяемое из влагалища, отобранное тампоном или другими приспособлениями, помещают на предметные стекла и готовят препараты для микроскопии. [c.379]

Приготовление препарата для микроскопии. Наибольшее постороннее бактериальное загрязнение, притом неустранимое, может быть внесено в препарат с мембранным фильтром (Крисс, 1959). Поэтому серия фильтров, подготовляемая для микроскопического исследования воды, должна быть предварительно проверена на бактериальное загрязнение (Родина, 1950) и храниться в условиях наименьшего загрязнения. Дистиллированная вода должна быть профильтрована через мембранный фильтр реактивы, раствор краски, ксилол, канадский бальзам, кедровое масло должны быть также, по возможности, проверены (Яковенко, 1959), а загрязненные бактериально — забракованы. [c.177]

Световой микроскоп доступен и необходим всем микробиологам, но, поскольку его эффективное использование достигается не так уж часто, мы приводим в гл. 1 подробные рекомендации, знание которых необходимо каждому. В гл. 2 и 3 описывается использование светового микроскопа для получения информации о детальной структуре и для идентификации бактерий. Электронный микроскоп устроен значительно сложнее, чем световой. Как правило, его обслуживанием и регулировкой занимаются специалисты-профессионалы, которые инструктируют, помогают и дают советы. Поэтому в гл. 4 большое внимание уделяется методическим аспектам подготовки препаратов для микроскопии. Для успешного продолжения работы, начинающейся с разрушения бактериальных клеток и их фракционирования, описываемых в гл. 5, нужна как световая, так и электронная микроскопия. При этом в качестве главного средства контроля чистоты субклеточных фракций и установления связи между структурой и функцией применяется электронный микроскоп. [c.15]

Нативный препарат для микроскопии в темном поле [c.213]

Микроскопическое исследование при дерматомикозах из пораженных волос, кожных чешуек приготовить препарат для микроскопии и поставить микроскопический диагноз заболевания трихофитии, микроспории, фавуса или эпидермофитии. [c.252]

Приготовление препаратов для микроскопии. Исследование микроорганизмов в окрашенном препарате дает возможность не только изучить нх морфологию, но и судить о некоторых деталях нх химического строения. Это достигается применением специальных окрасок. [c.322]

На рис. 97 изображена рибосомная РНК и РРНК. Мы обнаруживаем шнуры Т0ЛШ.ИН0Й 30 А, присущей двойным спиралям полирибонуклеотидной природы. Если раствор РНК подвергнуть нагреванию, а затем нанести препарат для микроскопии, то эта регулярная картина в значительной мере исчезает. [c.282]

В препаратах для микроскопа, представляющих собой срез микротомом с замороженных образцов смазок, жгутообразные частицы отсутствуют, поэтому предполагают, что они могут образоваться в процессе приготовления препаратов дисперсионным методом. [c.37]

Классической работой по электрофоретическому разделению белков мембран эритроцитов человека является исследование Фейрбанкса и соавт. (1971), в котором предложена номенклатура полипептидных полос, выявляемых в солюбилизированной с помощью додецилсульфата натрия (ДСН) мембране. Этой номенклатурой пользуется в настоящее время большинство ученых. Наличие сетчатой структуры, выстилающей внутреннюю поверхность мембраны эритроцита, было обнаружено непосредственно с помощью электронной микроскопии после обработки клеток неионным детергентом тритоном Х-100. При определенных экспериментальных условиях (в среде с высокой ионной силой и при низкой температуре) применение этого детергента позволяет полностью солюбилизировать липидный бислой и интегральные белки. При этом остается сеть белков, сохраняющая исходную форму клетки, которая представляет собой мембранный скелет (каркас) эритроцита. Он тестируется в виде двухмерной сети филаментов, длина которых зависит от особенностей приготовления препарата для микроскопии. Необходимо отметить, что белки, близкородственные компонентам цитоскелета эритроцитов, обнаружены в ряде неэритроидных клеток. В связи с универсальностью данной системы следует более подробно рассмотреть структуру и свойства некоторых цитоскелетных белков. [c.31]

Бактер алогическое исследование. Культуры лептоспир выделяют н,1 водно-сывороточной или фосфатно-сывороточной среде с добавлением инактивированной кроличьей сыворотки. Исследуемый материал засевают у постели больного в 3—5 пробирок, заливают стерильным вазелиновым маслом (для ограничения доступа кислорода воздуха) и инкубируют при температуре 28°С не менее 2 мес. Вследствие того что при росте лептоспир среда остается прозрачной, через каждые 5—6 дней из среды готовят препараты для микроскопии в темном поле. Серогруппу выделенной культуры устанавливают в реакции агглютинации с набором диагностических сывороток. [c.212]

При исследовании дуоденального содержимого используют все три порции, получаемые при дуоденальном зондировании, но без примеси желудочного сока. Материал (порции Л, В w С) раздельно выливают в чашки Петри, выбирают на предметные стекла слизистые комочки и готовят препараты для микроскопии. Затем желчь центрифугируют и из осадка делают мазки, которые микроскопируют под малым, а затем под большим увеличением. Для увеличения достоверности результатов следует просмотреть большое количество препаратов (10 —20). В дуоденальном содержимом могут быть обнаружены вегетативные формы лямблий Giardia lamblia). [c.344]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология