Буферные растворы для измерения pH крови

Рис. 9-6. Кривые, характеризующие зависимость активности фермента от pH. Такие кривые строятся на основе данных, полученных при измерении начальных скоростей реакции, протекающей в буферных растворах с разными значениями pH. А. Кривая, описывающая рН-зависимость активности пвпсша, который гидролизует определенные пептидные связи в белках во время их переваривания в желудке. Величина pH желудочного сока лежит между 1 и 2. Б. Кривая, описывающая рН-зависимость активности глюкозо-6-фосфатазы из клеток печени, ответственной за выделение глюкозы в кровь. В норме величина pH щггозоля клеток печени составляет около 7,2.

Симпл [103] нашел, что при 38° С pH различных буферных растворов не зависит от концентрации соединительного раствора. Однако эти наблюдения не подтверждаются при измерениях pH крови. По-видимому, концентрированный раствор КС1, загрязняя кровь, вызывает осаждение белков плазмы. Поэтому Симпл предложил использовать для измерения pH крови мостик с 0,152 н. Na l (изотонический раствор). [c.235]

Так как примнезин быстро инактивируется при pH выше 5,0, измерения его проводились в подкисленной крови. Использовались главным образом бычьи эритроциты, так как они лучше, чем эритроциты других животных, переносят кислые условия. Перед определением кровь доводилась до определенного объема при помощи изотонического состава 0,073 М Na l, 0,042 М цитрата натрия, 0,14 М глюкозы pH 6,1, после чего раствор оставлялся при 4 ". Непосредственно перед измерением красные клетки три раза промывались на холоду 10 объемами буферного раствора (0,13 М Na l, доведенный до pH 5,0 при помощи 0,02 М цитрата). Затем раствор токсина смешивался с 0,4%-ными (V/V) эритроцитами в буферном растворе при pH 5,0. (1 месь выдерживалась в течение 45 мин. при температуре 35 0,5°. [c.113]

Отделение клинической химии ИЮПАК совместно с Международной федерацией клинической химии разработало рекомендации по физико-химическим величинам и единицам измерения в клинической химии (в которых особое внимание уделено активностям и коэффициентам активности) [159а]. Предложены [29а] пять стандартных растворов для калибровки ионоселективных электродов, используемых в клинических целях. Для имитации электролитов крови в состав стандартных растворов входят в различных концентрациях Са +, Ма+, К" и С1 и буферные растворы цвиттер-ионов. Предложенные стандарты облегчают решение проблемы постоянства условий калибровки потенциометрических клинических анализаторов. [c.95]

Хотя буферные растворы вскоре стали широко использоваться, новая единица измерения кислотности интересовала только небольшую группу ученых, и в том числе лишь считанных химиков. Практическую важность этой характеристики первыми оценили биохимики. Большинство работ, посвягценных этому вопросу, было выполнено в Карлсбергской лаборатории в Дании, а в 1914 г. была опубликована первая монография, озаглавленная О концентрации. водородных ионов ( Die Wasserstoffionkon-zentration ). Ее автор, Л. Михаэлис, утверждал, что хи-мик-физиолог должен четко представлять себе, что такое pH. В качестве примера, наглядно показывающего, к каким ошибкам может привести пренебрежение этой величиной, он демонстрирует работу некоего автора, изучавшего эффективность инвертазы. Установив, что эффективность ослабляется при введении сыворотки крови, данный автор сделал вывод, что сыворотка содержит какие-то антагонисты инвертазе. На самом же деле снижение активности обусловлено изменением pH при введении сыворотки крови, и аналогичный эффект будет наблюдаться при введении любого раствора с тем же, что и у сыворотки, значением pH. [c.232]

Потенциал системы относительно стандартного насыщенного каломельного электрода (НКЭ) равен 0,4 В. Энзимный электрод состоит из следующих элементов чувствительное устройство (Pt-электрод), пленка, где происходит ферментативная реакция (глюкозооксидаза, фиксированная в пористом или гелевом слое) и диализная целлофановая мембрана. При измерении глюкозы в крови в последнюю необходимо добавлять буферный раствор (0,04 М раствор фосфата с pH = 7,4, содержащий 0,026 М Na I + + 0,004 М КС1) и хинон. При подаче на электрод напряжения 0,4 В получают ток, пропорциональный концентрации глюкозы. В параллельном опыте с электродом подобного типа, но без энзима измеряют холостой, или фоновый ток, значение которого вычитают из значений, полученных с энзимным электродом. По результату судят о количестве глюкозы в крови. Подобным же образом определяли лактат, применяя энзимный электрод, содержащий лактат-326 [c.326]

В биосенсорах на основе LMO (декарбоксилирующий фермент, часто называемый лактатоксидазой) иммобилизованный фермент закрепляют на поверхности кислородного электрода Кларка [36, 62]. Для такого сенсора авторы [36] получили линейную зависимость сигнала от концентрации при содержании лактата в измерительной ячейке до 0,25 ммоль/л. Для образцов реконструированных сывороток крови человека коэффициент корреляции между измеренными и истинными концентрациями г = 0,995 (у = 1,094х — 0,128 ммоль/л). Однако, как и во всех сенсорах на основе Оз-электрода, могут возникать проблемы, связанные с разным содержанием кислорода в буферном растворе и исследуемом образце. [c.264]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология