Выживаемость

Для приведенных экспериментальных данных 50%-ная выживаемость дафний соответствует кратности разбавления тестируемой воды, равной 48, а 100%-ная - 2342. Эта зависимость описывается формулой. [c.126]

На основании исследований, выполненных отечественными и зарубежными учеными, установлено, что выживаемость растений на загрязненных нефтью почвах зависит от глубины проникновения корней, скорости возобновления роста листьев, опадающих в результате загрязнения, и наличия подземных защитных органов или подземных стеблей (корневища). [c.82]

Дозы яда, мг Дозы сывороток, мг Выживаемость (%) [c.210]

Выживаемость <%) опыт [контроль [c.211]

Сухой экстракт гречихи, вводимый перорально в течение 1 —18 дней дважды в день по 1 или 5 мг/кг, повышает радиорезистентность мышей, оцениваемую по 30-суточной выживаемости после общего облучения в дозе 6,72 Гр [Усачева и соавт., 1981]. [c.37]

Рис. 33. Выживаемость тотально облученных (9 Гр) самок-мышей в различные интервалы после внутрибрюшинного (1) и внутримышечного (2) введения цистамина (150 мг/кг).

Выживаемость животных прослежена до 30-х суток после облучения. В каждой группе облучено 20 мышей. [c.128]

Радиозащитное действие парентерального введения мы проверяли в последующих опытах на кроликах и собаках. У кроликов при анализе защитного действия внутривенно вводимого цистамина было установлено [Кипа, 1972], что однократное его введение в вену продолжительностью 20— 30 с не усиливает радиорезистентности, тогда как внутривенное вливание в дозах по основанию 60,3 и 67,0 мг/кг, продолжающееся 4—6 мин и заканчивающееся за 7— 10 мин до начала тотального гамма-облучения в дозах 10—12 Гр (20,6—32,2 Гр/мин), каждый раз заметно повышает выживаемость кроликов. Значительным радиозащитным действием обладал и цистамин, внутримышечно введенный кроликам (рис. 35) в дозе 70 мг/кг за 15 мин до начала облучения. Уменьшение дозы, цистамина до 50 мг/кг (внутримышечно) приводило к исчезновению защитного [c.129]

Рис. 35. Кривые выживаемости кроликов после тотального облучения в дозе 10 Гр.

В серии опытов на белых мышах линии Н мы подтвердили высокий защитный эффект дозы гаммафоса 300 мг/кг, внутрибрюшинно введенной за 15—20 мин до тотального гамма-облучения. При оценке выживаемости облученных мышей до 30-х суток после облучения ФУД определили равным 1,89 и 2,04 (табл. 19) с помощью сравнения прямых хода летальности. Внутримышечное введение гамма- [c.131]

Пероральное введение водного раствора гаммафоса в дозе 300 мг/кг (3% раствор, 0,1 мл/10 г) не повысило сколько-нибудь существенно резистентности мышей, оцениваемой по ФУД для 30-суточной выживаемости. Только увеличенная до 600 мг/кг пероральная доза (6% раствор, 0,1 мл/10 г) имела выраженный защитный эффект с ФУД 1,34 (см. табл. 19). [c.133]

Результаты опытов на мелких лабораторных животных показали, что гаммафос при меньшей токсичности обладает большим, чем цистамин, радиозащитным действием, оцениваемым по выживаемости летально облученных животных. [c.139]

Рис. 47. Выживаемость кроликов, тотально облученных в дозе 10,5 Гр.

За 15 мни до начала облучения животным внутримышечно вводили изотонический раствор хлорида натрия (сплошная линия), гаммафос—100 мг/кг (пунктир) или цистамин — 70 мг/кг (штриховая линия). Величины р получены при сравнении процента выживаемости с незащищенной группой по Генесу (1964). [c.146]

При внутривенном введении гаммафоса и цистамина в равных дозах только гаммафос статистически значимо повышал выживаемость кроликов, облученных в дозе 10,5 Гр. Цистамин увеличивал число выживших лишь не значительно —с 8,3 до 25%. [c.147]

Полученные данные обрабатывались биометрически. Определяли процент выживших дафний в тестируемой воде по сравнению с контрольным опыто.м. Результаты, полученные при биотестировании, обрабатывали с помощью приложения Mi rosoft Ex el 8,0/97. Бьши вычислены средние арифметические показатели выживаемости и плодовитости в контрольной и тестируемой воде и их ошибка, среднее квадратичное отклонение пока- [c.125]

Для оценки острого токсического действия (50% выживаемости) и полного его устранения (100% выживаемости) построен график зависимости вьгживаемости дафний от кратности разбавления тестируемой воды (рисунок). [c.126]

В последнее время в качестве эффективного неспецифического средства при лечении отравлений ядами элапнд был предложен неостигмин (Banergel et al., 1974). По данным авторов, применение неостигмина позволило добиться 95% выживаемости, тогда как ири лечении только сыворотками смертность достигала 77,7%. Сле- [c.204]

Влияние различных разведений жидкой сыворотки антигюрза на выживаемость мышей, отравленных 20ЬМ яда гюрзы [c.211]

Одновременное введение неинкубированной смеси яда гюрзы с гепарином показало, что увеличение дозы гепарина с 0,12 до 0,6 мг увеличивало процент выживаемости мышей до 77,7%. Предварительная инкубация смеси предотвращала развитие защитного действия гепарина. Введение гепарина через 30 мин после инъекции яда (I DLM) показало, что наиболее эффективным является внутривенный способ. [c.213]

Комбинация серосодержащих протекторов и производных индолилалкиламинов. Двухкомпонентная рецептура протекторов с разными механизмами действия логически оправдана. Уже в конце 50-х годов был испытан ряд комбинаций серосодержащих протекторов с индолилалкил-аминами. Одна из первых комбинаций такого рода, состоящая из цистеина и триптамина, была испытана Романцевым и Савичем (1958). Если при использовании отдельных протекторов перед летальным общим облучением выживало 20—30% крыс, то совместное применение этих протекторов повышало выживаемость л<ивотных до 70%. [c.30]

Значительное снижение биологического воздействия ионизирующего излучения под влиянием общей гипоксии относится к основным представлениям в радиобиологии (сводка данных) [Kuna, 1973а], Например, по данным Va ek и соавт. (1971), уменьшение содержания кислорода в окружающей среде до 8% во время облучения увеличивает среднюю летальную дозу у мышей на 3—4 Гр. Снижение уровня кислорода до 9,2—11% не приводит к повышению выживаемости мышей, подвергавшихся супра-летальному воздействию гамма-излучения в дозе 14,5— 15 Гр, Оно выявляется лишь после уменьшения содержания кислорода до 6,7% [Федоров, Семенов, 1967]. [c.32]

Экранирование области живота у крыс с помощью свинца толщиной 5 см обеспечивает выживание 30% особей, облученных в дозе примерно 10 Гр [Саксонов и соавт,, 1976]. Экранирование 5% активного костного мозга повышает выживаемость собак на 85% при гамма-облучении всего тела в дозе ЛДзо/45 [Зяблицкий и соавт., 1980]. [c.33]

Бактериальный эндотоксин, выделенный из Salmonella typhi, внутрибрюшинно введенный мышам за сутки до гамма-облучения всего тела в дозах 7—9 Гр, повышает пострадиационную выживаемость и, следовательно, количество эндогенных колоний селезенки, а также клеточность костного мозга бедренной кости [Smith et al., 1957, 1966]. Эндотоксин смягчал пострадиационное поражение и в том случае, если вводился через 30 мин после окончания облучения. [c.34]

Полисахариды и вакцина брюшного тифа (10 убитых микробных тел на мышь), введенные подкожно за 24 ч до общего гамма-обдучения мышей в дозах 9,5—10,5 Гр, предотвращали гибель в среднем 10—30% животных. Весьма эффективной была комбинация полисахаридов или вакцины с цистеамином, которая вводилась за 5 мин до облучения. Антибиотики (пенициллин, стрептомицин или хлор-тетрациклин), введенные мышам за 24 ч до облучения, не проявляли никакого защитного действия [Семенов и соавт., 1968]. В более ранних опытах Рогозкина (1960) у летально облученных мышей наблюдался значительный радиозащитный эффект ауреомицина, вводимого в течение 3—5 сут или однократно перорально в дозе 100—200 мг/кг за 2—3 ч до облучения в дозе 6 Тр. Точно так же стрептомицин, ауреомицин или биомицин, вводимые отдельно в течение 3—5 сут, давали защитный эффект при тотальном облучении крыс в дозе 7,5 Гр. Однократное пероральное введение ауреомицина или биомицина (200—300 мг/кг) за 30 мин до тотального облучения крыс в дозе 7,5 Гр не обнаружило какого-либо защитного действия. Повторные пероральные введения ауреомицина или биомицина с эк-молином в течение 3 сут или их однократный прием за 2—3 ч до тотального гамма-облучения в дозе 4 Гр повышали выживаемость облученных собак на 37,5 и 35,7% при 100% гибели незащищенных животных [Рогозкин, 1960]. Защитное действие было обнаружено у полисахарида зимозана, выделенного из дрожжевых клеток [Чертков и соавт., 1973]. [c.35]

В опытах на мышах и крысах Рогозкин (1960) исследовал протективное действие половых гормонов — метил-тестостерона, диэтилстильбэстрола и дипропионатэстра-диола. Наибольший статистически значимый эффект отмечен только у эстрадиола при однократном внутримышечном введении в дозе 2,5 мг/кг за 9—10 сут до тотального облучения мышей в дозе 5 Гр. Метилтестостерон (внутрибрюшинно) и диэтилстильбэстрол (внутримышечно) повышали выживаемость облученных мышей и крыс только на 15—17,5%. Однократное введение гормонов за 30— 60 мин до тотального облучения совсем не давало защитного эффекта. , [c.35]

Неспецифическое радиозащитное действие оказывало внутрибрюшннное введение 1—1,5 мл кипяченого коровьего молока за 1—2 сут до тотального рентгеновского облучения мышей это приводило к повышению выживаемости животных после облучения в дозах 6,5—8 Гр, увеличению количества эндогенных колоний селезенки (облучение в дозе 6 Гр) клеточность костного мозга и селезенки возрастала в таких условиях в течение 8 сут при суб-летальном гамма-облучении в дозе 3 Гр [Juraskova, 1971]. [c.36]

Выживаемость мышей при рентгеновском облучении в дозах 5 и 6 Гр повышается при подкожном введении апи-лита за 24 ч до облучения, Апилит выделен из пчелиного яда, он содержит несколько полипептидов, из которых наиболее важным является мелитин, состоящий из 26 аминокислот. Препарат обладает и терапевтическим эффектом после облучения [Артемов и соавт., 1975]. [c.36]

Препарат женьшеня при пероральном или подкожном введении мышам в течение 7—10 сут в дозах 100— 150 мг/кг (последняя доза — за 30 ч до рентгеновского облучения в дозе 5 Гр) повышает выживаемость облученных мышей на 20%. При более тяжелой форме лучевой болезни (доза на все тело —6 Гр) женьшень неэффективен, равно как и при его однократном подкожном введении за 10—15 мин до облучения в дозе 5 Гр [Рогозкин, 1960]. [c.36]

По данным некоторых исследований, ряд препаратов с иным фармакологическим действием повышает радиорезистентность экспериментальных животных при увеличении временного интервала. Так, гепарин (200 МЕ на мышь), введенный за 24 ч до тотального рентгеновского облучения (7 Гр), повышает выживаемость мышей с 35% (контроль) до 60% [Bru kner, 1973]. Гепарин оказывает благоприятное воздействие и при супралетальном облучении кроликов в дозе 15 Гр [Wegrzynowi z et al., 1973]. [c.38]

Многократное пероральное введение резерпина (8— 10 мг/кг) в течение 5—6 дней (последнее — за 16—18 ч) до облучения в дозе 6 Гр или однократная подкожная инъекция (2 мг/кг) за 16—18 ч до такого облучения повышает выживаемость мышей в среднем на 30%. Если резерпин вводится за 30—60 мин до облучения, для проявления его защитного действия необходимо увеличить дозу подкожной инъекции на 4—5 мг/кг, что делает ее токсичной. У крыс радиозащитный эффект резерпина значительно ниже как при повторном пероральном введении, так и после однократной подкожной инъекции [Рогозкин, I960].. [c.38]

Многократное 10—20-суточное внутримышечное введение витамина С повышало радиорезистентность лягушек, голубей и мышей [Manowska, 1976]. В экспериментах Рогозкина (1960) совместное пероральное повторное введение аскорбиновой кислоты (50—100 мг/кг) и витамина Р, выделенного из листьев чая (10—20 мг/кг), в течение 7—10 сут приводило к повышению выживаемости мышей на 20% при общем облучении животных в дозе 5 Гр. Для крыс это сочетание было неэффективным. При той же дозе облучения 58-кратное пероральное (50—70 мг/кг), или внутривенное (30 мг/кг) введение только никотиновой кислоты повысило выживаемость мышей с 33 (контроль) до 58%). На 15% повышало выживаемость мышей при [c.38]

В опытах на мышах мы установили [Kuna et al., 1978], что предварительное введение атропина (5 мг/кг) не препятствует выраженному защитному действию цистамина, оцениваемому по уровню репарации кроветворения на 8-е сутки после тотального гамма-облучения в дозе 8 Гр или по выживаемости животных к 30-м суткам после облучения. Введение атропина снижает (иногда существенно, но в большинстве случаев незначительно) степень защиты, обусловленной циетамином. Эти данные не подтвердили значения активизации парасимпатической системы в механизме токсического действия цистамина у необлученных и облученных мышей. Предварительное введение атропина в дозах 5 и 20 мг/кг не повлияло статистически значимо на величину токсических доз цистамина. [c.105]

Феномен химической радиозащиты был впервые продемонстрирован на мышах путем сравнения их выживаемости после введения радиозащитных средств и тотального рентгеновского облучения в дозах, которые у 100% незащищенных мышей приводят к смерти в течение 30 сут после воздействия [Patt et al., 1949 Ba q et al., 1951]. Уменьшение радиационного поражения проявляется непросто, как непросто точно различить и действие возрастающих доз излучения [Her ik et al., 1966]. [c.119]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология