Агар картофельный

Культуральные и физиологические признаки характер роста на мясо-пептонном бульоне, рост на косом мясо-пептонном агаре и специальном агаре, рост на мясо-пептонной желатине при посеве уколом на молочных и картофельных средах способность образовывать индол тип колоний (окраска, контуры, строение края и др.) отнощение бактерий к различным источникам углерода (глюкозе, лактозе, мальтозе, сахарозе, манниту, крахмалу, фенолу, различным альдегидам, спиртам и другим органическим соединениям), к различным источникам азота (пептону, аспарагину, мочевине, азоту аммонийному, нитратному) определяется также денитрифицирующая активность (восстановление нитратов до нитритов или молекулярного азота) отнощение к кислороду. [c.66]

А. Используемый штамм гриба. Для производства биопрепарата следует использовать хорошо спорулирующий штамм гриба, испытанный на основном вредителе, против которого планируется применять препарат. В цитируемой работе автор использовал штамм, эффективный против колорадского (картофельного) жука. Штамм поддерживается в лаборатории на агаре с суслом. После посева конидий стерильной иглой на поверхность среды культуру переносят в термостат с температурой 25° С на 7 дней для последующего ее роста. Выросшую культуру можно хранить в течение нескольких месяцев в холодильнике при 4° С. Перед использованием такого материала для инокуляции его следует вынуть из холодильника за несколько дней. Споры с хорошо спорулирующей культуры смывают стерильной дистиллированной водой и полученную суспензию используют как инокулюм. [c.367]

Картофельный агар. 100 г очищенного мелконарезанного картофеля заливают 1 л водопроводной воды, кипятят 30 мин, фильтруют через два слоя марли. Доводят водой объем до 1 л. ставят на кипящую водяную баню и расплавляют в полученном картофельном отваре 20 г агара фильтруют через ватный фильтр, добавляют [c.282]

Картофельный агар. 20 г тертого картофеля настаивают в 1 л водопроводной воды в течение 4 ч при комнатной температуре, добавляют 20 г агар-агара, кипятят 10—15 мин, фильтруют, разливают в пробирки пс 4—5 мл и стерилизуют при 120°С в течение 30 мин. [c.317]

Картофельный агар с глюкозой отличается тем, что берут 100 г протертого картофеля и после фильтрования среды добавляют 10 г глюкозы. Стерилизуют, как среду Сабуро. [c.317]

Приготовленные питательные среды МПА, сусло-агара, картофельного агара разливают в стерильные чашки Петри слоем 2—3 мм, дают застыть агару и затем для проверки бактериальной стерильности среды выдерживают эти чашки в термостате прн 37° С в течение 24 ч. После этого чашки Петри с питательной средой, в которых отсутствуют колонии микроорганизмов, готовы к высевам проб. [c.283]

Сусловый агар, картофельно-глюкозный агар 20 23 3 5 30 300 [c.346]

В научных исследованиях довольно часто используются опыты по диффузии веществ в гелях желатины или агар-агара. Подобные опыты можно провести и в учебных целях, но желатину и агар-агар не всегда можно найти в условиях рядовой школы. Для замены их можно использовать обычный картофельный крахмал. В случае учебных опытов он нисколько не уступает желатине, а в некоторых отношениях имеет перед ней то преимущество, что может служить индикатором на диффузию вещества, например на йод. [c.28]

Картофельный агар. 200 г очищенного и промытого водой картофеля нарезают ломтиками, заливают 1 л водопроводной воды, варят 30 мин. Отвар фильтруют через вату и доводят до первоначального объема. К полученной жидкости прибавляют 2% агара, кипятят до его растворения и устанавливают нейтральную реакцию среды (pH 7,0). Среду стерилизуют при 1 атм в течение 20 мин. [c.60]

Картофельно-глицериновый агар по Борде. Сварить 100 г мелко нарезанного картофеля с 200 мл 4%-го глицерина растворить 5 г агара в 150 мл 0,6%-го хлорида натрия к 150 мл агара прибавить 50 мл отвара и стерилизовать. Накануне посева расплавить и остудить до 50 °С среду и прибавить 30 — 50% дефибрированной крови кролика. Для подавления сопутствующей флоры в готовую среду рекомендуют добавлять 15 — 25 ЕД пенициллина. [c.135]

Актиномицеты — гетеротрофы. Для выделения этой группы микроорганизмов используют различные среды, содержаш,ие органические вещества растительного или животного происхождения, как, например, мясопептонный агар (МПА), сусло-агар (СА), картофельный агар, наиболее распространенной средой для учета актиномицетов является крах-мало-аммиачная среда [56,64], [c.42]

Картофельный агар для актиномицетов [c.93]

Картофельный агар состоит из 20 % картофельного отвара, на 100 мл которого добавляют 2 г агар-агара, стерилизуют 20 мин при 120°С. [c.32]

Клеи растительные. Получают из крахмалов (картофельный, кукурузный, рисовый), декстрина, пшеничной и ржаной муки, различных семян, соков деревьев и растений (гуммиарабик, каучук, пектин, агар-агар и др.). [c.202]

Крахмал картофельный 2 — желатина 3 — агар 4 —сульфитная целлюлоза. [c.86]

Результаты последующих опытов показали, что размер зоны торможения (характеризующий чувствительность испытываемого гриба) может быть увеличен при введении вещества в диске для диффундирования в агар за 24 час до посева спор гриба и при уменьшении количества агара в чашке Петри. Например, диски размером 12,7 мм, на которые было нанесено по 1 мкг TBZ, помещали на чашки, содержащие по 10 и 15 мл агара картофельной декстрозы (АКД). Через 24 час пластинки агара опрыскивали спорами. Через два дня площадь зоны торможения на пластинке, содержащей 10 мл агара, [c.261]

Автолизат дрожжевой Автолизат отрубей сухой Агар картофельно-декстрозный Агар Чапека [c.685]

Например, больщинство сапрофитных бактерий хорощо развивается на богатых по составу натуральных средах (мясопеп-тонный агар, картофельный агар, сусло-агар и др.) при pH около 7,0 и температуре в пределах от 30 до 37 °С. Для развития актиномицетов и некоторых грибов эти условия также пригодны, хотя и Менее благоприятны, чем для бактерий. [c.127]

Учет миксобактерий (на картофельном агаре) — колонии амебовидные, так как бактерии по среде продви-гакггся всем фронтом . Вегетативные клетки расположены на слизи по краю колонии, а плодовые тела — ближе к центру концентрическими Кольцами. Диффе-ренцировка видов, родов и семейств основывается на - [c.153]

Препараты целлюлазы используют для осахаривания картофельной мезги, выделения крахмала из картофеля и зерна, увеличения выхода агар-агара из водорослей, для приготовления овощной пасты, удаления кожуры у цитрусовых. Используют их и для получения редуцирующих сахаров из растительных материа- [c.61]

Бактериологическое исследование. При бактериологической диагностике коклюша и паракоклюша производят посев мокроты методом кашлевых пластинок . Для этого в момент приступа кашля перед ртом больного на расстоянии 8—12 см помещают открытую чашку Петри с питательной средой (картофельно-глицериновый агар по Борде, молочно-кровяной или казеиновоугольный агар) и выдерживают в течение 6 — 8 кашлевых толчков. Чашку закрывают и помещают в термостат при 37 °С. Если кашель отсутствует, отделяемое слизистой оболочки с задней стенки глотки собирают клювовидным тампоном через рот или тампоном через нижние носовые ходы и сеют на чашки с указанными выше питательными средами. При взятии материала следует избегать попадания на тампон материала (микрофлоры) со слизистой оболочки щек, языка, миндалин (для этого используют шпатель). Следует учитывать также, что на сухом ватном тампоне бордетеллы быстро отмирают в результате высушивания и действия токсичных для них компонентов ваты. Если нет возможности немедленно посеять материал, его берут тампоном, смоченным в ИХН. Материал доставляют в лабораторию как можно быстрее и засевают на селективные среды в течение 2 ч после взятия. При посеве взятый тампоном материал тщательно растирают по поверхности агара (от периферии к центру чашки) для получения хорошо изолированных колоний. Такое исследование проводят дваж- [c.134]

Кроме того, можно использовать среду Сабуро (см. подразд. 5.2), а также среду следующего состава кукурузного экстракта — 5,0 г, картофельного крахмала — 15,0 г, аминосульфита — 4,0 г калия дигидрофосфата — 2,0 г кальция карбоната — 3,0 г агар-агара — 20,0 г, дистиллированной воды — 1000 мл (pH 6,8 —7,0). Чашки с засеянными средами инкубируют при 37 °С. Рост появляется через [c.205]

Бактерии, принадлежащие к различным классам или семействам, по-разному относятся к питательным средам или субстратам. На универсальных питательных средах мясопептоппом бульоне (МПБ), сладком пивном сусле, картофельном отваре, либо на этих средах, уплотненных агар-агаром,— мясо-пептопный агар (МПА), хорошо размножается большинство бактерий. При росте на поверхности плотных питательных сред (МПА, сусло-агар) преобладающее большинство изученных бактерий образуют скопления [c.15]

Исследовались сахароза, крахмал (картофельный), декстрин, агар-агар, гуммиарабик, сульфитцеллюлозный щелок (гулак), сапонин, солодковый корень. [c.223]

В бутылку с завинчивающейся крышкой емкостью 140 мл помещали 5 мл картофельно-декстрозного агара, который заражали в центре при помощи стандартной полной петли конидиями А. niger. Бутылки опрокидывали и в горло каждой бутылки вкладывали конус из фильтровальной бумаги, после чего крышку завинчивали. Бумагу предварительно обрабатывали ацетоновым раствором соединения и ацетону давали испариться. Бумаги брали столько, чтобы создать концентрацию 0,001, 0,01, 0,1 и 1,0 мг вещества в 1 мл воздуха в бутылке. После инкубации при 25° измеряли диаметр колонии А. niger (табл. 1). [c.305]

Наличие беномила можно установить по степени угнетения роста колоний гриба Рез с1а(Иит ёепёгЛкит, который культивируют на картофельном агаре. [c.194]

При экстрагировании препарата из почвы также проверялись спирт и ацетон в качестве веществ-экстракторов. ЕМК вносили в почву за 24 часа до экстракции из расчета 20 мг/кг почвы.Навес-ку почвы (50 г) заливали 100 мл ацетона или спирта. Время экспозиции - 2 часа. Затем экстракты дантрифугировали и вносили в питательную среду (картофельный агар). [c.123]

Spi aria относится к числу грибов, растущих на агаре, содержащем сусло. Кернер [98] культивировала 5. farinosa на такой среде и на солодовом агаре. На обеих этих средах наблюдался оптимальный рост колоний и образовывались коремии. Среды Чапека, Сабуро и морковный и картофельный агар дают худший результат. Образование конидий усиливается при добавлении крахмала или глицерина. [c.359]

Препараты суспендировали в ацетоне и вводили в расплавленный картофельно-глюкозный агар (температура от 50 до 60°С)в стерильных условиях, а затем в среду уколом вносили мицелии гриба. Учет производили измерением колоний гриба. Для характеристики фунгицидной активности определяли эффективность соединений в концентрации 0,005 и 0,003% по действующему веществу в сравнении с эталоном каптан и ТЮГД тетраметилтиурамдисульфидом. Результаты представлены в табл. 2. [c.33]

Фунгитоксичность соединений испытывали в агаре при концентрации 1 1000 и 1 10 000. Для приготовления дозировок 1 1000 2,5 г испытуемого соединения отвешивали в смесителе Уоринга и добавляли две капли неионогенного дисперсионного агента (тритон Х-171) и достаточное количество дистиллированной воды для доведения общего веса до 50 г. Смесь гомогенизировали на высоких скоростях и 1 г смеси из смесителя вносили в 50 г стерильного жидкого агара из картофельной декстрозы при 45°. Агар, содержащий испытываемое соединение в концентрации 1 1000, выливали в чашки Петри и давали застыть. Для получения испытываемого соединения в концентрации 1 10 000 10 г гомогенной смеси отвешивали в другом смесителе и доводили общий вес до 100 г добавлением дистиллированной воды. Смесь перемешивали и 1 г смеси вносили в 50 г стерильного агара, который затем наливали в 3 чашки Петри и оставляли застывать. Во всех случаях гомогенные смеси были хорошо распределены в агаре. [c.199]

Прежде чем приступить к изучению токсичности препаратов по отношению к микробам-антагонистам, последние были проверены на антагонистическую активность к возбудителю гоммоза. Антагонистическое действие спороносной палочки В. mismteri us) проверяли в лабораторных условиях в чашках Петри на питательной среде (картофельно-декстрозный агар). Для этой цели на агаровую поверхность, предварительно зараженную бактерией гоммоза, раскладывали кусочки агара с выращенным на них антагонистом. О наличии и степени активности изучаемых антагонистов можно было судить по величине зон отсутствия роста бактерии гоммоза вокруг тест-объекта. [c.307]

Г. Фарш из телятины [818, 1337]. Свежую телятину, свободную от жира, трижды пропускают через мясорубку, взвешивают, смешивают с двойным количеством дистиллированной воды и выдерживают в холодильнике в течение 18—48 часов. Затем настой сливают на чистую фланель и отжимают возможно суше вручную или под прессом. К фаршу прибавляют антисептик, массу тщательно перемешивают и помещают в культуральные сосуды. После этого культуры готовы для заселения нематодами. Выход с культур из телятины, приготовленных Мак-Коем и Гиртом, колебался от 9 до 12 тыс. нематод на 1 см поверхности культуры (вышеописанные картофельные культуры давали около 2000 нематод на 1 см ). Средний выход с лотка (см. В ) был около 20 млн. личинок второго возраста. Заметного уменьшения плодовитости при повторном пересеве не отмечено, по крайней мере в течение 10—12 пассажей. Однако целесообразно заменять более старые культуры нематодами, выведенными на агаре, так как это поддерживает более высокий средний выход и более равномерное развитие крупных культур. [c.457]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология