Морская свинка иммунизация

Подобные эксперименты поставил Эйзен. В качестве антигена при иммунизации морских свинок применялся белок (бычий 33 с. Е. Бреслер [c.505]

Если иммунизировать животное чужеродными эритроцитами, то образуются антитела, обладающие способностью агглютинировать эритроциты, подобные тем, которыми производилась иммунизация. Антигенами, вызывающими образование этих агглютининов, служат так называемые группоспецифические вещества крови, которые мы уже упоминали в гл. XI. Агглютинины и другие антитела не разрушаются нагреванием до 56°, поэтому агглютинация не нарушается при прогревании иммунной сыворотки в течение 30 мин. при 56°. Между прогретой и непрогретой иммунной сывороткой имеется существенное различие при применении непрогретой сыворотки помимо агглютинации эритроцитов наблюдается также и гемолиз, прогретая же сыворотка ие обладает гемолитическим действием. Гемолиз вызывается находящимся в сыворотке термолабильным комплексом, получившим название комплемент. Обычным источником комплемента служит сыворотка морской свинки, которая содержит значительное количество этого комплекса. [c.347]

Для целей анализа подбирают такие условия иммунизации животных, при которых образовывались бы антитела с максимальной специфичностью и прочностью связи с антигеном. В зависимости от структуры антигена и поставленной задачи для получения антител используют различные виды животных от мелких лабораторных (мыши, морские свинки, кролики, куры) до крупных (овцы, козы, лошади). После нескольких инъекций антигена в присутствии стимуляторов иммунного ответа в сыворотке крови накапливаются специфические антитела. При иммунизации крупных животных можно получать большие количества антител для практических целей. В последнее время для иммунизации стали использовать кур, у которых антитела накапливаются в желтке яиц, что упрощает их получение и выделение. [c.103]

Результаты в этом случае обычно оценивают с помощью понятия 50%-ный титр . На рис. 18 приведены кривые титрования антисывороток к инсулину, полученных иммунизацией морских свинок. Максимальный сигнал, регистрируемый по оптической плотности А продукта реакции окисления перекисью водорода 5-аминосалициловой кислоты, составляет 1,4 оптических единиц. За титр сыворотки принимается такое разведение, при котором оптическая плотность, регистрируемая в ИФА, имеет значение, близкое к 0,7. [c.159]

Получение антител, специфичных к определенному белку, производится повторным инъецированием очищенного белка в организм животного кролика, морской свинки, овцы, козы, курицы, лошади, мыши. Процедура иммунизации остается пока еще эмпирической и зависит от иммуногенности конкретного белка. Так, для некоторых растительных белков достаточно для всякой процедуры иммунизации доли миллиграмма (некоторые ферменты типа а-амилаз, рибулозобисфосфаткарбоксилаза, ФЕП-карбокси-лаза), тогда как других белков (некоторые фракции проламинов семян) требуется несколько десятков миллиграммов (в очищенном виде), чтобы путем нескольких инъекций вызвать образование антител. [c.95]

Сходные эксперименты с различными инбредными линиями мышей (т.е. линиями, в которых все мыши генетически однотипны) дали результаты, близкие к полученным ранее на морских свинках при иммунизации простым синтетическим полимером некоторые жнии давали сильный иммунный ответ Т-клеточного типа, тогда как другие линии совсем не реагировали. На специально выведенных линиях мышей, различавшихся только ограниченным участками генома (так называемых конгенных линиях), были проведены исследования по картированию геиов 1г, и оказалось, что эти гены расположены в пределах генного комплекса Н-2 в области между Н-2К и Н-20, впоследствии названной 1-областью. Сейчас у мышей описан уже ряд различных генов 1г, контролирующих зависимые от Т-клеток ответы на разные антигенные детерминанты, и определена их локализация в нескольких субобластях 1-области (рис. 17-64). В большинстве таких локусов способность отвечать на антигенную детерминанту определяется доминантным аллелем, однако в отдельных случаях доминирует неспособность к ответу. В этих случаях можно показать, что наследственная неспособность к иммунному ответу обусловлена активностью Т-клеток-супрессоров, и гены, контролирующие ответ этих клеток на специфическую детерминанту, называют ие /г-генами, а генами иммунной супрессии (1з). [c.60]

В системе А, В, О антитела возникают спонтанно, т. е. они возникают у человека естественным путем. Но в отношении групп крови Rh антитела возникают лишь в результате реакции иммунизации. Антигены Rh были впервые обнаружены при введении крови обезьяны макака-резус (Rhesus, откуда и символ Rh) кроликам и морским свинкам, у которых при этом возникали антитела против антигенов, содержавшихся в клетках крови резуса. При изучении реакции активированной таким путем сыворотки крови с кровью различных людей было обнаружено, что характер этой реакции различен. Прежде всего было установлено, что около 85% европейцев являются Rh-положительными носителями одного или большего числа резус-факторов, а у 15% подобные антигены отсутствуют, т. е. эти люди являются Rh-отрицательными. Затем при более детальном анализе удалось выявить частоту всех различных аллелей Rh. [c.440]

Для развития гуморального иммунитета В-лимфоциты должны получить не менее двух стимулов (сигналов). Первый — это непосредственный контакт с антигеном, заканчивающийся захватом его рецепторами поверхности В-клетки, распознающими специфичную гап-тенную детерминанту. Предполагается, что антиген прикрепляется к поверхности В-клетки после соединения в макрофаге нескольких комплексов антигена с IgT в одну обойму . Второй сигнал, судя по результатам многочисленных опытов, неспецифичен и связан с действием Т-лимфоцитов-хелперов, вернее с экскретируемым ими фактором. Он активирует (примирует) В-клетки не только к индуцирующему его антигену, но и к любому другому. Так, если в культуру В-клеток, активированных конъюгатом на гетерологическом носителе, первоначально ввести какой-либо белок (носитель), а затем надоса-дочную жидкость активированных им хелперов, то иммунный ответ к гаптену будет усилен [107]. Аналогичное заключение позволяют сделать и результаты опытов по последовательной иммунизации морских свинок динитро-фенильными (ДНФ) конъюгатами с различными белками-носителями [125]. Кроме того, было установлено, что такую же неспецифическую стимуляцию оказывает анти- [c.13]

В течение хронического опыта велось наблюдение за общим состоянием и весом всех животных. У кроликов следили еще за скоростью свертывания крови, длительностью гипноза и продукцией специфических антител после иммунизации, у морских свинок — за работоспособностью. У белых мышей изучали потребление кислорода, морфологический состав периферической крови, способность к суммации подпороговых кожноэлектрических импульсов и условнорефлекторную деятельность. В конце эксперимента у мышей исследовали работоспособность методом плавания. [c.146]

Первые опыты в этом направлении были проведены с ин-бредными морскими свинками линий 2 и 13, которые отличаются друг от друга только по генам, контролирующим антигены II класса МНС (рис. 7.4). Т-клетки морских свинок, предварительно сенсибилизированных одним из антигенов (овальбумином, туберкулином и др.), вносили в культуру макрофагов, которые презентиру-ют антиген, использованный для иммунизации. Во всех случаях, когда макрофаги и Т-клетки были генетически идентичными (снн-генными), регистрировался сильный пролиферативный ответ Т-клеток, распознавших антиген на поверхности сингенных макрофагов. В то же время Т-клетки, отличающиеся от макрофагов по антигенам II класса, не в состоянии развить пролиферативный ответ в несингенной системе клеточного взаимодействия. Эти первые опыты позволили предположить, что примированные Т-клетки распознают не только антиген, использованный для иммунизи-ции, но и собственные антигены гистосовместимости. Однако уз- [c.164]

Из лабораторных животных чаще всего берут для иммунизации кроликов, морских свинок или мышей в зависимости от количества имеющегося антигена, доступности животного и т. д. Возможность использования группы лабораторных животных позволяет решить проблему отбора из них наиболее иммунореактив-ных. Иммунизировать удобнее самцов, так как у них иммуноген-ный ответ менее подвержен влиянию гормональных циклов. Для получения антител против вирусов эффективными оказались куры, у которых антитела накапливаются в яйцах. Большие количества антисывороток получают иммунизацией крупных. животных козлов, баранов, ослов, лошадей. [c.149]

Внутриррюшинное введение. Этот способ используют для иммунизации мелких лабораторных животных, таких, как мыши или морские свинки. [c.151]

В процессе иммунизации у животных отбирают небольшие пробы крови для оценки количества антител. Максимальный уровень иммунного ответа на введение большинства растворимых антигенов (белков, полисахаридов и т. д.) достигается через 40—60 дней после первой инъекции. В том случае, когда иммуногеном являются клетки микроорганизмов, максимально высокий уровень антител наблюдается гораздо раньше (через 12—20 дней). После окончания первого цикла иммунизации животному в течение 30 дней дают восстановить здоровье и проводят реиммунизацию (2-й цикл иммунизации), включающую 1—3 внутривенные инъекции. Ниже приводятся схемы иммунизации морских свинок и кроликов инсулином и конъюгатом тироксин — бычий сывороточный альбумин (ВСА). [c.152]

Отбор крови и получение антисыворотки. Иммунизированное животное используется в качестве донора иммунной сыворотки в течение 5—7 мес, за это время удается провести 5—6 циклов иммунизации. Животных, прошедших несколько циклов иммунизации, называют гипериммуиными. Кровь у животных отбирают из вены уха (кролик) или непосредственно из сердца путем кардиальной пункции (кролик, морская свинка) в объеме 50—70 мл у кролика и 5—10 мл у морской свинки в стерильные пробирки, промытые стерильным буферным раствором. [c.153]

При иммунизации морских свинок линий 2 и 13 инсулином было устаиоЕлено, что ж1гвотные линии 2 образуют антитела против антигенных детерминант N-концевых половин его полипептидных цепей, а линии 13 — против С-концевых. [c.52]

ТОГО, ЧТО при этом не проиеходит активное образование грануломы в области депо. Кроме того, у морских свинок изменяется пзотип антител — например, в ответ на введение растворимых белков совместно с НАФ вырабатывается IgG,. Более слабые патологические эффекты позволяют использовать НАФ подкожно для бустерной иммунизации. [c.39]

В/к инъекции редко используют для инициации иммунного ответа, но к ним часто прибегают для бустерной иммунизации антигенами, растворенными в физиологическом растворе, особенно при работе с кроликами и морскими свинками. Реакция Артюса (которая часто развивается при подобных инъекциях) приводит к медленному высвобождению иммунных комплексов, формирующихся in situ, в регионарные лимфатические узлы. [c.69]

Изотип хотя у кроликов и овец при иммунизации с применением ПАФ образуются антитела определенного изотипа (I G )> У других видов животных (крыс, мышей, морских свинок) ответ также может быть рестриктирован по подклассам IgG. Если антитела выявляются с помощью меченого антиглобулина, то необходимо определить их изотип, чтобы использовать аитиглобулин требуемой специфичности. [c.113]

Козьи мостиковые антиглобулины, используемые в сочетании с кроличьими антителами, специфичными к тяжелым цепям, и кроличьими антителами против щелочной фосфатазы, подвергали очистке только в случае возникновения проблемы так называемого короткого замыкания (см. разд. II.В.1). Мостиковые антитела для использования в сочетании с антиглобулинами морской свинки получали иммунизацией кроликов препаратами IgG морской свинки. [c.212]

Это торможение специфично. Даже если ввести антитела против части детерминант на молекуле (например, против F(ab )2-фрагментов IgG2 морской свинки), то при иммунизации цельными молекулами тормозится синтез антител против этих детерминант. Синтез антител против остальных детерминант на той же молекуле (т. е. против детерминант F -фрагментов в описываемом случае) может быть даже большим, чем в норме (Pin us е. а., 1971), [c.147]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология