Инсулин подкожное введение

Подкожное введение инсулина вызывает уменьшение содержания сахара в крови (гипогликемия). [c.177]

При введении инсулина у больных диабетом не только снижается концентрация сахара и ацетоновых тел в крови, но и исчезает потребность в введении в организм большого количества воды, необходимой для предотвращения изменения осмотического давления крови вследствие повышения в плазме крови концентрации сахара. Кроме того, введение инсулина способствует отложению жира в подкожной клетчатке и других жировых депо. Больные диабетом после лечения инсулином быстро поправляются, прибавляют в весе, и у них исчезает чувство постоянной жажды. [c.275]

Типичным примером этого являются пролонгированные препараты инсулина различной длительности действия. В них инсулин находится в виде труднорастворимых кристаллических или аморфных комплексов с цинком (или протамином), которые при подкожном введении медленно диссоциируют с высвобождением растворимой формы гормона при общей продолжительности его действия от 12 до 36 часов. Особенностью этих препаратов является также то, что их суспензии содержат однообразные кристаллы в форме ромбоэдра величиной от 10 до 40 мкм, что также обеспечивает стабильность скорости их растворения и биодоступности. [c.310]

Современный уровень фармацевтической технологии позволяет ожидать, что в ближайшие годы задача создания оральных форм инсулина может быть решена. В табл.2 представлены результаты оценки сахароснижающей активности инсулина при его подкожном введении в традиционной инъекционной форме и в желудок в форме таблеток, изготовленных на основе липосом с инсулином. [c.302]

Активность различных препаратов инсулина определяют измерением содержания сахара в крови кроликов после подкожного введения им инсулина, измерением пороговой дозы, вызывающей судороги у мышей (судороги являются симптомом гипогликемии) после внутрибрюшинного введения инсулина, или измерением поглощения глюкозы изолированными полудиафраг-мами крыс. Содержание инсулина в плазме можно также определять с помощью иммунологической реакции. Последний метод является очень чувствительным [2599, 2600]. [c.470]

Инсулин получил широкое применение в клинике при лечении сахарного диабета. Его применяют также при лечении некоторых других заболеваний. Инсулин вводят подкожно при введении через рот он разрушается протеолитическими ферментами. Инсулин легко соединяется с щелочными белками (протаминами) с образованием стойких комплексов. Эти комплексы обладают более продолжительным действием в организме, чем свободный инсулин (депо-препараты). [c.150]

Необходимо, однако, с осторожностью интерпретировать клинические требования в свете современной медицинской практики. Сейчас многие пациенты сами определяют содержание глюкозы в крови по индикаторным полоскам с точностью + 30% (что соответствует шагу эталонной шкалы цветности) и представляют данные своим врачам, которым вполне достаточно этих данных для уточнения дозировки инсулина. Такая неточность, однако, неприемлема, если каждое измерение используется для регулировки дозы инсулина, поддерживающей постоянную физиологическую концентрацию глюкозы в крови. Это возможно в случае, когда терапевтически более эффективно подкожное введение инсулина. Можно предполагать, что если данные по содержанию глюкозы используются для решения более сложных задач (расчет дозы, установление связи между поглощением пищи и инсулиновой чувствительностью, введение обратной связи в управление внутривенной подачей инсулина), то требуется большая воспроизводимость. [c.575]

Отобранных для опытов кроликов лишают корма (но не воды) на 18 ч, предшествующих введению инсулина. Животных распределяют на две группы способом случайного выбора (в каждой группе должно быть не менее 9 кроликов). Непосредственно перед введением инсулина кроликов взвешивают.и определяют исходную концентрацию сахара в крови. Кроликам одной группы вводят подкожно по 0,5 ЕД стандартного образца инсулина (5) на 1 кг массы тела, кроликам другой группы — такую же дозу испытуемого препарата инсулина (Т). Через 1,5 и 2,5 ч после введения инсулина у животных снова определяют концентрацию сахара в крови. [c.177]

Рис. 8.4. Изменение содержания глюкозы в плазме здоровых добровольцев под действием малых и больших доз инсулина человека, полученного на основе технологии рекомбинантных ДНК, и инсулина из поджелудочной железы свиньи (Keen et al., 1980). Вверху — биологический ответ при подкожном введении, внизу — при внутривенном введении в течение 1 ч.

Определение биологической активности инсулина проводят на здоровых кроликах весом 2,5—3,5 кг. Животных весом 1,8—2,3 кг выдерживают 14 дней, в течение которых они получают овес, сено или свежую траву, корнеплоды, комбинированные корма и воду в неограниченном количестве. По истечении этого срока определяют чувствительность кроликов к инсулину. Для этого кроликам дважды с интервалом 7—8 дней после 18-часового голодания вводят подкожно раствор стандартного препарата инсулина из расчета 0,4 ЕД на 1 кг веса и определяют величину снижения концентрации сахара крови в процентах. Кровь для исследования берут из краевой вены уха животных до введения инсулина и через 1 и 2 /2 часа после инъекции инсулина (для расчета берут среднюю концентрацию сахара из двух определений после введения инсулина). Из опытов исключают животных с исходной концентрацией сахара крови ниже 75 мг% и выше 120 мг%, а также реагирующих на указанную дозу инсулина судорогами или дающих снижение концентрации сахара крови менее 15% по отношению к исходной концентрации. Определение биологической активности инсулина производят не ранее чем через 7—8 дней после испытания на чувствительность. [c.935]

Предварительные технические условия использования сенсоров в медицине детально обсуждаются ниже. Очевидно, однако, что для управления инсулиновым насосом можно использовать только сигнал сенсора, быстро реагирующего на изменение концентрации глюкозы в крови и характеризующегося надежностью, селективностью и отсутствием дрейфа базовой линии. Объединение такого сенсора с неизбежно довольно сложным имплантируемым инсулиновым насосом (который должен был быть опробован в 1986 г.) позволит создать эффективную искусственную поджелудочную железу. Подкожные сенсоры [9] обладают очевидными преимуществами в смысле доступности, однако во время приема пищи их сигналы запаздывают по сравнению с изменениями концентрации глюкозы в крови. Найти решение этой проблемы довольно трудно, поскольку физиологическая концентрация инсулина после еды увеличивается очень быстро [1]. Кроме того, для управления имплантированным насосом сигнал должен как-то передаваться через кожу к насосу. Поэтому первые подкожные сенсоры, видимо, лучше использовать совместно с обычными способами введения инсулина под кожу (инъекцией или с помощью дозирующего насоса), обрабатывая данные в уме или при помощи специализированного компьютера [10]. [c.574]

Существенную роль сыграла также доступность полосок индикаторной глюкозооксидазной бумаги для определения глюкбзы в капиллярной крови. Поскольку подкожное введение инсулина при диабете представляется весьма неудовлетворительных средством, знание уровня глюкозы в крови пациента как дома, так и в больничной палате очень полезно и для него, и для врача. Капиллярную кровь нетрудно отбирать из пальца. Широкое и вполне успешное применение данного метода [11] открыло клиницистам глаза на возможности мгновенных биохимических анализов и привело к осознанию потребности в еще более удобных и надежных в работе системах для определения глюкозы в крови. [c.569]

Было бы полезно определять у пациентов, страдающих диабетом, и другие субстраты (табл. 36.1). При физиологически наиболее целесообразном ежедневном введении инсулина возрастает риск острых обострений диабета при других болезнях (например, инфекции), и желательно было бы иметь прибор, предупреждающий о высоком уровне содержания кетонов (например, 3-гидроксибутирата) в крови. Для этой цели снова наиболее пригодны накожные и подкожные сенсоры (или детекторы ацетона в выдыхаемом воздухе). Быстрое увеличение концентрации лактата в крови может наблюдаться не только в отделениях интенсивной терапии. В отсутствие физической нагрузки это свидетельствует о сверхбыстром увеличении скорости оборота глюкозы, связанном с передозировкой инсулина. Объединение лактатного сенсора и сенсора глюкозы, контролирующего подачу инсулина, могло бы быть первым шагом к достижению совершенства, свойственного природным В-клеткам. Следующими кандидатами на постоянный контроль в системе искусственной поджелудочной железы являются аминокислоты. [c.574]

Сахароснижающий эффект инсулина на пике действия при подкожном (инъекционная форма) и внутрижелудочном (линосомальная форма) введении крысам с аллоксановым диабетом [c.302]

Была предпринята попытка гликемического контроля пациентов с инсулин-зависимым диабетом при помощи переносимой искусственной поджелудочной железы. В алгоритмах вливания инсулина и глюкагона использовали следующие значения параметров Кр = 0,51 = 4,89 К, = -2,02 Ср = 3,6 С = 7,2 С, = 0,4 и т = 10. Сенсор заменяли новым через каждые три дня. У всех пациентов данные контроля гликемии сравнивали с результатами, полученными в интенсивном режиме многократных инъекций инсулина и режиме непрерывного подкожного введения инсулина. [c.341]

Неустойчивость реакции организма на подкожное введение инсулина также дала толчок к созданию приборов, способных вводить инсулин внутривенно, что физиологически более целесобразно. Требуемое количество инсулина заметно варьирует в зависимости от приема пищи, физической нагрузки, стрессов, телесных повреждений, инфекций и даже времени суток. Поэтому значительное внимание привлекают приборы, которые могут непрерывно следить за содержанием глюкозы в крови и выходной сигнал которых можно использовать для управления инсулиновым насосом. Именно это достоинство такой искусственной поджелудочной железы [2] как магнитом почти неминуемо привлекает тех, кто больше интересуется применением биосенсоров в медицине, чем просто обычными измерительными приборами. [c.569]

Первая помощь и лечение. Специфически действующих средств при отравлениях четыреххлористым углеродом нет. При поражении печени (как и для его профилактики) главное — покой, диета, введение глюкозы внутрь и внутривенно (40% раствор по 30—40 мл), подкожно и в виде капельных клизм (5% раствор, можно с инсулином по 5—10 единиц подкожно), богатая углеводами (300—500 г) и белками (110—180 г) высококалорийная (не менее 3000 калорий) пища. Возможно введение 5% смеси аминокислот с глюкозой. Многие указывают на благоприятное действие рибофлавина (8—20 мг в день), пиридоксина (40—50 мг внутривенно 2—3 раза в день), аскорбиновой кислоты (300—500 мгвдень), витамина В12 (200 Y внутримышечно через день), фолиевой кислоты (15 мг в день), никотиновой кислоты, витаминов А, D, Е. При геморрагическом диатезе применяется витамин К (20—40 мг каждые 2—3 дня), лагохилус (в виде настоя по 2 столовые ложки 3—5 раз в день или настойки по 1 чайной ложке на V4 стакана воды 6 раз в день), липокаин (по 0,1 г 3 раза в день) в сочетании с творогом. [c.45]

Определение биологической активности инсулина проводят на здоровых кроликах массой 2,5—3,5 кг. Животных массой 1,8—2,3 кг предварительно не менее 14 сут содержат в условиях вивария, где они получают овес, сено или свежую траву, корнеплоды, комбинированный корм и воду. По истечении этого срока определяют чувствительность кроликов к инсулину. Для этого кроликам дважды с интервалом 7—8 сут после 18 ч голодания вводят подкожно раствор стандартного образца инсулина из расчета 0,5 ЕД на 1 кг массы тела животного и определяют величину снижения концентрации сахара в крови в процентах. Кровь для исследования берут из краевой вены уха животных до введения инсулина и через 1,5 и 2,5 ч после его введения (для расчета берут среднюю концентрацию сахара в крови из двух определений после введения инсулина). Кровь берут в условиях, не допускающих чрезмерного волнения кроликов. Из опытов исключают животных с исходной концентрацией сахара в крови ниже и выще пределов, установленных для используемого метода определения содержания сахара в крови (ниже 75 мг % и выше 120 мг % для феррицианидного метода, [c.176]

Метод определения биологической активности Определение биологической активности инсулина проводят на здоровых кроликах массой 2,5—3,5 кг. Животных массой 1,8— 2,3 кг предварительно не менее 14 сут содержат в условиях вивария, где они получают овес, сено или свежую траву, корнеплоды, комбинированный корм и воду. По истечении этого срока определяют чувствительность кроликов к инсулину. Для этого кроликам дважды с интервалом 7—8 сут после 18 ч голодания вводят подкожно раствор стандартного образца инсулина из расчета 0,5 ЕД на 1 кг массы тела животного и определяют величину снижения концентрации сахара в крови в процентах. Кровь для исследования берут из краевой вены уха животных до введения инсулина и через 1,5 и 2,5 ч после его введения (для расчета берут среднюю концентрацию сахара в крови из двух определений после введения инсулина). Кровь берут в условиях, не допускающих чрезмерного волнения кроликов. Из опытов исключают животных с исходной концентрацией сахара в крови ниже и выше пределов, установленных для используемого метода определения содержания сахара в крови (ниже 75 мг % и выше 120 мг % для феррици-анидного метода, ниже 52 мг % и выше 94 мг % для глюкозоок-сидазного метода), а также тех животных, которые реагируют на введение инсулина судорогами или у которых снижение концентрации сахара в крови составляет менее 15 % по отношению к исходной концентрации. Определение биологической активности инсулина проводят не ранее, чем через 7—8 сут после испытания на чувствительность. [c.297]

Кролику после второго взятия крови вводят подкожно 10 мл 40%-ного стерильного раствора глюкозы и такой же раствор дают пить из шприца через резиновую трубочку. Случайная передозировка инсулина, введенного кролику, может вызвать у животноро судороги (инсулиновый шок). В этом случае необходимо немедленно ввести внутривенно 1 мл раствора адреналина (1 1000) или 10 мл 40%-ного раствора глюкозы. [c.137]

Отобранных для опыта кроликов взвешивают и лишают корма на протяжении 18 часов, предшествующих введению инсулина. Животных распределяют на две группы способом случайного выбора (в каждой из групп должно быгь не менее 9 кроликов). Непосредственно перед введением инсулина у животных определяют исходную концентрацию сахара крови. Одной группе кроликов вводят подкожно по 0,5 ЕД стандартного препарата инсулина (5) на 1 кг веса, а второй группе — такую же дозу испытуемого препарата инсулина (Г). Через 1 час и 2 /2 часа после инъекции инсулина у животных снова определяют концентрацию сахара крови. [c.935]

Так, инсулин при инсулинзависимой форме сахарного диабета вводят подкожно для постепенного, медленного и достаточно равномерного поступления препарата. При этом энтеральное введение данного препарата невозможно из-за того, что в желудочно-кишечном тракте инсулин подвергается практически 100%-ному разрушению. [c.501]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология