Рост колоний микроорганизмов

Пищевое сырье и продукты имеют ряд особенностей, накладывающих дополнительные требования к процессам их хранения, транспортировки и переработки. Нарушение условий хранения и правил транспортировки приводит к значительным потерям и порче продукции сельского хозяйства. В процессе переработки изменяется биологическая ценность и органолептические свойства продуктов. Характер этих изменений зависит от параметров технологического процесса, режимов работы и качества оборудования. Многие виды продуктов обладают высокой коррозионной активностью и являются хорошей питательной средой для роста колоний различных микроорганизмов, представляющих опасность для потребителей. [c.12]

В процессе роста микроорганизмов в дистиллированной воде отмечалось появление перекиси водорода (рис. 5.7), содержание которой определялось электромагнитной активностью микроорганизмов. На зависимости, представленной на графике (рис. 5.7), можно выделить три участка, обусловленные различиями в дистантной индукции перекиси водорода в воде в процессе роста колонии микроорганизмов. В ближней зоне действия, в которой электромагнитная активность, очевидно, максимальна, перекись водорода не образуется. В промежуточной области доминирует химический канал релаксации энергии в возбуждаемой среде, а на больших расстояниях имеет место уменьшение равновесной концентрации перекиси водорода, что, вероятно, связано с понижением общей энергии электромагнитного возбуждения среды. [c.196]

Порча изделий из пластических масс, вызываемая плесневыми грибами, обычно не так велика и интенсивна, как изделий из органических природных материалов. В некоторых случаях, особенно при использовании неустойчивых примесей, развитие плесеней бывает обильным и вызывает изменения свойств пластических масс. С начала роста плесени ее влияние на субстрат зависит от окружающей влажности. Росту культуры плесени способствуют конденсации водяных паров и скопление влаги на поверхности материала. Некоторые пластические массы уже под влиянием повышенного влагосодержания значительно изменяют свои свойства. К этому добавляется химическая коррозия пластиков, вызываемая продуктами обмена веществ плесневых грибов и приводящая, например, к снижению у материала предела прочности при растяжении, гибкости и т. д. Благодаря свойственной пластическим массам проводимости микробный налет повышает электропроводность материала и уменьшает сопротивление его действию ползучих электрических токов. Это наблюдается даже в тех случаях, когда плесень заметна еще только под микроскопом. Колонии плесеней в то же время аккумулируют механические загрязнения из воздуха, что значительно влияет на свойства материала и делает его питательным субстратом для роста других микроорганизмов. В табл. 27 и 28 приведены виды плесеней, выделенные из двух пластиков — бакелита и поливинилхлорида — в разных областях КНР описаны формы их роста и влияние на материалы, изученные в результате лабораторного исследования. [c.102]

КОЛОНИИ микроорганизмов (рис. 1). По форме, окраске колоний, их величине и скорости роста можно судить о систематической принадлежности микроорганизмов. [c.11]

Чашки выдерживают от 2 до 7 суток, так как скорость роста различных микроорганизмов неодинакова. Выросшие изолированные колонии отсевают петлей в пробирки на поверхность скошенной плотной среды или в жидкую среду. [c.78]

Чистоту культуры проверяют также посевом на ряд питательных сред, в том числе на мясо- пептонный агар. Однородность характера роста колонии свидетельству- ет о чистоте выделенной культуры микроорганизмов. Набор сред определяется особенностями выделяемых микроорганизмов и их возможных спутников. [c.80]

Спустя некоторое время можно наблюдать, что в чашке, в которой почвенные частицы отсутствуют, на среде развиваются многочисленные колонии микроорганизмов. В другой же чашке, с частицами почвы, колонии микробов не развиваются, несмотря на то, что в промежутках почвы имеется достаточно пространства для их роста. Отсюда можно сделать лишь один вывод почвенные частицы обладают способностью задерживать рост микроорганизмов, попадающих из воздуха и не приспособленных к жизни в условиях почвенной среды. [c.225]

В процессе жизнедеятельности одни микроорганизмы подготавливают условия для развития других видов. Так, обнаружен рост грибов одного вида на погибающих колониях других грибов. Это способствует накоплению продуктов метаболизма и усилению эффекта биоповреждений несовершенными грибами. [c.122]

Методика идентификации с помощью ПГХ достаточно проста по сравнению с традиционными методами исследования микроорганизмов и требует значительно меньше затрат времени. При идентификации методом ПГХ используют экстракты культур или непосредственно сухие клетки или живые субстраты, которые помещают в пиролитическое устройство на поверхность термоэлемента или в стеклянный капилляр (ампуле) и подвергают пиролизу. Было показано, что микроорганизмы дают характерный набор продуктов пиролиза, по которым можно провести дифференциацию путем простого сравнения пирограмм исследуемых и известных микроорганизмов, при этом во многих случаях необходимо учитывать возраст культуры и среду роста микроорганизмов. Хорошая воспроизводимость пирограмм позволяет проводить идентификацию на уровне видов и даже штаммов, при этом благодаря чувствительности метода для идентификации достаточно одной колонии микроорганизмов. [c.214]

Процент подавления с — а 100, где С—зона роста коло-микроорганизмов С ний гриба в контроле а — зона роста колоний гриба по препарату. [c.82]

Изучать рост микроорганизмов, имеющих мицелий, сложнее, чем рост более удобных микроорганизмов, клетки которых бинарно делятся и затем немедленно расходятся. Проблемы и методы изучения роста колоний [c.447]

Первый способ. Выросшие колонии заливают расплавленным и охлажденным до 50-55 °С питательным агаром, содержащим тест-организм, чувствительный к изучаемому антибиотику. Затем чашки на 20-24 ч помещают в термостат при температуре, оптимальной для развития тест-культуры. За это время вокруг колоний образуются зоны отсутствия роста тест-организма. Размеры диаметра зон отсутствия роста вокруг колоний микроорганизма различны. Чем интенсивнее колония образует антибиотик, тем больше зона отсутствия роста тест-организма. Такие наиболее активные колонии легко обнаружить (рис. 14). [c.147]

Подсчет выросших колоний. Колонии микроорганизмов в зависимости от скорости роста подсчитывают через 2—15 суток инкубации. Подсчет, как правило, проводят, не открывая чашек Петри. Для удобства каждую просчитанную колонию отмечают точкой на наружной стороне дна чашки. При большом количестве колоний дно чашки Петри делят на секторы, просчитывают колонии в каждом секторе и суммируют результаты. Иногда для подсчета колоний используют специальные полуавтоматические счетчики. [c.125]

На поверхности плотных питательных сред в зависимости от посева микроорганизмы могут расти в виде колонии, штриха или сплошного газона. Колонией называют изолированное скопление клеток одного вида, выросшее в большинстве случаев из одной клетки. В зависимости от того, где растет микроорганизм клетки (на поверхности плотной питательной среды, в толще ее или на дне сосуда), различают поверхностные, глубинные и донные колонии. Колонии, выросшие на поверхности среды, отличаются большим разнообразием и являются наиболее существенной особенностью роста многих микроорганизмов на плотном субстрате. При их описании учитывают следующие признаки [c.151]

Для выделения чистых культур аэробных бактерий делают высев на чашки Петри из накопительной культуры. Ее каплю (лучше из соответствующего разведения) наносят и осторожно размазывают стерильным стеклянным шпателем по поверхности плотной среды, после чего этим же шпателем протирают поверхность последующих трех-четырех чашек. Чашки выдерживают от двух до семи суток, так как скорость роста различных микроорганизмов неодинакова. Выросшие изолированные колонии отсевают петлей в пробирки на поверхность скошенной плотной среды или в жидкую среду. [c.52]

Большинство изготовителей производят мембраны с маркированной сеткой, что облегчает подсчет бактериальных колоний. На первых порах для нанесения сетки на мембранах использовалась краска, которая иногда оказывала токсическое действие на некоторые микроорганизмы, что приводило к заниженным результатам в сравнении с немаркированными мембранами. Токсическое действие маркировочных сеток может быть выявлено по прекращению интенсивного роста колоний, примыкающих к нанесенным на мембране линиям. В дополнение к токсичности, вызванной краской, определенное ингибирование роста на маркированных мембранах может быть вызвано механическим действием толстых маркировочных линий на развитие колонии, а также потому, что сетка препятствует диффузии к микроорганизмам питательных веществ [82]. Можно полагать, что в настоящее время благодаря высокой конкуренции между фирмами, производящими мембранные фильтры, все изготовители маркированных мембран проверяют качество своей продукции и при работе с ними теперь не возникает затруднений. Однако потребитель всегда должен учитывать те проблемы, которые могут возникнуть ч.ри использовании мем- [c.239]

После соответствующей инкубации колонии, выросшие на мембране (рис. 9.2,6), подсчитывают с помощью подходящего метода. В большинстве случаев эти колонии можно подсчитать-невооруженным глазом, но лупа с небольшим увеличением не будет лишней. Некоторые используют стереомикроскоп, однако это имеет смысл лишь в случае очень небольших колоний. Счет можно облегчить, регулируя подсветку, а контрастность, может быть изменена применением черных мембран или красителей, которые включаются в колонии во время их роста. Необходимо быть уверенным в том, что такие красители не тормозят рост подсчитываемых микроорганизмов. Если для особой цели используют дифференциальную среду, подсчитываются только те колонии, которые обладают характерной окраской или блеском. [c.244]

Аэробные и факультативно-анаэробные бактерии. На первом этапе из исследуемого материала готовят мазки, микроскопируют их, затем сеют материал на плотную среду в чашки Петри шпателем или бактериологической петлей (см. цв. вклейку, рис. 6). При этом достигается механическое разъединение микроорганизмов на поверхности питательной среды, что позволяет получить их рост в виде изолированных колоний. В отдельных случаях исследуемый материал вначале сеют в жидкую среду накопления, а [c.30]

Бактериологическое исследование. В 1 -й день исследования петлей или шпателем материал засевают в чашки с 5%-м кровяным, а также желточно- или молочно-солевым агаром, которые инкубируют 18 — 24 ч при 37 °С и столько же на свету при комнатной температуре (для более четкого пигментирования колоний). Солевые среды ввиду высокого содержания хлорида натрия являются селективными для стафилококков, рост большинства сопутствующих микроорганизмов на них подавляется. [c.105]

Непосредственный посев материала на питательные среды (мокрота, гной) обычно не дает положительного результата, так как в присутствии сапрофитов, особенно гнилостных микроорганизмов, рост пневмококков подавляется. Поэтому гной и мокроту предварительно обрабатывают (выбирают комочки, растирают их в фарфоровой ступке, добавляя 1 мл ИХН) и для проведения биопробы вводят внутрибрюшинно белым мышам. Они очень чувствительны к пневмококку и погибают от септицемии через 18 — 72 ч. Труп мыши вскрывают, кровь из сердца, кусочки внутренних органов и перитонеальную жидкость сеют в чашку с кровяным агаром и в пробирку с сывороточным бульоном для подращивания. Колонии пневмококка напоминают колонии стрептококка мелкие, почти плоские, непрозрачные, с ореолом зеленого цвета, реже полного гемолиза. Характерно вдавление в центре колонии. [c.114]

Синергизм биоповреждений возможен также при взаимодействии различных групп, родов и видов микроорганизмов. В процессе жизнедеятельности одни микроорганизмы подготавливают условия для развития других видов. Так, обнаружен рост грибов одного вида на погибающих колониях других грибов. Это способствовало накоплению продуктов метаболизма и усилению эффекта биоповреждений несовершенными грибами. Случаи катастрофического разрушения сооружений в результате синергического эффекта, вызванного последовательным действием ацидофильных и ацидофобных тионовых бактерий, описаны в литературе [11. Борьба с биоповреждениями на этой стадии носит запоздалый характер. Мероприятия должны быть направлены на предотвращение синергизма биоповреждений. Наиболее эффективные из них -т- изменение условий эксплуатации конструкций техники и сооружений. [c.68]

Критерием биоцидности является отсутствие прорастаний при контакте с питательной средой, критерием биостатичности (фунгистатичности) — рост колоний микроорганизмов на питательной среде. [c.68]

Очень большое значение для медицинской практики приобрели антибиотики, содержащие фрагмент р-лактама ( -лактамные антибиотики). Простейшие из них монобактамы 6.42 и нокардицины 6.43 принадлежат к производным азетидинона. Другие члены этого семейства имеют бицикличе-ское строение. Особое место среди р-лактамных антибиотиков занимают пенициллины 6.44. Еще в 1870 г. было замечено, чт1э вблизи зараженных плесенью Peni illium участков питательной среды не развиваются колонии микроорганизмов. Однако прошло почти 60 лет, прежде чем английский ученый Александер Флеминг показал, что плесень выделяет в окружающее пространство водорастворимые вещества, которые служат причиной гибели растущих колоний стафилококков. Флеминг считается первооткрывателем пенициллинов. Однако мысль о клиническом применении антибиотиков и первые попытки их использования для лечения инфекций относятся лишь к 1941 г. Химическая структура пенициллина 6.44 установлена в 1945 г. Примерно с этого же времени началась клиническая история пенициллинов. Таким образом, для признания ценности этих веществ понадобилось более 70 лет. Но обнаруженные лечебные свойства были столь важны, что открыли собой новую эру в медицине. С помощью пенициллина стало возможным бороться с большим числом инфекционных заболеваний, причиняемых так называемыми грам-положительными микроорганизмами. К этой группе бактерий относятся, в частности, стафилококки, а многие стафилококковые инфекции ранее считались неизлечимыми. Успехи клинического применения пенициллина вызвали взрывообразное возникновение и становление науки об антибиотиках, которая динамично развивается и в настоящее время. За короткое время были открыты и изучены сотни метаболитов микроорганизмов, способных подавлять рост бактерий. Со многими из них уже состоялось знакомство в предьщущих разделах. [c.438]

Все контейнеры с культуральной едой, где обнаружен рост или флуоресценция и получены колонии микроорганизмов (после с культуриро-вания на слое молочного агара), дающие реакции (I) или (П) (см. табл. 61), считаются соответствующими положительному результату исследования на присутствие Pseudomonas aeruginosa. [c.269]

Для многих микроорганизмов описано явление стимуляции прорастания спор при обработке слабыми дозами НММ. На некоторые грибы НММ оказывала стимулирующее действие даже в концентрации 1—1,5% [4]. В условиях нашего эксперимента НММ в концентрации 0,04М (менее 0,5%) не оказывала стимулирующего действия на прорастание спор V. dahliae, число жизнеспособных снор уменьшалось, очень резко (рис. 1). Небольшие экспозиции (15—30 мин.) почти не оказывали влияния на скорость роста колоний, полученных из обработанных НММ спор. Воздействие на споры в течение 2—4 час. замедляло рост колоний в 1,5—2 раза по сравнению с контролем. Аналогичное явление описано у хлореллы, где показано, что НММ резко тормозит клеточное деление [5]. НММ индуцировала большое количество карликовых ко.лоний. При экспозициях 2—4 часа число их составляло 30—40% от всех измененных колоний. Большая часть карликов при пересевах восстанавливала способность формировать колонии, близкие к исходному типу, меньшая — стабильно сохраняла карликовость. [c.335]

В качестве объекта исследований использовали микроорганизмы andida tropi alis ИБФМ-303 Е. oli и др. Действие поля на жизнедеятельность микроорганизмов изучали в зависимости от напряженности поля, частоты и продолжительности воздействия. При частотах 200 кГц и 1 МГц, напряженности поля 170 и 250 В/см, продолжительности воздействия 5 и 10 мин заметного влияния на жизнеспособность микроорганизмов не обнаружено. При частотах 3 и 5 МГц поля оказывают бактерицидное действие. Наиболее жизнеспособными оказались дрожжи. Бактерицидное действие неоднородного электрического поля нельзя отнести за счет теплового эффекта, так как увеличение температуры суспензии было пренебрежимо малым. Тестом на выживаемость микроорганизмов являлся рост колоний на мясопептонном агаре в чашках Петри. О выживаемости и возможных морфологических изменениях микроорганизмов судили по скорости роста колоний, их форме, размеру и распределению по чашке Петри. [c.20]

Мейерс и Эриксон [411] нашли, что при прибавлении 0,1 % нитрата калия в качестве окислителя улучшается рост микроорганизмов Staphilo o us aureus, используемых в качестве эталонных (колонию микроорганизмов покрывали стеклянной пластинкой). [c.289]

Что касается второй половины приведенной формулировки, то имеются подтверждающие ее экспериментальные данные. Так, сравнение трех патогенных для гороха грибов с тремя непатогенными показало, что полное подавление роста колоний непатогенных грибов достигается при концентрациях пизатина от 60 до 100 г мл агара, тогда как те же концентрации подавляли рост патогенных грибов лишь на 25—40% (рис. 87). С эволюционной точки зрения понятно, что паразитировать на растении может лишь тот микроорганизм, который обладает выносливостью к фитоалексину, образуемому данным растением. [c.296]

Одним из преимушеств метода НВЧ является возможность его использования в отсутствие способа культивирования бактерий на твердой среде. Второе преимущество заключается в том, что он удобен в случае высокой вариабельности кинетики роста. Предположим, что некоторые клетки из смешанной культуры растут быстро, образуя на агаре крупные колонии, которые, распространяясь по поверхности, маскируют появляющиеся позже мелкие колонии интересующего нас микроорганизма. Хотя количество таких мелких колоний может быть больше, их невозможно учесть на чашках из-за присутствия колоний более подвижных или быстрее растущих бактерий. Третье преимущество метода НВЧ состоит в том, что в присутствии не представляющих интереса организмов и в отсутствие подходящего метода селекции его можно использовать для выявления легко обнаруживаемых продуктов (например, пигментов или антибиотиков), продуцируемых изучаемыми микроорганизмами. В этом случае, несмотря на более выраженный рост контаминирующих микроорганизмов, количество исследуемых батерий определяют по числу пробирок, где образование характерных продуктов отсутствует. И наконец, метод НВЧ используют в случае, если агар или другие отвердители содержат некоторые факторы (например, тяжелые металлы), которые изменяют достоверность подсчета или взаимодействуют с изучаемыми бактериями. [c.467]

Модели Абросова, Алексеева, а также упомянутые ранее модели Полетаева приводят к новому классу экологических задач, в которых влияние внешней среды выражается непосредственно в виде некоторых функций от концентраций лимитирующих веществ, а не через взаимную конкуренцию видов, как это было в моделях Вольтерра. Модели, учитывающие зависимость скорости роста организмов от концентрации лимитирующего субстрата, получили широкое применение в математической микробиологии. Именно, для колоний микроорганизмов можно создать хорошо контролируемые условия роста и изучать динамику развития популяции в зависимости от параметров среды. Этим моделям будут посвящены следующие параграфы. [c.61]

Сателлизм — усиление роста одного вида микроорганизма под влиянием другого микроорганизма. Например, колонии дрожжей или сарцин, вьщеляя в питательную среду метаболиты, стимулируют рост вокруг них колоний микроорганизмов. При совместном росте нескольких видов микроорганизмов могут активизироваться их физиологические функции и свойства, что приводит к более быстрому воздействию на субстрат. [c.74]

С этой целью брали стерилизованные чашки Петри с питательной средой МПБ (мясо-питательный бульон). На поверхность образца пипеткой наливали по 5 стерильной дистиллированной воды, которая, стекая, собиралась в чашки Петри. Чашки были помещены в термостат при температуре 35 2°С. Через 24 ч было замечено значительное увеличение роста бакте-риалиных колоний (табл. УП. 3). Из исследуемых полимерных материалов больше всего поселилось бактерий на поверхности пенопласта, находившегося как на открытой площадке, так и в подвальном помещении. Этот материал более других служит питательной средой для микроорганизмов. Бактерий на образцах, помещенных в подвальном помещении, примерно в 2,5 раза больше, чем в открытой атмосфере. Такое своеобразие поселения микроорганизмов объясняется как условиями, в которых они размножаются, так и влиянием метеорологических факторов. В подвальном помещении по сравнению с открытой поверхностью более стабильны влажность и температура воздуха, движение воздушных масс замедлено и поэтому создаются благоприятные условия для жизнедеятельности микроорганизмов. [c.98]

Очень элегантный метод был разработан для обнаружения веществ, которые тормозят или, наоборот, стимулируют рост микроорганизмов. Хроматограмму с невидимыми пятнами прикладывают к агаровой плите, содержащей среды с привитыми микроорганизмами, и оставляют на некоторое время. В местах, где на хроматограмме присутствуют вещества, стимулирующие рост, возникают непросвечивающие пятна, образованные колонией растуищх микробов в тех местах, где находятся вещества, тор-мозяище рост (антибиотики и т. д.), наоборот, возникает пятно чистого агара на затемненном фоне. [c.464]

При выборе приборов-пробоотборников, планировании и осуществлении контроля следует учитывать, что полученные результаты зависят от ряда факторов. В первую очередь, на результат влияет тип выбранного пробоотборника. Экспериментальные исследования показали, что количественные результаты, полученные при одновременном отборе проб воздуха различными пробоотборниками, отличаются в несколько раз [38]. Кроме того, получаемые результаты зависят от условий окружающей среды, а также от самой процедуры пробоотбора. Так, например, пониженная влажность воздуха может приводить к высушиванию поверхности агара и, следовательно, гибели микроорганизмов, а при повышенной влажности воздуха конденсация влаги на поверхности агара может привести к тому, что вместо отдельных колоний на поверхности питательной среды будет наблюдаться сплошной рост микроорганизмов, что сделает практически невозможным правильный учет результатов. Несоблюдение иэокинетичности пробоотбора (равенства скоростей воздуха в пробоотборнике и в исследуемом потоке) также может привести к занижению или завышению результатов [8]. Важную роль играет также объем пробы, который, с одной стороны, должен быть достаточно большим, чтобы обеспечить ее репрезентативность, но, с другой стороны, не должен быть излишним, так как большой объем пробы приводит к высыханию питательной среды и гибели микроорганизмов, или к появлению на поверхности питательной среды слишком большого количества колоний, которое невозможно сосчитать. [c.772]

Засеянные чашки инкубируют во влажной атмосфере 2—14 сут при 35 °С. Наличие 2 —5 % СО2 в атмосфере стимулирует рост легионелл. Обычно на 2 —3-и сут на плотных средах вырастают колонии легионелл. На неселективных средах они значительно мельче, чем на селективных, так как их рост могут подавлять сопутствующие микроорганизмы, особенно дрожжевые грибы. Колонии округлые ровные, под микроскопом имеют пятнистую поверхность, в косопроходящем свете дают красно-сине-зеленое свечение для них характерна липкая консистенция ( тянутся за петлей). [c.137]

Для биостойких материалов, не обладающих биоцидными свойствами, причиной их обрастания и повреждения грибами являются загрязнения. Споры фибов, попадая на материал, не содержащий никаких источников питания для микроорганизма (стекло, металл), способны прорасти и образовать микроколонии только за счет питательных веществ, содержащихся в самих спорах. Дальнейшему росту мицелия способствуют вещества, загрязняющие материал, - остатки растений, насекомых, небиостойкие смазочные материалы, частицы почвы. Продукты метаболизма фибов изменяют структуру материала, делая его доступным для микроорганизмов. На отмирающих колониях могут поселиться другие виды фибов и бактерий. [c.83]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология