Бактерии среда питательная синтетическая

Микробиологические методы (для определения аминокислот, ферментов, витаминов).,Для жизнедеятельности, роста и размножения микроорганизмов необходима среда определенного химического состава. Если исключить из питательной среды хотя бы один компонент или, напротив, ввести дополнительно некоторое вещество, то микроорганизмы через некоторое время подают соответствующий сигнал. Между интенсивностью ответного сигнала и количеством введенного или исключенного вещества наблюдается определенная зависимость. Микробиологический метод основан на измерении интенсивности развития микроорганизмов в зависимости от количества определяемой аминокислоты (фермента, витамина). Все остальные вещества, необходимые для развития (роста) микроорганизмов, вводят в достаточном количестве в состав синтетической питательной среды. Последняя содержит также углевод (например, глюкозу), из которого молочнокислые бактерии образуют молочную кислоту [259—261]. [c.104]

Для размножения любой бактерии (независимо от целей) необходимо обеспечить подходящее биофизическое окружение и биохимические питательные компоненты. В гл. 6 приведены методы контроля таких биофизических факторов, как pH, температура, подача и удаление кислорода, и другие. В гл. 7 рассмотрены потребности в питательных веществах, состав синтетических и комплексных сред и количественные определения роста бактерий. Умелое обращение с биофизическими, биохимическими и биологическими факторами приобретает особую важность в получении накопительных культур и последующего выделения бактерий в виде чистой культуры (гл. 8). [c.163]

Молочнокислые бактерии обитают на поверхности растений, в молоке, на пищевых продуктах, в кишечнике человека и животных. Они имеют много общих при -знаков, важнейшие из них следующие образуют молочную кислоту, положительно окрашиваются по Граму, обычно не образуют спор, неподвижны, кокки или палочки требовательны к источникам азота (многие не развиваются на простых синтетических средах), не образуют каталазу, которая расщепляет перекись водорода на воду и кислород. Если иа колонию молочнокислых бактерий на питательной среде нанести каплю 3%-ного раствора перекиси водорода, выделения кислорода не наблюдается. Колонии бактерий, образующих каталазу, в этих условиях покрываются пузырьками кислорода. [c.92]

Группа 2. Аэробные, подвижные спиралевидные или изогнутые грамотрицательные бактерии. Прокариоты, входящие в эту группу, имеют жесткую клеточную стенку, так что клетка свою форму не меняет. Движение осуществляется с помощью одного или множества полярно расположенных жгутиков. Хемоорганогетеротрофы, существенно различающиеся потребностями в питательных веществах. Некоторые виды могут расти на простой синтетической среде, для роста других необходимы сложные среды. К роду Spirillum относятся в основном сапрофиты, обитающие в стоячих и загрязненных водах, на гниющих растительных и животных остатках. Ряд свободноживущих форм — обитатели морских вод. Есть среди них и паразиты. Некоторые виды патогенны. [c.164]

Из уравнения (П.4) следует, что если построить график зависимости Ig// от t, то получится прямая с наклоном 0,301/7, пересечение которой с осью ординат при t — Q даст Ig/v o. На фиг. 26 приведены два таких графика, описывающих рост двух культур Е. соН. Одна из этих культур растет в солевой среде с глюкозой, состав которой приведен в табл. 1, а другая — в среде, содержащей питательный бульон. Измерение наклонов прямолинейных участков этих двух кривых показывает, что в солевой среде с глюкозой Г = 50 мин, тогда как в питательном бульоне Т = = 20 мин. Следовательно, в мясном бульоне бактерии растут в два с лишним раза быстрее, чем в синтетической среде. При такой скорости роста экспериментатор легко может получить 6 генераций за два часа, тогда как для получения стольких же поколений у человека требуется 120 лет. [c.55]

Следующий опыт, впервые проведенный в конце 50-х годов, показывает, что механизм регуляции активности ферментов с помощью ингибирования конечным продуктом является общим для метаболизма бактерий. Культуру Е. соИ выращивали в синтетической среде, подобной приведенной в табл. 1, но содержащей меченную С глюкозу в качестве единственного источника углерода. В этих условиях удельная радиоактивность всех строительных блоков клетки должна быть такой же, как и удельная радиоактивность углерода глюкозы (в питательной среде), из которой они синтезированы. [c.109]

Хотя капсулы, слизистые вещества и чехлы являются необязательными структурами прокариотной клетки, им приписывают определенные полезные для клетки функции. Вязкость внеклеточной среды, обусловленная наличием слизистых веществ, очевидно, благоприятна для клетки. Они защищают клетку от механических повреждений, высыхания, создают дополнительный осмотический барьер, служат препятствием для проникновения фагов. Иногда слизистые образования могут служить источником запасных питательных веществ. С помощью слизи осуществляется связь между соседними клетками в колонии, а также прикрепление клеток к различным поверхностям. В настоящее время способность определенных бактерий синтезировать эти своеобразные внеклеточные полимеры находит практическое применение их используют в качестве заменителя плазмы крови, а также для получения синтетических пленок. [c.33]

Именно способность бактерий к быстрому размножению обеспечивает их численный перевес среди живых форм. Тем не менее имеются естественные причины, препятствующие взрывам численности в бактериальных культурах. Независимо от размера сосуда бактериальная культура не может очень долго продолжать расти экспоненциально с периодом генерации 20 мин. Если бы такой рост был возможен, то одна-единственная бактерия Е. соИ через 24 ч образовала бы 2 , или около 10 , потомков, суммарный вес которых составил бы несколько десятков тысяч тонн. Еще через 24 ч экспоненциального роста вес потомков этой бактерии превысил бы в несколько раз вес земного шара. Наша планета, как известно, не превратилась в сплошную массу микробов. И это не только потому, что бактерии исчерпывают питательные вещества, поддерживающие их рост, но и потому, что при росте бактерии непрерывно отравляют окружающую среду, выделяя все большее количество продуктов, токсичных для них самих. Как в природе, так и в лаборатории это отравление среды вызывает вскоре замедление роста — от максимального (наблюдаемого при наиболее благоприятных условиях) вплоть до полной его остановки (когда способность репродукции падает наконец до нуля). На этой стадии, когда не происходит дальнейшего увеличения числа клеток, культура достигает стационарной фазы (фиг. 26). Культуры Е. oli, растущие как Б простой синтетической среде, так и в питательном бульоне, вступают в стационарную фазу, когда концентрация бактерий составляет примерно от 2-10 до 5-10 клеток в 1 мл. [c.56]

Если бактерии не растут на полученной таким путем среде, то это можно объяснить тем, что они нуждаются в неидентифицированном факторе, или тем, что нарушено соотношение известных факторов роста. Можно также предполагать потребность бактерий в известных факторах роста (пептидах, производных витаминов, жирных кислотах, нуклеотидах, неорганических ионах и др.), которые содержатся в неочищенных компонентах комплексной среды, но отсутствуют в смесях испытываемых синтетических веществ. В этом случае необходимо детально выяснить потребности бактерий в питательных веществах [70]. [c.211]

К основным относятся среды, применяемые для выращивания многих бактерий. Это триптические гидролизаты рыбных продуктов или казеина, из которьк готовят жидкую среду—питательный бульон и плотную —питательный агар. Такие среды служат основой для приготовления более сложных сахарных, кровяных, сывороточных и других комбинированных, удовлетворяющих пищевые потребности более требовательных патогенных бактерий. В качестве основных иногда используют синтетические питательные среды, приготовленные из навесок определенных минеральньпс солей, к которым добавляют аминокислоты, витамины, глюкозу. К ним также можно добавлять пептон, кукурузный или дрожжевой экстракт и другие питательные вещества. Синтетические среды чаще всего применяют в научно-исследовательской практике, а синтетические среды с упомянутыми [c.43]

БИОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ АНАЛИЗА, методы качеств. обнаружения и количеств, определения неорг. и орг, соединений, основанные на применении живых организмов в кач-ве аналит. индикаторов. Живые организмы всегда обитают в среде строго определенного хим. состава. Если нарушить этот состав, напр., исключив из питательной среды определяемый компонент или введя его дополнительно, организм через нек-рое время подаст соответствующий сигнал. В Б. м, а. устанавливаются связи характера и (или) интенсивности ответного сигнала с кол-вом определяемого компонента. В кач-ве индикаторов применяются микроорганизмы (бактерии, дрожжи, плесневые грибы), водоросли и высшие растения, водные беспозвоночные и позвоночные животные (простейшие, ракообразные, моллюски, личинки комаров, олигохеты, пиявки, рыбы и др.), насекомые, черви, а также ткани, разл. органы и системы (нервная, кровеносная, половая и др,) теплокровных. Питательная среда м, б. естественной, искусственной или синтетической. [c.287]

Используемые при этом питательные среды весьма сложные и дорогие (см специальную часть книги), обычно содержащие антибиотик и сыворотку животных (от 5 до 20%) К сожалению, сыворотки могут выступать источником заражения (загрязнения) культуры животных клеток бактериями, вирусами, микоплазмами, или какими-либо ингибиторами Поэтому синтетические сре-№1 представляются более удобными и выгодными с экономической точки зрения На IV этапе клетки переносят в биореактор бол1,шо5о объема Биоре торы для культур животных клеток считают большими, начиная с объема 10 литров, а если имеются 100—200-литровые биореакторы, то это исключительно большие аппараты Они отчасти напоминают биореакторы, применяемые в промышленной микробио- [c.344]

Размеры бактерий, особенно длина палочковидных форм, зависят от условий обитания. Изменения pH, консистенции среды, концентрации солей и многих питательных веществ, а также состав питательной среды оказывают прямое влияние на размеры клеток. Сказываются на размерах и экологические условия. Поэтому длина палочковидных форм без учета совокупности условий имеет лишь относительное диагностическое значение. В промышленных сточных водах и синтетических средах, содержащих в качестве единственного источника углерода синтетические соединения, такие как ла/за-нитроанилин, толуидины, дихлорбензол, пикриновая кислота, капролактам и поверхностно-активные вещества (ПАВ), мы постоянно наблюдали измельчание палочковидных бактерий родов Pseudomonas, Ba illus и itroba ter по сравнению с культурами на универсальных питательных средах. Этот факт не должен игнорироваться микробиологами в практической работе по микробиологии промышленных стоков. Образование фильтрующихся форм нами не проверялось . [c.14]

При сравнительном подсчете метаногенных бактерий показано, что в жидкой среде вырастает в 10 раз больше клеток, чем на твердой [495]. Наиболее многочисленными были водородокисляющие бактерии. Число бактерий, ферментирующих уксусную кислоту, всегда на 1—3 порядка меньше. Зиберт с сотр. (цит. по [495]) также изучали влияние состава питательной среды на результаты определения числа клеток метаногенных бактерий. Были испытаны 22 варианта среды и подобран оптимальный состав питательных веществ. На предложенной авторами среде обнаружено от 1 X 10 до 1,9 X 10 ° клеток/мл. Однако эти данные получены для экспериментальной установки, перерабатывающей синтетический сток. Аналогичных данных с использованием этой среды для исследования бактерий в производственных сооружениях нет. [c.140]

Будут ли в накопительной культуре ( колонке Виноградского , рис. 12.13) развиваться преимущественно пурпурные или зеленые бактерии, зависит от имеющихся доноров водорода и от концентрации HjS. Если цилиндр, в котором находятся песок, почва и яичный белок, заполнить водой, а затем внести в него инокулят из места обитания фототрофных бактерий, то на свету будут развиваться виды Rhodospirilla eae. Если же, добавив сульфат кальция, обеспечить постоянное образование HjS в результате восстановления сульфата, то рост пурпурных несерных бактерий будет подавлен и доминировать будут серные бактерии. В синтетических питательных растворах, содержащих витамин Bi2 можно получать накопительные культуры различных видов зеленых и пурпурных бактерий, более тонко варьируя такие факторы, как концентрация сероводорода и питательных солей, pH, температура и интенсивность света. Формы, отличающиеся особой чувствительностью к условиям среды, например бактерии, образующие газовые вакуоли, нуждаются обычно в более низких концентрациях H2S, более [c.382]

Для того чтобы осуществить скрещивание двух мутантов фага, применяется одновременная адсорбция двух гнтаммов фагов на бактериях. Необходимо создать такие условия, чтобы различные частицы фага произвели инъекцию своей ДНК в одну и ту же клетку. С этой целью берут значительный избыток числа частиц фагов над числом клеток в миллилитре и, кроме того, в среду, в которой происходит заражение, добавляется агент, тормозящий синтетические процессы в клетках (K N). Это делается для того, чтобы инъекция ДНК первой частицей фага не помешала вторичной инъекции следующим фагом. Когда метаболические процессы в клетке не остановлены, подобное взаимное влияние имеет место. Когда стадия заражения прошла, культура бактерий осво--бождается от избытка фагов с помощью центрифугирования или с помощью имунной антисыворотки и переносится на нормальную питательную среду, на которой идет созревание и лизис клеток. Последний этап — нанесение культуры на чашки Петри, специально приготовленные для отыскания рекомбинантов. Вся процедура достаточно проста. В процессе созревания одного поколения фагов рекомбинационному процессу подвергается практически каждая хромосома фага, а часто происходят и тройные рекомбинации (Херши),которые обнаружатся, если провести заражение клеток тремя типами мутантов, отличающимися по трем разным локусам. Последний факт показал не только, что в процессе генетической рекомбинации участвуют все молекулы ДНК фага, но более того, — что рекомбинация повторяется многократно с каждой молекулой в течение одного цикла созревания. [c.368]

Парди и Або удалось синхронизировать деление клеток Е. соИ простым способом, отфильтровав от культуры примерно 10% самых маленьких, а следовательно, и самых молодых клеток. На рис. 143 изображены кривая роста числа клеток в такой культуре и одновременно количеств белка, РНК и ДНК. Так как обе нуклеиновые кислоты и белок растут экспоненциально все время, то независимо от актов деления клеток скорость синтеза ДНК пропорциональна наличной живой массе клеток. В молодых клетках Е. oli количество белка составляет 10" г на 1 клетку, количества ДНК и РНК практически одинаковы и равны 10" г на 1 клетку. В конце цикла роста перед делением количества удваиваются. Значит, процессы внутриклеточного синтеза идут < j npaKTH4e KH постоянной скоростью. Конечно, если наблюдать за ростом культуры бактерий в течение нескольких десятков времен деления, то обнаруживается нарушение стационарности. Постепенно синтетические процессы в культуре затухают и рост останавливается. Иногда рост лимитирует какой-либо компонент питания, который истощается в питательной среде, иногда процесс роста отравляется вследствие накопления в среде продуктов метаболизма. [c.448]

Среди индивидуальных образцов и штаммов молочнокислых бактерий могут быть найдены культуры, которые требуют различных комбинаций указанных факторов роста. Если даже данное питательное вещество не является существенным для роста данного организма, оно часто способствует раннему росту. Так L. arabinosus хорошо растет без витамина Ве, но его развитие значительно ускоряется пиридоксином [95], пиридоксамином или пири-доксалом [89]. Поэтому всякая синтетическая среда, предназначенная для испытания с рядом различных образцов этих организмов, должна содержать полный на-6oip этих факторов роста или их физиологические эквиваленты. [c.173]

Одна из них растет в питательном бульоне (/), а другая — в синтетической среде (//), содержащей глюкозу в качестве динственного источника углерода. По оси ординат отложен логарифм мутности культуры. Единицы измерения мутности выбраны таким образом, что мутность в 100 единиц соответствует плотности бактерий около 10 клеток на 1 мл. [c.55]

Как следует из фиг. 26, время генерации Т у Е. oli зависит от состава среды, в которой растут бактерии. Так, в питательном бульоне значение Т составляет 20 мин, тогда как в простой синтетической среде Т = = 50 мин. Точная причина, по которой бактерии растут быстрее в питательном бульоне, неясна, однако она, безусловно, связана с тем обстоя тельством, что в бульоне в готовом виде присутствует множество продуктов, таких, как аминокислоты, пурины и пиримидины, которые бактериям приходится синтезировать самим, если они растут в бедной синтетической среде. Таким образом, при росте в бульоне бактериям приходится тратить [c.493]

М. Месельсон и Ф. В. Шталь (1958 г.) в экспериментах над Е. соН показали, что в клетке репликация ДНК происходит полуконсервативным способом. Они выращивали Е. соН в синтетической среде, содержащей глюкозу и минеральные соли. Источник азота (NH4 I) вместо обычного легкого азота содержал тяжелый изотоп в результате чего все азотсодержащие вещества бактерий, в том числе и ДНК, становились тяжелыми . Затем бактериальные клетки отмывали и переносили на питательную среду, содержащую в качестве источника азота изотоп где происходил их дальнейший рост. При исследовании ДНК бактерий центрифугированием через равные промежутки времени было обнаружено, что после кратковременного роста, в течение которого число клеток удваивалось, обнаруживаемая ДНК содержала равные количества и N. Это именно тот результат, которого следовало ожидать, исходя из полукон- [c.348]

Такая реакция на изменения в составе питательной среды наблюдается не только при необходимости использовать новые субстраты она используется также для выключения синтезов эндогенных соединений при их внезапном появлении в среде. Например, триптофан, одна из существенных аминокислот, синтезируется при участии фермента триптофан-синтазы. Однако если в среде, на которой выращиваются бактерии, присутствует триптофан, синтез фермента немедленно прекращается. Это явление получило название репрессия. Она позволяет бактериальной клетке избежать перевбда своих ресурсов на ненужную в данный момент синтетическую активность. [c.176]

Потребности бактерий в неорганических ионах, как правило, удовлетворяются добавлением к синтетическим средам К+, Mg +, Мп -, Fe2+или РеЗ+, Р04= -и 504 . Часто бывает необходимо присутствие следовых количеств некоторых других ионов (Zn +, u +, Со " , Са +, 1 , молибдата и др.), но обычно они присутствуют в достаточном количестве в качестве примесей в других компонентах среды или содержатся в водопроводной воде, используемой для приготовления сред. Сложные питательные среды, в которые входят пептон, дрожжевой экстракт, мясной экстракт (infusion) или сходные компоненты, содержат достаточное количество ионов металлов. [c.201]

Группа 6, Спиралевидные и изогнутые бактерии. Бактерии, входящие в эту группу, объединяются в семейство Spirilla eae. Клетки-имеют вид изогнутых палочек или спиралевидных форм с несколькими витками. Клеточная стенка жесткая, так что клетка свою форму не меняет. Движение осуществляется с помощью одного или множества жгутиков, расположенных на одном или обоих полюсах клетки. Среди представителей этой группы есть аэробные, микроаэрофильные и анаэробные формы. Хемоорганогетеротрофы, существенно различающиеся потребностями в питательных веществах. Некоторые виды могут расти на синтетической среде, содержащей единственный источник углерода,, аммонийный азот и минеральные соли для роста других необходимы сложные белково-пептонные среды. К роду Spirillum относятся в. основном сапрофиты, обитающие в стоячих и загрязненных водах, на гниющих растительных и животных остатках. Ряд свободноживущих форм — обитатели морских вод. Есть среди них и паразиты. Некоторые виды патогенны. [c.145]

При подборе условий выращивания новой быделен-ной бактерии вначале используют так называемую комплексную среду, состав которой точно определить невозможно, так как она содержит неочищенные компоненты. Обычно в нее входит ферментативный гидролизат белка, обеспечивающий потребность в таких источниках азота, как аминокислоты, сахар (обычно глюкоза) как источник энергии и углерода, различные соли для удовлетворения потребности бактерии в неорганических ионах и дрожжевой экстракт для обеспечения всех потребностей в витаминах. Когда потребности в питательных веществах бактерий приблизительно выявлены, можно использовать полусинтетическую среду. В такую среду вносят известные соединения как явно необходимые в нее добавляют также небольшое количество дрожжевого экстракта для обеспечения пока еще неизвестных потребностей. В конце концов находят состав синтетической среды, т. е. среды определенного состава, которая полностью удовлетворяет всем потребностям в питательных веществах. Выбор нужной среды зависит от целей эксперимента. Сложные синтетические среды довольно дороги, поэтому чаще используются комплексные среды неопределенного состава. [c.210]

Один из существенных факторов износа материалов - биологические разрушения. К биологическому износу относят нарушения целостности материалов под воздействием различных микроорганизмов и насекомых. Повреждение изделий микроорганизмами происходит при хранении, транспортировке и эксплуатации при наличии для них питательной среды, влаги и благоприятной температуры. Развитие бактерий, грибков, плесени вызывает уменьшение прочности, выносливости и устойчивости к треншо, а так же портится внешний вид, изменяется окраска и блеск. Наиболее восприимчивы к разрушениям микроорганизмами материалы из целлюлозных волокон, менее восприимчивы из шерсти и натурального шелка совсем не разрушаются материалы из синтетических нитей. Для предупреждения биологического износа изделия обрабатывают специальными антисептиками или хранят при пониженной относительной влажности воздуха. [c.153]

ГММО могут выживать и в случае, когда они конструируются для потребления веществ, которые не встречаются в природных условиях, в частности синтетических органических соединений, попадающих в природную среду как загрязнители. Предполагается, что их существование должно быть ограничено загрязненными участками при исчерпании загрязнения микроорганизм лишится питательного компонента и популяция ГММО элиминируется. Однако можно конструировать ГММО, которые способны потреблять разные природные субстраты. В этом случае вероятность выживания генетически измененных микроорганизмов в окружающей среде повышается. Например, улучшение способности к росту бактерий на экзогенном пестициде 2,4-Д в ризосфере одновременно может улучшить их способность к росту на сукцинате (2,4-Д вводится в цикл трикарбоновых кислот через сукцинат), эндогенном экссудате азотфиксирующих клубеньков, и таким образом повысить конкурентоспособность ГММО в ризосфере при потреблении сукцината корневых вьщелений. [c.243]

В качестве источника азота уксуснокислые бактерии используют минеральные соли, лучше всего аммонийные. Их рост в синтетических питательных средах часто зависит от наличия витаминов, потребности в которых у разных видов различны. Так, G. oxydans нуждается в пантотеновой, пара-аминобензойной и никотиновой кислотах. В промышленности в питательные среды для G. oxydans в качестве источника указанных витаминов до- [c.478]

Подводя итог, мы можем сказать, что потребности любой клетки в питательных веществах определяются ее биосинтетическими возможностями. Если эти возможности велики и разнообразны, то среда для роста может быть простой, а если они невелики и узкоспециализированы, то среда должна быть сложной. Вно зависимости от того, синтезируются они в клетке или поступают извне, в конце концов все клетки должны иметь один и тот же набор веществ — сахаров, аминокислот, пуринов, ниримидинов и т. д. Естественное окружение клетки определяет ее потребности. У клеток, вынужденных жить в условиях постоянного недостатка питательных веществ (почти все бактерии, водоросли и т. д.), биосинтетические возможности должны быть велики и разнообразны. У клеток, обитающих только в богатой питательной среде (простейшие, которые питаются другими клетками, клетки животных, непрерывно омываемые богатой питательными веществами кровью, и некоторые паразитические микроорганизмы), синтетические возможности ограничены. [c.74]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология