Аминокислоты ацетилпроизводные

Газохроматографический анализ к-пропиловых и к-амиловых эфиров -ацетилпроизводных аминокислот описан также в работах [17, 18]. [c.11]

При изучении реакции восстановления аминокислот алюмогидридом лития было установлено, что некоторые аминокислоты, такие, как аланин, р-аланин, а-аминомасляная кислота, а-амино-изомасляная кислота, валин, норвалин, изовалин, лейцин, изолейцин, норлейцин, метионин, саркозин, пролин, триптофан, фенилаланин, этионин могут непосредственно восстанавливаться до аминоспиртов, тогда как другие, к которым относятся глицин, серин, треонин, оксипролин, аспарагиновая, глутаминовая, а-аминоадипиновая кислоты, орнитин, лизин, гистидин, цистеин, цистин, тирозин, аргинин, могут восстанавливаться только в виде эфиров или эфиров их К-ацетилпроизводных [100]. [c.36]

Эфиры М-ацетилпроизводных аминокислот являются более летучими производными, которые анализируют как на полярных, так и неполярных НЖФ. [c.45]

Разделение ,/-аланина (I) производится действием ацилазы на N-ацетилпроизводное (П) в слабощелочном растворе. Этот фермент, содержащийся в свиных почках, катализирует быстрый гидролиз N-ацилпроизводных природных /-аминокислот и практически не действует на соответствующие d-изомеры, не встречающиеся в природе. М-ацетил- ,/-аланин (II) может быть, таким образом, превращен в смесь /-( + )-аланина (П1) и Ы-ацетил-с -аланина (IV). [c.148]

Джонсону с сотрудниками [38] удалось хроматографически проанализировать 33 аминокислоты в виде амиловых эфиров К-ацетилпроизводных, включая 17 протеиновых, применяя низкие отношения стационарной фазы к твердому носителю и осуществляя хроматографическое разделение смеси аминокислот на сдвоенных колонках при различных температурах. Первая колонка длиной 2,4 м содержала 1% Карбовакса 1540, нанесенного на хромосорб W (60 —80 меш). С этой колонки при 125° за 25 мин элюировались производные аланина, валина, изолейцина и лейцина. После этого температуру колонки быстро повышали до 148° для анализа производных глицина, -аланина, пролина, треонина, серина, цистеина, метионина, фенилаланина, оксипролина и аспарагиновой кислоты, которые элюировались из колонки в порядке перечисления (рис. 6). [c.263]

Хербулиз и сотр. [12, 13] показали, что К-ацетилирование эфиров аминокислот позволяет получать с количественным выходом их летучие К-ацетилпроизводные, которые затем могут быть определены методом ГЖХ. [c.10]

Шляпников и Карпейский [24] исследовали эффективность газохроматографического разделения 12 аминокислот в виде эфиров их Н-формил- и К-ацетилпроизводных (рис. 3). Авторами предложена методика получения эфиров К-формиламинокислот. [c.13]

Значительная упругость паров К-фторацетилпроизводных аминокислот, т. е. их большая летучесть по сравнению с соответствующими М-ацетилпроизводными, явилась основой для многочисленных исследований в области газохроматографического разделения всех 20 протеиновых а-аминокислот в виде этих производных. [c.15]

Смесь к-бутиловых и изобутиловых, к-амиловых и изоамиловых эфиров М-ацетилпроизводных аминокислот разделяли [15] при изотермическом режиме в интервале температур от 95 до 148° С на колонках длиной 60—240 см, заполненных 0,5—5% полиэтилен-гликоля (ПЭГ) на хромосорбе У. Смесь к-пропиловых, изопропиловых, к-бутияовых и -амиловых эфиров тринадцати аминокислот разделяли на колонках длиной 120 см, содерн аш,их целит-545 зернения 120—150 меш с одной из следующих НЖФ 10% апиезона М, 10% апиезона Ь, 10% ПЭГА [16]. Наиболее полно и быстро изученные аминокислоты делятся в виде к-пропиловых эфиров К-ацетилпроизводных при 160° С на колонке с 10% апиезона Ь. [c.45]

Оптические антиподы а-аминокислот обычно получают ассиметрическим ферментативным гидролизом ацетилпронз-водных а-аминокислот. После гидролиза в растворе содер-л<атся 1-аминокислота и ее )-ацетилпроизводное. Процессы разделения -аминокислот и их й-ацетилпроизводных многостадийны, связаны с применением различных химических соединений н ионообменной хроматографии. При этом доведение полученных Ь — а- и О — ачмсашаминокарбоновых кислот до требований технических условий требует проведения многократной перекристаллизации полученных изомеров. Выход моноамннокарбоно вых кислот составляет 40% для Ь — а-ала-нина и 21% для О — а-аланина, считая на исходный ОЬ — а-аланин. [c.391]

Изоэлектрические точки моноаминокарбоновых кислот лежат в пределах 5,8< рЛ < 6,3, а их О-ацетилпроизводные обладают кислыми свойствами, что дает возможность в электрическом поле провести направленный миграционный перенос О-ацетилпроиэводных а-аминокислот. [c.391]

Наиболее полное разделение К-ацетилпроизводных аминокислот достигается при применении в качестве стационарной фазы полиэтиленгликоля Карбовакс 1540, причем полнота разделения аминокислот суш ественно зависит от того, в виде каких эфиров они хроматографируются [37, 38]. [c.263]

Джонсону с сотрудниками [38] удалось хроматографически проанализировать 33 аминокислоты в виде амиловых эфиров К-ацетилпроизводных, включая 17 протеиновых, применяя низкие отношения стационарной фазы к твердому носителю и осуществляя хроматографическое разделение смеси аминокислот на сдвоенных колонках при различных температурах. Первая колонка длиной 2,4 м содержала 1% Карбовакса 1540, [c.263]

Предположение основывалось на следующих соображениях 1. Для различных препаратов почки свиньи и в присутствии различных ингибиторов всегда отмечался параллелизм между гидролизом ДФФ, с одной стороны, и гидролизом Ы-ацетилпроизводных ва-лина, лейцина, метионина и аланина — с другой. 2. Оба фермента обладали одинаковой растворимостью, проявляли одинаковый рН-оптимум и одинаково реагировали на воздействие температуры, этанола и ионов металлов. 3. Опыты со смешанным субстратом свидетельствовали о существовании только одного фермента. 4. Оба фермента оказались неразделимыми при электрофорезе на бумаге. На основании этих данных Маунтер предположил, что нормальной функцией ДФФ-азы является гидролиз и синтез производных аминокислот. Этот вывод не совпадает с наблюдениями Коэна и Варринга, приведенными ниже. [c.145]

В данных случаях образуются летучие производные аминокислот, обладающие значительно большей упругостью паров, чем исходные аминокислоты. Причем летучесть возрастает в ряду сложные эфиры аминокислот — сложные эфиры N -ацетилпроизводных —сложные эфиры М-трифторацетильных производных. Большая летучесть N-трифгор-ах рт1 льных производных аминокислот явилась основой для многочисленных исследований в области газохроматографяческого разделения всех 20 протеиновых о , -аминокислот в ввде сложных эфиров их 1 1 -три- торацетильных производных I 1-41. [c.29]

Ацетиламинокислоты являются сильными кислотами. Для их обнаружения в колонке к воде, удерживаемой на силикагеле, добавляли метилоранжевый или другой индикатор. Предпочтительно иметь индикатор, не вымываемый спиртом, который часто содержится в хлороформе. Присутствие спирта в хлороформе является положительным фактором потому, что спирт, будучи полярным веществом, препятствует действию силикагеля как адсорбента, так как здесь силикагель должен быть только носителем. В этих случаях в качестве индикаторов рекомендуется прибавлять 3,б нафталиназо-Н-фениламин, антоцианин, пеонин и пеллар-гонин. Они практически не вымываются из колонки в течение долгого времени. Под влиянием индикатора те части колонки, в которых задерживаются аминокислоты, изменяют свою окраску. Так были разделены 19 различных аминокислот в виде их ацетилпроизводных, причем в качестве растворителей были использованы этилацетат, смеси бутилового спирта с хлороформом и про-пилового спирта с циклогексаном. [c.155]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология