Ингибиторы фотосинтеза

В. Исследования фитопланктона (динамика видового состава, биомассы, продукции) представляют интерес главным образом при изучении токсикантов, действующих на растительные орга- низмы (ингибиторы фотосинтеза, инактиваторы хлорофилла, вещества, нарушающие синтез углеводов и белков, и т. д.). Однако, как правило, фитопланктон так или иначе реактивен по отношению к токсическим загрязнителям, используя некоторые из них как органическую пищу. При этом обычно существенно нарушаются сукцессии видов, входящих в состав планктона. [c.247]

По механизму действия гербициды можно разделить на препараты регуляторного типа, аналогичные фитогормонам, и токсиканты — ингибиторы фотосинтеза. [c.783]

На фиг. 239 (справа) рассмотрено влияние ингибиторов фотосинтеза кривая 1 описывает зависимость скорости от интенсивности для оптимального материала. Следовало бы ожидать, что после обработки ядом, который специфически ингибирует лимитирующую ферментативную стадию к), остается только световая стадия, в результате чего получится кривая [c.584]

Ды общего действия на незасеянных землях, особенно в борьбе с многолетними злаками. Бромацил применяют селективно в цитрусовых насаждениях и на плантациях сизаля, а тербацил — на плантациях сахарного тростника, в яблоневых и персиковых садах. Эти соединения являются общими ингибиторами фотосинтеза, и их селективность повыщается под действием физических и физиологических факторов, которые предотвращают транспорт соединения к зоне действия. [c.224]

Более вескими доказательствами существования двух фотосистем являются опыты по разделению систем с помощью ингибиторов фотосинтеза (химическое разделение) и дифференциального центрифугирования раздробленных хлоропластов (механическое разделение). [c.75]

По механизму действия различают след, группы Г. <синт. ауксины (феноксикислоты, арилкарбоновые к-ты, пиклорам и др.), действующие подобно прир. регуляторам роста растений ингибиторы фотосинтеза (соли днпиридилия, мочевины, триазины, урацилы, оксибензонитрилы) в-ва, влияющие на кислородный обмен растений (дипитрофено-лы, галогенфенолы и др.) ингибиторы митоза (карбаматы, динитроанилины). Механизм действия многих Г. не выяснен. [c.128]

ЛЕНАЦИЛ (3-циклогексил-5,6-триметиленурацил), t 110—317 °С растворяется в пиридине, плохо—в воде (6 мг/л). Получение циклизация диалкиладипината н эфир циклопентанон 2-карбоновой к-ты и последующая конденсация с цикло-гексилмочевиной. Гербицид (ингибитор фотосинтеза) для свеклы (0,4— [c.299]

Ингибиторы фотосинтеза. Эти Г. проникают в хлоро-пласты растений нек-рые из них (напр., соли дипиридилия) препятствуют захвату электронов ферредоксином и нарушают процесс восстановления кофермента никотинамид-адениндинуклеотидфосфата (НАДФ) в т. наз. фотосистеме [c.525]

В течение длительного времени (более 25 лет) основными гербицидами, применявшимися в сельском хозяйстве, были ингибиторы фотосинтеза. К ним относятся в первую очер>едь производные триазина и замешенные мочевины. Среди первых наибольшее значение имеет препарат атразин, а из многочисленных производных фенилзамещенных мочевины широкое применение находят диурон, флуометурои, линурон н препарат 5-3552. [c.788]

ФЕНУРОН (К-фенил-М, N -диметил мочевина ) СбНзЫНСОК(СНз)2, <Ш1 134 °С раств. в сп., воде (3,85 г/л). Получ. взаимод. фенилизоцианата с диметиламином. Гербицид (ингибитор фотосинтеза) для уничтожения кустарников й древесной поросли (2—60 кг/га) формы примен.— смачивающийся порошок, смеси с др. гербицидами. Малотоксичен ЛДзо 6,4 г/кг (крысы). [c.616]

Одно наблюдение, однако, должно быть отмечено. Было обнаружено [84, 85, 94, 97, 103, 104], что растущие культуры СЫогеИа производят вещество, действующее как ингибитор дальнейшего их роста, а иногда как ингибитор фотосинтеза (см. гл. XXVI, стр. 294). [c.242]

Гербициды с Ьо при концентрации менее 1—2 мМ/л — это типичные ингибиторы фотосинтеза. К гербицидам, обеспечивающим 507о-ное ингибирование фотосинтеза в концентрации 20—50 мМ/л, принадлежат разобщители дыхания и фосфорилирования, а такие вещества, как профам и хларпрофам с Ьо при высоких концентрациях, улсе не могут быть отнесены к ингибиторам фотосинтеза. [c.59]

Фитотоксйческое действие гербицидов основано на различных, в основном неизученных, биохимических и физиологических процессах. Ван дер Цвееп и ван Ооршот [1469] классифицировали по характеру действия 134 гербицида, применяемых на практике или находящихся на стадии исследований, на ингибиторы фотосинтеза (40 препаратов), ингибиторы процессов прорастания семян (32 препарата), вещества, нарушающие рост растений (20 препаратов), и вещества, нарушающие процессы дыхания (13 препаратов). Механизмы действия остальных 29 гербицидов классифицировать труднее (табл. 10). Фитотоксическое [c.35]

В качестве последнего большого класса гербицидов следует назвать снж-триазины. Наряду с хлорфевокси-алкановыми кислотами сиж-триазины имеют большое хозяйственное значение и служат модельными веществами для биологических и биохимических механизмов действия. Сил4-триазины всегда являются ингибиторами фотосинтеза. Степень их токсичности для растений можно устанавливать с помощью реакции Хилла. [c.241]

Опытами Л. Н. М. Дюйзенса (1961) на водорослях методами абсорбционной дифференциальной спектрометрии показано, что длинноволновый свет (X > 680 нм) вызывает окисление цитохрома / (регистрировалось по уменьшению поглощения при 420 нм). Использование коротковолнового освещения (X 562 нм) приводило к частичному восстановлению цитохрома / (рис. XXVII.3). Ингибитор фотосинтеза ДХММ (3-(3,4-дихлорфенил)-1,1-диметилмочевина), или диурон, снимал восстанавливающее действие коротковолнового света. Согласно Z-схеме (см. рис. XXVII.2), дальний красный свет окисляет цитохром, отбирая от него электроны для восстановления первичного окислителя, образуемого ФС I. Коротковолновый свет восполняет убыль электронов на цитохроме за счет восстановления его ФС II. Диурон блокирует этот процесс, что приводит к ингибированию выделения О2. Объект можно освещать двумя последовательными вспышками света вначале красного (X < 680 нм), затем дальнего красного света (X > 680 нм). Тогда электроны, освобожденные в ФС II в ответ на первую вспышку, достигнут через определенное время цитохрома /, который затем окислится фотосистемой ФС I под действием второй вспышки. Варьирование интервала времени между вспышками позволяет определить время, необходимое для переноса электрона на цитохром от ФС II оно составляет 5 10 с. [c.282]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология