Ремазоловый ярко-синий

Рис. 111.25. Зависимость выхода фиксации Р от pH. Крашение Ремазоловым ярко-синим К 10%-ная выкраска необработанной шерсти 50 °С

Проведенные Цоллингером [512, 513] эксперименты по изучению гидролиза показали, что кинетика его не всегда подчиняется простой закономерности и может меняться по мере прохождения процесса в зависимости от типа связи между красителем и волокном (рис. III. 37). Это помешало определить константы гидролиза при температуре кипения [512, 513]. Изучение кривых гидролиза, проведенное различными авторами, показало, что, как правило, окраски целлюлозы активными красителями наиболее устойчивы при pH между 6 и 7, а при повышении или понижении его количество гидролизованного красителя растет [339]. В сильнокислой среде, кроме разрушения связи красителя с волокном, происходит и гидролиз глюкозидных связей целлюлозы, а в щелочной среде характерное снижение скорости гидролиза может объясняться процессами диссоциации в хромофорной системе красителя, которые также зависят от pH [70]. С учетом всего этого можно создать условия, при которых и кислотный и щелочной гидролиз зависят только от концентрации ионов Н+ или ОН . В этих условиях при изменении pH на одну единицу в слабокислой (pH 3—5) или щелочной (pH 11—12) среде, скорость гидролиза меняется в 10 раз. Зависимость гидролиза от температуры при постоянном pH [506] дала возможность вычислить энергию активации Цибакронового синего 3G на волокне купрама, оказавшуюся равной 92,1 кДж/моль и Ремазолового ярко-синего R на вискозном шелке, равную 117,2 кДж/моль (рис. 35 и 36),. [c.309]

Штамм и его сотрудники [48Ь, 50] доказали химическую связь красителя с волокном, окрасив порошок частично гидролизованной целлюлозы Ремазоловым ярко-синим К и подвергнув его микробиологическому распаду под действием Се11и1отопаз ис1а. Им удалось выделить окрашенный растворимый продукт деструкции целлюлозы и доказать методом хроматографического анализа, что он является однородным веществом и что после полного гидролиза серной кислотой из него получается глюкоза. Впоследствии из гидролизата окрашенной целлюлозы были выделены гомогенные соединения, содержащие по 1 моль красителя и глюкозы. Эти соединения были подвергнуты исчерпывающему метилированию иодистым метилом и окисью серебра в диметилформамиде и затем связь с красителем гидролизовали щелочью, а метилглюкозид — кислотой. При сравнении с синтетическими метилглюкозами выяснилось, что глюкоза была замещена в положении 2 и 4. Полный количественный анализ показал, что замещение гидроксила у атома составляет 60%, а на обоих концах цепи—по 20% [534]. [c.317]

Чекалин [533] провел осторожный гидролиз вискозы, окрашенной Ремазоловым ярко-синим К. Окрашенная глюкоза была отделена хроматографически и затем с помощью химических реакций (окислением перйодатом, образованием озазонов и тритилирова-нием) было доказано, что около 70% красителя связывалось с гидроксилом в положении 6, а 30%—с гидроксилом в положении 2 каждой глюкозной единицы целлюлозной цепи. [c.317]

Цан и Руетт [124] выделили из шерсти, окрашенной Ремазоловым ярко-синим, соединение красителя с лизином, а из восстановленной шерсти — с цистеином. Из шерсти, окрашенной акриламидным красителем, получили, соответственно, S-карбоксиэтнлцисте-ин (IX) и Л -карбоксиэтиллизин (X) [c.319]

Ремазоловый яркий синий образует с белками ковалентную связь, благодаря чему белки становятся видимыми и за ними можно наблюдать в процессе электрофореза [480, 1243]. Существуют также реагенты, которые почти не влияют на молекулярную массу или заряд полипептидов и практически не изменяют подвижности белков в присутствии ДСН. Их можно использовать для очень чувствительного метода детектирования белковых зон. Так, например, в белки вводят флуоресцентную метку, применяя для этой цели дансилхлорид [1175, 1272] или о-фта-левый альдегид [1388]. [c.224]

Другой реакционноспособный краситель —ремазоловый яркий синий R (реактивный синий 19, .I. 44035) был применен> для окрашивания белков перед электрофорезом [480]. Так как-обработка белков этим красителем приводит к снижению их растворимости в отсутствие ДСН, данную методику предварительного окрашивания следует использовать лишь при электрофоретическом разделении белков в присутствии детергента [1247]. Предварительное окрашивание белков сыворотки крови этим> красителем в условиях, в которых не происходило осаждения белков, вызывало изменение их поведения при электрофорезе [277]. [c.275]

Описан чувствительный метод окрашивания белков с помощью одного из производных ремазолового яркого синего R, [276,. 277], позволяющий проводить полуколичественный анализ результатов после электрофореза в полиакриламидном геле. [c.275]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология