КОКФ,

Материалы Всесоюз. науч.-тех. кокф. Использ. вторим, ресурсов и мест, мат-алов в сел., сгр-стве . — Челябинск 1991. [c.429]

Конарев В. Г., Ахметов Р. Р., Елсакова Т. Н., Курамшин Г. С. 19ю. О состоянии нуклеиновых кислот в ядре и молекулярной организа-цйи хроматина.— Докл. 2-й Всес. научн. кокф. по нуклеиновым кислотам (19— 23 января 1966 г.). М. (в печати). [c.22]

Необходимость повышенной реакционной способности кокса, используемого для производства ферросплавов, идет вразрез с требованиями к литейному и доменному кокфу, в процессах производства которых отсортировывается коксовый орешек. Поэтому изучены методы повышения реакционной способности коксика путем обработки его раствором известкового молока с последующей сушкой, добавк в шихту для коксования различных реагентов и др. [c.18]

Культуральный тест на КОКф используется прежде всего для подсчета стромальных колоний. Отношение количества колоний к числу эксплантированных клеток характеризует эффективность колониеобразования (ЭКОф). По ЭКОф можно судить о численности КОКф в кроветворных органах, в том числе в условиях [c.258]

Условия, в которых проводится тест, могут влиять как на ЭКОф, к и на клеточный состав стромальных колоний. Ниже на примере 1СТН0М03Г0ВЫХ КОКф описываются последовательные этапы прове-ния теста и разбирается, как каждый из этих этапов может пять на получаемые результаты. Те же приемы культивирования (именяются и для выявления КОКф лимфоидных органов — селе-нки, лимфатических узлов и тимуса. [c.259]

Культуральная среда. Для культивирования используется синтетическая среда с добавлением 1 —20 % сыворотки. Тип культуральной среды может сильно влиять на ЭКОф, и поэтому для каждой клеточной популяции синтетическую среду следует подбирать и апробировать. Это в равной степени относится и к сыворотке., Лучшие результаты получаются при использовании свежеразведен-ных синтетических сред и сывороток, которые до употребления хранятся в замороженном состоянии. Тест на КОКф человека, морских свинок и кроликов может проводиться на среде 199 на КОКф крыс и мышей — на среде ЕРМ1-1640. Наилучшие результаты получаются, однако, при использовании свежеприготовленной среды а-МЕМ. Для КОКф мышей, морских свинок, крыс и кроликов следует применять эмбриональную сыворотку коров, а для КОКф человека — человеческую сыворотку IV группы. Сыворотки перед употреблением не подогревают, и очень желательно использовать специально отобранные партии сывороток, которые обеспечивают высокую ЭКОф. [c.260]

Посуда. Для культивирования пригодны стеклянные и пластиковые матрасы, чашки Петри и пластиковые 24-луночные плейты. КОКф и их культуральные потомки — это высокоадгезивные клетки, и качество субстрата, к которому они прикрепляются, сильно влияет на рост колоний. Использование выщелоченной стеклянной посуды и пластика низкого качества может снижать ЭКОф и неблагоприятно рлиять г а клеточный состав колоний. При оценке пригодности среды И посуды для постановки теста ка КОКф следует исходить из того, что костномозговые клетки, полученные путем механической дезагрегации, имеют ЖОф не ниже 3 10 . [c.260]

Фидерные клетки не обязательно должны быть гомологичны ксплантируемому интактному костному мозгу. Так, для КОКф еловека могут быть использованы облученные костномозговые [c.261]

Определение концентрации КОКф в клеточных суспензиях и в исходных гемопоэтических органах по результатам культурального теста на КОКф. При правильной постановке культуральный тест на КОКф должен обеспечивать высокую эффективность клони- [c.262]

ЭКОф, установленная в результате проведения культурального еста, дает возможность оценить, сколько КОКф содержалось эксплантированной клеточной суспензии, и отсюда пересчитать, колько их находится в кроветворном органе, клетки которого ыли подвергнуты эксплантации. Для этого нужно знать, какую асть содержащихся в соответствующем органе клеток использовали ля культивирования (величина ЭКОф обратна концентрации ОКф). [c.263]

Как правило, ЭКОф для трипсинизированных клеток костного озга мышей и морских свинок примерно в 10 раз выше, чем для еханически дезагрегированных клеток (для клеток человека и кройка аналогичных данных нет), поскольку при трипсинизации кост-ого мозга данных животных высвобождаются дополнительные ОКф. которые при механической дезагрегации повреждаются или стаются в составе клеточных агрегатов [16]. В связи с этим, оцени-ая содержание КОКф в костном мозге морских свинок и мышей, педует отдельно учитывать ЭКОф для трипсинизированных и меха-ически дезагрегированных клеток. [c.263]

Проведение теста на КОКф может быть осуществлено с использованием сред отечественного производства, а также эмбриональной сыворотки коров, выпускаемой ИЭМ им. Н. Ф. Гамалеи. В качест це культуральных сосудов мо1]ут использоваться чашки Карреля и стеклянные матрасы отечественного производства. Применение чашек Петри и плейтов требует культивирования в СОг-инкубаторе. При культивировании в сосудах, закрываемых герметически, тест проводится в обычном термостате. [c.264]

Описан метод, позволяющий in vitro получать количественные и качественные характеристики стволовых стромальных клеток кроветворных и лимфоидных органов (КОКф). КОКф обеспечивают создание гемопоэтнческого и иммунологического микроокружения, а КОКф костного мозга служат стволовыми остеогенными клетками. Подробно разбираются этапы клонирования КОКф и пассирования нх потомков в культурах. Приведены способы определения по результатам клонирования, т. е. по количеству колоний фибробластов, истинной концентрации КОКф в клеточных суспензиях и исходных гемопоэтических органах обсуждаются значение и перспективы применения культурального теста на КОКф. Библиогр. 16 назв. [c.318]

КОКФ костного МО га и тимуса относятся к категории быстро при липающих к поверхности стекла клеток. В отсутствие сыворотки время, и жное ля пр 1кр пления 90 КОКФ, с ставляет 90 мин, прич м большинство и них прикрепляется к стеклу уже в первые 30 ин (Friedenstein, 1973). Потомки КОКФ активно сипте ируют коллаг н. Это относится к КОКФ ос ного МО а, ле ен и и тимуса. [c.171]

Мето ом клонирования стромальных клеток-предшественников in itro было показано, что число КОКФ резко возрастает в регионарном имфоузле после первичного введения антигена в 30 раз через одни сут кн, в 40 раз чере 7 сут через месяц оно возвращается к исходи м> уровню. В контрре и парном у ле также происходит увеличение чис г КОКФ, но оно менее выра оно и наст пает позже. При п вторном от вете число КОКФ растет быстрее и б е ре о. [c.171]

Приведенные сдвиги в численности КОКФ показывают, что в клеточной популяцпи, населяющей лимфоидные органы, число КОКФ может, очевидно, увеличиваться не только путем ра множения самих КОКФ, но [c.171]

И ИНЫМ путем, а именно благодаря их дополнительному рекрутированию за счет приобретения колоннеобразующнх свойств теми клетками, которые в предшествующий момент ими не обладали, или (что менее вероятно) за счет репопуляции КОКФ. [c.172]

Заслуживают также внимания сведения об изменении числа КОКФ в брюшной полости при образовании в ней воспалительного экссудата. Введение внутрибрюшинно тиогликогенного бульона вызывает у молодых свинок, кроме резкого увеличения числа макрофагов, также и нарастание числа клоногенных предшественников фибробластов. Через три дня общее содержание КОКФ среди клеток перитонеального экссудата увеличивается в 10 раз, а их концентрация — в 20 раз. Таким образом, в ряде случаев, в том числе при иммунном ответе, удается показать, что перестройка лимфоидной ткани сопровождается изменениями численности содержащихся в ней стромальных клеток-предшественников. [c.172]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология