Кролик ответ на введение ПАФ

После введения отмечают температуру животного в течение 3 ч, проводя измерения непрерывно или через каждые 30 мин. Максимальная температура, отмеченная для каждого кролика, рассматривается как ответ животного на введение препарата если все температурные показания после введения ниже контрольной температуры, ответ считается нулевым повышением температуры. [c.178]

Ангиотензин. В конце XIX в. было установлено, что почки участвуют в регуляции артериального кровяного давления, и вскоре из коры почек было выделено вещество, названное ренином, которое прн внутривенном введении кроликам вызывало повышение давле< ния крови. Характерно, что клетки почек выделяют в кровь ренин в ответ на понижение кровяного давления, уменьшение эффективного объема крови, снижение концентрации Кв в крови и т. п., определение содержания ренина в крови используется в диагностике инфаркта миокарда и других заболеваний. [c.272]

Сыворотку животного, содержащую специфические к данному антигену антитела, называют антисывороткой. При этом обычно указывают, против какого антигена она выработана. Например, когда говорят об антисыворотке кролика против эритроцитов человека, подразумевают, что в ответ на введение в кровь кролика эритроцитов человека образуются специфические к ним антитела. [c.11]

Степень иммунного ответа также зависит от количества введенного антигена. При определенных концентрациях антигена, как высоких, так и низких, наступает торможение гуморального иммунного ответа, называемое толерантностью. Это обусловливает необходимость выбора оптимальной дозы в каждом конкретном случае, с учетом чистоты препарата и его иммуногенности. Доза иммуногена для одной инъекции кролику или морской свинке составляет в среднем 100—300 мкг на 2 кг массы. Доза, необходимая для крупных животных, не увеличивается пропорционально [c.149]

При внутривенном введении кролику 0,5 мг РаЬ-фраг-ментов аутологичного IgG у него в течение последующих 2—6 ч регистрируются следующие реакции кратковременная лейкопения, сменяющаяся лейкоцитозом, совпадающее с периодом лейкопении повышение температуры тела, снижение уровня комплемента и повышение фибринолитической активности крови (Н. Шмелева и др., 1971). Эти явления вызывают именно Fab - и Р(аЬ )2-фрагмен-ты, в то время как нерасщепленный IgG и полученный с помощью папаина РаЬ-фрагмент такими свойствами не обладают. Характер патофизиологических реакций в ответ на введение аутологичного РаЬ -фрагмента иллюстрирует рис. 36. [c.165]

В некоторых случаях, например при хронической внутривенной иммунизации суспензией убитых пневмококков, у кроликов может вырабатываться специфический IgG к полисахариду в количестве более 50 мг/мл. Обычно же высоким тиТ ром считается 1—2 мг/мл антител, образующихся в ответ на введение белкового антигена. Это гораздо больше, чем у мы-. щей, к тому же период полужизни IgG мыши составляет лишь 1—2 дня, он гораздо менее стабилен, особенно в очищенной форме, и слабо преципитирует антигены. Кроме того, от мыши можно получить лишь несколько миллилитров крови, и взятие такого количества сопровождается гибелью животного. [c.41]

II. Пневмокок,ки типа III, антитела к углеводному компоненту S3. Очищенный компонент пневмококка S3 обладает чрезвычайно низкой иммуногенностью (или не обладает совсем) для кролика. Однако введенный в/в вместе с мембранными белками убитых нагреванием микроорганизмов, он вызывает эффективное образование IgG, отличающихся высокой типовой и антигенной специфичностью. С помощью повторных курсов получают не менее 5 мг/мл специфических антител, и у многих животных можно повысить концентрацию IgG в сыворотке до 20 мг/мл и более. Данный ответ не зависит от влияния белковых иммуногенов на синтез антител. В одном из наших экспериментов [38] кролики получали не менее двух курсов по девять в/в инъекций в течение 19 дней начальная доза составляла 10 микроорганизмов, с шестой инъекции — 4- 10 , а в конце дозу доводили до 10 ° микроорганизмов. Кровь забирали через 3—4 дня после последней инъекции. [c.84]

В процессе иммунизации у животных отбирают небольшие пробы крови для оценки количества антител. Максимальный уровень иммунного ответа на введение большинства растворимых антигенов (белков, полисахаридов и т. д.) достигается через 40—60 дней после первой инъекции. В том случае, когда иммуногеном являются клетки микроорганизмов, максимально высокий уровень антител наблюдается гораздо раньше (через 12—20 дней). После окончания первого цикла иммунизации животному в течение 30 дней дают восстановить здоровье и проводят реиммунизацию (2-й цикл иммунизации), включающую 1—3 внутривенные инъекции. Ниже приводятся схемы иммунизации морских свинок и кроликов инсулином и конъюгатом тироксин — бычий сывороточный альбумин (ВСА). [c.152]

При гуморальном ответе животного на эритроциты другого вида образуются IgM и IgG. Затем антиэритроцитарные антитела нагружают на эритроциты-мишени, которые при введении донору эритроцитов, вызывают образование антиглобулинов. Этот простой подход позволяет избежать очистки иммуноглобулинов и дает хорошие результаты. Например, введя кролику внутривенно 1 мл отмытых в физиологическом растворе эритроцитов барана (10%-ная суспензия, объем на объем), можно легко получить соответствующие антиэритроцитарные антитела. При взятии крови через 10 дней после первой инъекции главным образом получают IgM. Повторное введение антигена через 1 нед и 2 раза в неделю в течение последующих несколькнх недель с забором крови через 2—5 дней после последней инъекции преимущественно обеспечивает получение IgG. Сыворотки затем могут быть смешаны. [c.53]

Через 6 месяцев после первого курса иммунизации можно провести второй (Braun et al., 1969). В этом случае кроликов иммунизируют только в течение 2 недель и начинают кровопускания через 5 дней после последнего введения антигена (на третьей неделе). Многие кролики дают ответ только после вто- [c.359]

Формально роль белка в индукции антител была показана в работе Френкель-Конрата и Зингер [537]. Они провели опыты по смешанной реконструкции серологически различающихся штаммов ВТМ. Искусственно созданные вирусные гибриды относились к серологическому типу того штамма, который был донором структурного белка, структуриый же белок вирусных частиц потомства, образующегося при зара кении, относился к серологическому типу штамма — донора РНК. Тем не меиее вирусная РНК может играть некую вторичную роль в индукции антител к белковой оболочке вируса. Есть основания полагать, что при введении кроликам и мышам интакт-иый ВЛШТ более иммуногенен, чем серологически идентичные ему пустые -белковые оболочки, не содержащие РНК (гл. VHI) [1145]. Это различие обнарунотвается у кроликов и мышей как при первичном, так и при вторичном иммунном ответе. [c.370]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология