Тест-организмы

Исследования изменения состояния биологических объектов под влиянием воздействий различных процессов переработки углеводородных систем — сравнительно новое направление в системе мониторинга окружающей среды. Биологический мониторинг экологических систем и объектов, получил особое распространение в последние годы. Сущность биомониторинга заключается в оценке наличия или отсутствия биологической активности вещества (тест-реакция) проверяемого объекта по сравнению с действием контрольной среды на специальные тест-организмы. [c.318]

В настоящее время для диагностики токсичности почв при биотестировании используют один или несколько тест-организмов, выбор которых часто случаен и, как правило, определяется тем, с каким объектом работает тот или иной исследователь. Исследова- [c.104]

Можно использовать другие подходящие штаммы тест-организмов. Дополнительная информация об источниках [c.167]

ТАБЛИЦА 4. ТЕСТ-ОРГАНИЗМЫ И УСЛОВИЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ОТДЕЛЬНЫХ АНТИБИОТИКОВ [c.168]

Антибиотик Тест-организм a sg SSx Ж О Л. a ts a и. t la i el ё. Концентрация (масса или ME ь 1 мл) [c.168]

Тест-организм ляющая [c.14]

Тест-организм Минимальная подавляющая кои-центрация, мкг/мл [c.31]

Тест-организм Минимальная подавляющая концентрация, мкг/мл [c.33]

Такие грибы в большинстве случаев идентифицированы, из них составлены наборы штаммов тест-организмов для испытания материалов на биостойкость. Мицелиальные (несовершенные) грибы, выявленные на поверхностях изделий, оборудования и сооружений, согласно новой классификации и терминологии относят к технофилам. [c.122]

Целесообразно в составе тест-организмов иметь грибы всех классов мезофильные, термофильные, тонофильные, психрофильные, так как в различных условиях и для различных материалов действие их неодинаково (избирательно). Для смеси необходимо подбирать взаимно уживающиеся виды со стабилизированной конкурентоспособностью. [c.75]

Сотрудниками Башкирского государственного педагогического университета были проведены исследования по оценке фитотоксичности (токсичности на растительные организмы) вяжущего вещества ВМТ. В качестве тест - организмов использовались низшие (почвенные микроскопические водоросли) и высшие (пшеница Московская-35 ) растения. В результате экспериментов было установлено, что фунты, укрепленные вяжущим веществом ВМТ, обладают определенными фитостатическими свойствами по отношению как к высшим, так и низшим растениям, но фитостатический эффект резко снижается до уровня контроля при нанесении на укрепленные участки слоя фунта толщиной не менее 20 см. Следовательно, участки земель, где вяжущее вещество ВМТ применяется для укрепления фунтов, можно использовать под сельскохозяйственное производство либо в иных целях при условии рекультивации посредством нанесения плодородного слоя фунта толщиной не менее 20 см. [c.101]

После завершения процесса полученные лятна или площади миграции обнаруживают подходящим методом, указанным в частной статье например, может быть определена зона угнетения после соответствующей инкубации, если испытуемое вещество является антибиотиком и соответствующий тест-организм был включен в слой геля, или применен какой-либо химический метод. [c.118]

Используют чашк И Петри или прямоугольные лотки, заполненные на глубину 3—4 мм, если нет других указаний в частной статье, культуральной средой, предварительно засеянной соответствующей культурой чувствительного тест-организма, приготовленного, как описано ниже. Питательный агар может состоять из двух отдельных слоев, из которых только верхний слой может быть засеян. Концентрация тест-организ-ма должна быть подобрана таким образом, чтобы получить четкие зоны угнетения в соответствии с ответами на дозу с различными концентрациями стандарта. Если посев готовят, как описано ниже, засеянная среда обычно содержит 1 мл посевного материала на 100 мл культуральной среды. Если культура состоит из суспензии вегетативных клеток, температура расплавленной для засева агаровой среды не должна превышать 48—50° С. Следует специально отобрать чашки и лотки с плоским дном во время заполнения их устанавливают на ровной горизонтальной поверхности для обеспечения одинаковой толщины слоя среды. При использовании некоторых тест-организмов методику можно усовершенствовать, перед употреблением высушивая засеянные лотки при комнатной температуре в течение 30 мин или помещая их в холодильник при 4°С на несколько часов. [c.166]

Условия проведения количественного определения активности отдельных антибиотиков и подходящие тест-организмы указаны в соответствующих частных статьях. Решающее значение для количественного определения может иметь выбор подходящего штамма тест-организма. Для облегчения справочного поиска примеры подходящих тест-ортанизмов для ряда антибиотиков приведены в табл. 4, в которой использованы следующие обозначения штаммов. [c.167]

Активность. Проводят количественное определение, как описано в разделе Количественное определение микробиологической активности антибиотиков (т. 1, с. 165), используя либо (а) Ba illus subtilis (N T 8236 или АТСС 11774) в качестве тест-организма, культуральную среду Кс1 с окончательной величиной. pH 7,9—8,0, стерильный фосфатный буферный раствор, pH 8,0, ИР1 или ИР2, стрептомицин в соответствующей [c.283]

Количественное определение. Проводят испытание, как описало в разделе Количественное определение микробиологической активности антибиотиков (т. 1, с. 165), используя чашки Петри или прямоугольные лотки, заполненные на глубину 1—2 мм культуральной средой КсЗ с конечным значением pH 6,0—6,2, засеянной Sa haromy es erevlslae (штамм N Y 87 АТСС 9763) в качестве тест-организма с добавлением нистатина в соответствующей концентрации (обычно между 25 и 300 МЕ/ /мл) при температуре инкубации 29—33°С. Готовят растворы испытуемого вещества путем растворения 75 мг его в количестве диметилформамида А, достаточном для получения 50 мл, и разводят 10 мл до 200 мл стерильным фосфатным буфером pH 6,0 ИРЗ. Предохраняют растворы от действия света в течение всего испытания. Точность определения такова, что фидуциальные пределы ошибки для найденной активности (Р = 0,95) не менее 95 и не более 105% от найденной активности. Верхний фидуциальный предел ошибки для найденной активности (Р = 0,95) не менее 4400 МЕ нистатина в 1 мг в пересчете на высушенное вещество. [c.260]

Б. Проводят количественное определение, как описано в разделе Количественное определение микробиологической активности антибиотиков (т. 1, с. 165), используя либо (а) Ba illus pumilus (N T 8241 или АТСС 14884) в качестве тест-организма, культуральную среду Кс1 с окончательной величиной pH [c.296]

Количественное определение. Растирают в порошок 0,060 г испытуемого вещества с диметилформамидом Р и добавляют, встряхивая, количество диметилформамида Р, достаточное для получения 100 мл. Разводят 10 мл до 100 мл диметилформамидом Р и проводят испытание, как описано в разделе Количественное определение микробиологической активности антибиотиков (т. 1, с. 165), используя Sa haromy es erevisae (штамм N T 10716 или -А.ТСС 9763) в качестве тест-организма, культуральную среду КсЗ с конечным значением pH 6,1, стерильный фосфатный буфер pH 10,5 ИР1, амфотерицин В в соответствующей концентрации (обычно между 0,5 и 10,0 мкг/мл) и температуру инкубации 29—33 °С. Точность определения такова, что фидуциальные пределы ошибки для найденной активности (Р = 0,95) не менее 95 и не более 105% от найденной активности. Верхний фидуциальный предел ошибки для найденной активности (Р = 0,95) не менее 750 мкг на 1 мг в пересчете на высушенное вещество. [c.28]

А. Количественное определение микробиологической активности. Проводят испытание, как описано в разделе Количественное определение микробиологической активности антибиотиков (т. 1, с. 165), используя My oba terium sme matis (штамм АТСС 607) в качестве тест-организма. Инокулят готовят следующим образом тест-организм выращивают на поверхности культуральной среды Кс8 в течение 40—48 ч при температуре 27 °С. Тремя миллилитрами физиологического раствора ИР смывают колонии в колбу, содержащую 100 мл культуральной среды Кс9 и 50 г стеклянных гранул, И инкубируют при 25—27 °С 5 дией при постоянном механическом перемешивании с использованием роллера. Полученную суспензию следует использовать не позднее чем через 14 дией и хранить при температуре ниже 5°С. Для приготовления инокулированных чашек используют 0,5 мл суспензии или соответствующий объем, предварительно определенный с помощью тест-чашек с культуральной средой Кс8 при температуре 27 °С. Готовят эталонный раствор в фосфатном буфере pH 7,0 ИР, разводя Международный эталонный препарат блеомицина А2/В2 до соответствующей концентрации (обычно 10—200 мкг/мл). Точность определения такова, что фидуциальные пределы ошибки для найденной активности (Р = 0,95) не менее 95 и не более 105% найденнной активности. Верхний фидуциальный предел ошибки найденной активности (Р = 0,95) не менее 1500 МЕ, а нижний фидуциальный предел не более 2000 МЕ блеомицина Л2/В2 в 1 мг в пересчете на высушенное вещество. [c.55]

А. Количественное определение микробиологической активности. Проводят определение, как описано в разделе Количественное определение микробиологической активности антибиотиков (т. 1, с. 165), используя My oba terium smegmatis (штамм АТСС 607) в качестве тест-организма. Инокулят готовят следующим образом тест-организм выращивают на поверхности культуральной среды Кс8 в течение 40—48 ч при температуре 27 С. Используют [c.59]

Тест-организм Минимальная подавляющая концентрация мкг/мл леворина А леворина В [c.84]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология