Глютаминовая кислота листьев

Количественное определение глютаминовой кислоты проводилось по следующему методу [12]. Хроматограмму протягивали через 1%-иый раствор нингидрина, испаряли ацетон на воздухе (1—2 мин) и для развития окраски пятен выдерживали в течение 25 мин в термостате при 60 . Нингидриковые производные аминокислот элюировали 4 мл 40%-ного метилового спирта i 2 мл 0,5%-ного раствора хлористого кадмия в 40%-ноы метиловом спирте в течение 2 ч. Растворы колориметрировали на колориметре ФЭК-М со светофильтром № 2 (длина волны 530 ммк). В связи с тем, что цветовой выход нингидриновых производных аминокислот подвержен некоторым колебаниям и оптические плотности растворов различаются даже для различных хроматограмм из одной камеры, на каждый лист наносили стандартный раствор аминокислоты в количестве 10—20у. [c.214]

Попытки применить описанный выше метод для идентификации аминокислот мелассы не дали положительных результатов. Последнее объясняется не только сложностью мелассы, но и искажением простой распределительной хроматографии рядом побочных явлений. При хроматографировании водного раствора мелассы (4 1) и (9 1) па проявленных листах обнаружена сплошная полоса неразделившихся аминокислот или одно пятно глютаминовой кислоты и длинный до старта хвост . На стартовой линии остается расплывшееся пятно неизвестного [c.214]

Таким образом, катионы почвенного раствора МН4 , К, Mg" и другие поглощаются в обмен на катионы Н , Са" и т. д., а анионы — в обмен на НСО3 и другие анионы поверхности корней. Как только поглощенные соли войдут в соприкосновение с жизнедеятельной и непрерывно движущейся протоплазмой корневых волосков, они или вступают в непрочные соединения с белками плазмы, или ассимилируются ими и вместе с плазмой передвинутся до конца корневого волоска, откуда передадутся протоплазме, прилегающе к корневому волоску клетки, от этой клетки — следующей и т. д., до тех пор, пока соли или продукты их ассимиляции не попадут в проводящие сосуды древесины, по которым они довольно быстро достигнут ассимилирующих листьев. В листьях окончательно ассимилируются поступающие соли, то есть соединяются с соответствующими продуктами фотосинтеза и дыхания. Таким же путем поступает и передвигается в листья углекислота и ее соли, всегда содержащиеся в почвенном растворе. Следовательно, превращение и частичная ассимиляция минеральных веществ происходит и до поступления их в листья, во всех живых клетках корней и стеблей. Так, большая часть нитратов восстанавливается до аммонийных соединений уже в корневой системе здесь же большая часть восстановленного азота может вступить в состав амидов аминокислот — асиарагпна (моноамид аспарагиновой кислоты) и глютамина (моноамид глютаминовой кислоты) и белков. В живых клетках корней и стеблей могут превращаться и частично ассимилироваться также фосфаты, сульфаты, углекислота и ее соли и другие минеральные вещества. [c.32]

Так, Mulder (49, 50) и другие выращивали люцерну, клевер, цветную капусту, шпинат и томаты на фоне молибдена и без внесения этого элемента. При появлении признаков молибденовой недостаточности в клубеньках бобовых и в листьях овощных растений определяли содержание. различных аминокислот. Было установлено, что без молибдена в клубеньках бобовых резко снижалось содержание а-ала ина, аспарагина и глютаминовой кислоты. У шпината, томате и цветной капусты при выращивании растений на нитратном фоне без молибдена уменьшилось содержание глютаминовой кислоты и глютамина. В работе Мининой (14) отмечается, что под влиянием молибдена в растении накапливаются такие аминокислоты, как глютаминовая кислота, серин, аргинин и амид глютамин. Hewitt (46) наблюдал, что уменьшение содержания молибдена в питательной среде приводит 1К снижению содержания свободных аминокислот у цветной капусты. Значительные изменения в аминокислотном составе растений наблюдали под влиянием молибдена Школьник, Боженко и другие исследователи (28, 29). [c.105]

При химическом проведении возбуждения раздраженными клетками выделяется возбуждающее вещество, которое может перемещаться в растении по проводящей и основной тканям. Оно проходит не только через мертвые участки тканей, но и через заполненную водой стеклянную трубочку, соединяющую отрезанный лист с местом, от которого он был отделен. Если это вещество (предположительно речь идет о содержащей азот аминокислоте) дойдет до клеток сочленения, то есть до ткани, способной осуществлять движение, то последует ответная реакция. Выделенное в почти чистом виде возбуждающее вещество, поднимающееся в срезанных побегах мимозы по их проводящим тканям, оказывает свое действие уже при концентрации 10 г/мл. Раздражающе могут действовать также аминокислоты и другие соединения. Например, как показали исследования Шилдкнехта с сотрудниками (1978), смесь, состоящая из 20% L-глютаминовой кислоты и 80% 6-аланина, проявляет особенно сильное раздражающее действие (табл. 3). При проведении этих опытов двух-, четырехнедельные листья Mimosa pudi a, срезанные лезвием безопасной бритвы ниже первичного листового сочленения (рис. 34, а), помещали в водные растворы аминокислот при этом для проведения опытов наиболее благоприятными оказались температуры от 20 до 30° С. Скорость химического проведения раздражения достигает примерно от 0,15 до 2 см/с. Упомянем и второй способ проведения возбуждения — электрический. При нем потенциал действия распространяется со скоростью от 2 до 5 см/с. Путями его проведения, [c.126]

Окуда и Хори [116] выделяли лигнин спиртовым раствором едкого натра по Филиппсу (см. Брауне, 1952, стр. 108) из рисовой и пшеничной соломы, сосновой хвои, листьев дуба и японского кедра. Лигнины содержали 2,6, 0,69, 0,35, 0,67 и 0,28% азота соответственно. Гидролиз лигнинов 6 н. соляной кислотой в течение 24 ч и хроматография на бумаге гидролизатов показали присутствие аргинина, лизина, гистидина, фенилаланина, серина, треонина, лейцина, валина, глицина, аланина, пролива, глютаминовой и аспарагиновой кислот. Гидролизат лигнина из рисовой соломы содержал также метионин. [c.120]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология