Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Среда Сабуро

    Требования к ростовым свойствам питательных сред. Тиогликолевая среда и среда Сабуро должны обеспечивать визуально обнаруживаемый рост соответствующих тест-штаммов аэробных и анаэробных бактерий и грибов (предусмотренных НТД). [c.193]

    Микологическое (культуральное) исследование направлено на выделение чистой культуры гриба и ее идентификацию. Посевы производят на плотные и жидкие, неселективные и селективные питательные среды Сабуро, сусло-агар, Чапека, кукурузный, ри- [c.315]


    Для контроля стерильности растворов лекарственных средств, выпускаемых в виде порошков, лиофилизированных препаратов и пр., содержимое каждой емкости предварительно растворяют в стерильном растворителе. Затем из каждых 10 емкостей одной группы отбирают полученный раствор в количестве, соответствующем 200 мг лекарственного средства, и переносят в колбу, содержащую 100 мл аналогичного растворителя. Приготовленный раствор немедленно фильтруют После отмывания фильтра, как указано выше, одну половину его помещают в колбу с тиогликолевой средой, вторую — в колбу со средой Сабуро. [c.191]

    Определение антимикробного действия лекарственного средства. Во избежание неправильной оценки результатов анализа необходимо определить однократно для каждого наименования лекарственного средства, обладает ли оно антимикробным действием. Для этого в две пробирки с 10 мл тиогликолевой среды и в две — с 10 мл среды Сабуро добавляют соответствующее количество исследуемого лекарственного средства (табл. 12) и вносят в каждую пробирку по 0,1 мл микробной взвеси соответствующего тест-штамма, содержащей 1000 клеток в 1 мл. Посевы в тиогликолевой среде инкубируют при температуре от 30 до 35 °С в течение 48 ч, а на среде Сабуро — при температуре от 20 до 25 °С в течение 72 ч. [c.188]

    Посев лекарственных средств. Для контроля стерильности лекарственных средств применяют тиогликолевую среду и жидкую среду Сабуро. При этом используют метод прямого посева на питательные среды или метод мембранной фильтрации. [c.188]

    Для контроля стерильности применяют Сухую питательную среду для контроля стерильности (тиогликолевую) отечественного производства (ТУ 42.14 № 161-79) и среду Сабуро (жидкую). Вместо коммерческой тиогликолевой среды может быть использована тиогликолевая среда индивидуального приготовления. [c.192]

    Картофельный агар с глюкозой отличается тем, что берут 100 г протертого картофеля и после фильтрования среды добавляют 10 г глюкозы. Стерилизуют, как среду Сабуро. [c.317]

    Фильтрование отобранных образцов проводят в асептических условиях. Испытуемый раствор пропускают с помощью вакуума через одну или несколько мембран. При испытании лекарственных средств с антимикробным действием или содержащих консервант после окончания фильтрации мембрану необходимо промыть 3—5 порциями по 100 мл соответствующего растворителя, например раствора натрия хлорида изотонического 0,9 % для инъекций или жидкости № 1 (см. с. 193), при испытании мазей— жидкости № 2 (см. с. 193). Посл отмывания мембраны ее извлекают, разрезают стерильными ножницами пополам и одну половину помещают в колбу со 100 мл тиогликолевой среды, вторую—в колбу со 00 мл среды Сабуро. Питательные среды с помещенными в них фильтрами выдерживают при температуре [c.190]


    При испытании лекарственных средств посевы в тиогликолевой среде инкубируют при температуре от 30 до 35 °С, а в среде Сабуро — от 20 до 25 °С. Продолжительность инкубации посевов в обеих питательных средах составляет 14 сут. [c.327]

    Микологическое исследование. Для вьщеления чистой культуры материал сеют на среду Сабуро, питательные среды с углево- [c.329]

    Микологическое исследование. Для выделения чистой культуры гриба делают посевы на среду Сабуро и другие микологические среды. Полученные колонии идентифицируют по морфологическим, культуральным и биологическим свойствам (см. цв. вклейку, рис. 29). [c.324]

    При испытании мазей и растворов лекарственных средств в маслах от каждой из 10 емкостей отбирают по 100 мг препарата в колбу со 100 мл растворителя (изопропилмиристат и др.), который предварительно подогревают до температуры не выше 45 °С и стерилизуют фильтрованием через мембраны с размером пор (0,22 0,02) мкм. После фильтрации образца мембрану промывают двумя — тремя порциями по 200 мл жидкости № 2 и затем одной — двумя порциями жидкости № I. Половину мембраны помещают в тиогликолевую среду, другую — в среду Сабуро, в которые предварительно вносят стерильный твин-80 из расчета I г на 1000 мл среды. [c.191]

    Во второй серии опытов изучали действие препаратов на грибки в патологическом материале (волосы, кожные чешуйки), взятом с очагов поражения больных микроспорией. Пораженные волосы и кожные чешуйки помещали в стерильные стеклянные чашечки, заливали водными эмульсиями соединений возрастающих концентраций. Через 24, 48, 72 часа производили высевы на среду Сабуро. Перед посевом кусочки волос и чешуек отмывали стерильным физиологическим раствором. Наблюдения за посевами продолжались не менее 30 дней. [c.525]

    Используемые питательные среды должны обеспечивать рост микроорганизмов при посеве их в количестве менее 100 жизнеспособных клеток для тиогликолевой среды — не позднее 48 ч инкубации при температуре от 30 до 35 °С и для среды Сабуро — не позднее 72 ч инкубации при температуре от 20 до 25 °С. [c.193]

    Вьщеление культур производится на среде Сабуро или других микологических средах при 25—28 С (рост появляется на 3— 12-е сут). [c.335]

    Микологическое исследование. Выделение чистой культуры ведут путем посева, например, на среду Сабуро. На среде Сабуро образуются колонии диаметром 3 — 4 см серовато-коричневого или оливкового цвета, бархатистые, сьсладчатьге, кратерообразные. При бактериоскопии находят септированный мицелий и конидиефо-ры коричневого цвета. Только обнаружение тканевых форм гриба и получение чистой культуры позволяет установить диагноз болезни. [c.337]

    Род и вид грибка Концентрация соединений в среде Сабуро (посев культур грибков) 1 к i м о с 3 о о СГ) Концентрация соединений при заливке патологического материала. содержащего грибки Токсичность, мг/кг (белые мыши, подкожно)  [c.529]

    При испытании мазей и растворов лекарственных средств в маслах отбирают асептически по 0,1 г (мл) от каждой единицы и вносят в стерильную колбу вместимостью 250 мл, содержащую стеклянные бусы, 100 мл / 5М0Л фосфатного буферного раствора (pH 6,8—7,0) и эмульгатор. Перед проведением испытания содержимое колбы подогревают до температуры (41 1) °С. Колбу с испытуемым образцом встряхивают не более 30 мин до получения однородной эмульсии. Полученную эмульсию в количестве 5 мл переносят в колбу с 40 мл тиогликолевой среды и 5 мл — в колбу с 40 мл среды Сабуро. Посевы инкубируют 14 сут при соответствующей температуре для каждой питательной среды. [c.189]

    Кроме того, можно использовать среду Сабуро (см. подразд. 5.2), а также среду следующего состава кукурузного экстракта — 5,0 г, картофельного крахмала — 15,0 г, аминосульфита — 4,0 г калия дигидрофосфата — 2,0 г кальция карбоната — 3,0 г агар-агара — 20,0 г, дистиллированной воды — 1000 мл (pH 6,8 —7,0). Чашки с засеянными средами инкубируют при 37 °С. Рост появляется через [c.205]

    Биологическое исследование. Хорошие результаты дает внутрибрюшинное заражение исследуемым материалом белых мышей или золотистых хомячков. Через 1 мес после заражения животных забивают, измельченные печень и селезенку засевают в три пробирки с глюкозной средой Сабуро и выдерживают 4 нед в термостате при 25, 30 и 37 °С, затем в посевах определяют наличие гистоплазм. [c.332]

    Модификации — это смена фенотипов при изменении условий существования клона. Например, вид andida irapi /isB субклоновых культурах на сусле-агаре может образовывать рудиментарные коремии. При пересеве этих субклонов на среду Сабуро можно наблюдать быструю реверсию их в исходное состояние (гладкая форма колоний). Следовательно, конкретный фенотип данного вида микроба воспроизводится в совершенно определенных условиях его существования и всецело зависит от генотипа или наследственной конституции клетки, [c.100]

    Род н вид грибка Концентрация соединений в среде Сабуро (посев культур грибков) к я я- Концентрация соели-нений при заливке патологического материала, солержагцего гркбки Токсичность, мг кг (белке мыши, подкожно)  [c.527]

    Параллельно производили контрольный высев необработанной суспензии. После семидневной инкубации нри температуре +28 определяли летальный эффект НММ (количество выживших после обработки колоний по отношению к контролю), учитывали морфологическую изменчивость. У отсеянных субкультур определяли антибиотическую активность. Противогрибковую активность определяли методом серийных разведений на агаризовапной среде Сабуро по задержке роста тест-организма — Try hophyton gyp-seum. [c.42]


    В жидкой среде Сабуро из комочка лорикоконидий через 48 часов вырастают длинные гифы гриба. Часть их отделяется и оседает на дно, образуя скопления радиально расходящихся гиф, остальные образуют на поверхности среды пленку с плодоношениями. Через 7 дней после инокуляции (при 22° С) на стенках пробирки появлялись первые конидии. Затем пленка отделяется от стенок пробирки и опускается на дно, а на ее месте вырастает новая пленка из гиф. Покоящиеся споры образуются через 10 дней. [c.315]


Смотреть страницы где упоминается термин Среда Сабуро: [c.191]    [c.191]    [c.193]    [c.326]    [c.330]    [c.330]    [c.332]    [c.321]    [c.327]    [c.328]    [c.331]    [c.419]    [c.424]    [c.441]    [c.199]    [c.209]    [c.525]    [c.530]    [c.315]   
Микробиологические основы молочного производства (1987) -- [ c.304 ]




ПОИСК







© 2025 chem21.info Реклама на сайте