Вирусы реакция гемадсорбции

Реакция гемадсорбции была разработана Фогелем и Щелоко-вым в 1957 г. (Vogel, Shelokov, 1957). Они показали, что эритроциты кур и морских свинок адсорбируются на клетках почек обезьян, зараженных вирусом гриппа. При этом дегенеративные [c.162]

А. К- Алексеева (1959) сравнивала выявление вирусов гриппа в разных культурах ткани (преимущественно эмбриональных) с помощью реакции гемадсорбции или гемагглютинации, а также по развитию цитопатогенного эффекта. Во всех исследованных культурах отмечалось поражение клеток, интенсивность дегенерации была недостаточной, чтобы ее можно было использовать в качестве надежного критерия размножения вируса. Так, вирус гриппа А в культурах эпителия почки эмбриона свиньи вызывал дегенерацию 44% клеток, а в культурах СОЦ — 6Wo. При зара-жении вирусом гриппа А2 клеток почки эмбриона) мыши, белой крысы, морской свинки или кролика число пораженных клеток колебалось от 39 до 57%. Образование гемагглютининов в культуральной жидкости отмечали лишь в клетках СОЦ при экспериментах с вирусом гриппа А2 и в 3 культурах из 6, зараженных вирусом гриппа А. Наиболее надежным для выявления вируса оказался метод гемадсорбции (табл. 22). [c.164]

Бакли (1959) сообщила об успешном применении реакции гемадсорбции для выявления в культуре ткани вирусов восточного лошадиного энцефаломиелита, Sindbis, киасанурской лесной лихорадки и энцефалита Западного Нила. Методика постановки [c.165]

Бакли разработала метод титрования антител к ряду трансмиссивных вирусов с помощью реакции задержки гемадсорбции. Первым очень важным моментом является удаление неспецифических ингибиторов гемагглютинации с помощью каолина. Затем сыворотку разводят 1 10 в боратном буфере (pH 9,0). Из данного разведения приготавливают последующие. Равный объем соответствующего разведения сыворотки смешивают с 100 тканевыми гемадсорбирующими дозами. Смесь после инкубации вносят в пробирки с культурой ткани. На 5-й день все культуры исследуют с помощью реакции гемадсорбции. При нейтрализации вируса исследуемой сывороткой гемагглютинины не образовывались и реакция гемадсорбции была отрицательной. [c.166]

Бакли указывает, что при определении антител в сыворотках к вирусу киасанурской лесной лихорадки в опытах на мышах и с помощью реакции гемадсорбции получены одинаковые результаты. Интересно отметить, что при обследовании сывороток людей, вакцинированных против весенне-летнего клещевого эниефа-лита, в реакции задержки гемагглютинации она получила отрицательные результаты. Однако в этих же сыворотках с помощью предложенного Бакли метода удалось обнаружить антитела к вирусу весенне-летнего клещевого энцефалита. [c.167]

Реакция торможения гемадсорбции РТГадс). Данная реакция основана на нейтрализации эффекта адсорбции эритроцитов на поверхности клеток, инфицированных вирусами. РТГадс используется для идентификации гемадсорбиррующих вирусов. По 0,2 мл специфической сыворотки, разведенной 1 5, вносят в пробирки и после инкубации в течение 30 — 60 мин добавляют по 0,2 мл 0,5%-й взвеси эритроцитов. В контрольные пробирки закапывают нормальную сыворотку (неиммунную сыворотку того же вида животного) и эритроциты. Пробирки инкубируют 20 — 30 мин при температуре, оптимальной для гемадсорбции выделяемого вируса. [c.272]

Метод флюоресцирующих антител дает возможность выявить респираторные вирусы в зараженных клеточных культурах в более ннш сроки, чем их индикация по ЦПД или по гемадсорбции, и при весьма малой инфицирующей дозе. С помощью иммунофлюоресцентного метода проводится не только индикация, но и идентификация вирусов парагриппа, РСВ, аденовирусов и микоплазм в зараженных клеточных культурах. Кроме того, после накопления в клеточных культурах можно идентифицировать аденовирусы—в РСК, вирусы парагриппа—в РТГА, РСК и в реакции нейтрализации со специфическими антисыворотками. [c.234]

Присутствие вируса может быть обнаружено методами стандартной нейтрализации (подавление гемадсорбции, бляшкооб-разования, гемагглютинации) 1и Зо с помощью реакции связывания комплемента. [c.137]

Некоторые вирусы, например миксо- и парамиксовирусы, обычно не вызывают заметного ЦПД, однако изменяют поверхность культивируемых клеток таким образом, что последние начинают связывать эритроциты. Клинический материал инкубируют с клетками монослойной культуры, на которую затем наносят суспензию эритроцитов (морской свинки или человека с нулевой группой крови). После инкубации с эритроцитами культуры тщательно промывают и учитывают результаты. Дальнейшую идентификацию проводят с помощью реакции торможения гемадсорбции специфическими антисыворотками. Некоторые из указанных выше вирусов продуцируют растворимый гемагглютинин, поэтому их идентифицируют методом торможения гемагглютинации. [c.311]

Возможность выявления антител к вирусам гриппа с помощью реакции задержки гемадсорбции показана в работе В. Д. Соловьева и А. К. Алексеевой (1959). [c.164]

В табл. 23 приводится протокол опыта В. Д. Соловьева и А. К- Алексеевой (1959), который показывает, что реакция задержки гемадсорбции вполне специфична и позволяет выявлять антитела к вирусу гриппа в достаточно высоком титре. [c.165]

Лабораторная диагностика. Работа с вирусом натуральной оспы проводится в строго режимных условиях по правилам, предусмотренным для особо опасных инфекций. Материалом для исследования служит содержимое элементов сыпи на коже и слизистых оболочках, отделяемое носоглотки, кровь, в летальных случаях — кусочки пораженной кожи, легкого, селезенки, кровь. Экспресс-диагностика натуральной оспы заключается в обнаружении а) вирусных частиц под электронным микроскопом б) телец Гварниери в пораженных клетках в) вирусного антигена с помощью РИФ, РСК, РПГА, ИФА и других специфических реакций. Выделение вируса осуществляют в куриных эмбрионах или клеточных культурах. Идентификацию вируса, выделенного из куриного эмбриона, проводят с помощью PH (на куриных эмбрионах), РСК или РТГА. Вирус, выделенный на культуре клеток, обладает гемадсорбирующей активностью по отношению к эритроцитам кур, поэтому для его идентификации используют реакцию торможения гемадсорбции и РИФ. Серологическую диагностику осуществляют с помощью РТГА, РСК, PH в куриных эмбрионах и на культурах клеток. [c.257]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология