Золи См разделения биологических

Термические градиенты наиболее эффективны при разделении синтетических полимеров. Диапазон молекулярных масс, в котором применялся метод ПФП, составляет от 1000 до 10 , т.е. вплоть до частиц диаметром около 100 мкм. В этом широком диапазоне метод можно использовать для разделения молекул и частиц любой сложности. До сих пор его применяли для разделения биологических и биомедицинских объектов (белки, вирусы, субклеточные единицы, липо-сомы, искусственная кровь и интактные клетки), промышленных продуктов (полярные и водорастворимые полимеры, остатки после ожижения угля, эмульсии и коллоидные силикагели), а также для экологических анализов (водные коллоидные растворы,а также мелкие частицы золы в дыме). [c.244]

Использование золей кремнезема в качестве среды для получения градиента плотности при разделении клеток и других биологических компонентов методом центрифугирования рассматривалось в гл. 4. Кроме того, при проведении биологических исследований кремнезем может применяться в качестве носителя нли подложки культуральной среды. Такую кремнеземную подложку можно стерилизовать предварительной автоклавной обработкой, а при необходимости ее можно изготовлять в очень чистой форме, свободной от других неорганических или органических загрязнений. [c.1089]

В сочетании с радиоактивными измерениями очень эффективной оказалась также бумажная хроматография капля раствора наносится на фильтровальную бумагу и затем вымывается раствором комплексообразователя. Отдельные компоненты исследуемой смеси располагаются на поверхности бумаги изолированными пятнами, которые идентифицируются по растворимости, цветным реакциям и в случае разных радиоактивных веществ — по характеру излучения. Распределение радиоактивных фракций и приблизительное определение их пропорции проще всего определять по радиографическим отпечаткам. Более точно это делают, измеряя активность золы от сжигания вырезанных участков хроматограммы. Этим способом можно разделять следы редкоземельных элементов в нескольких мкг смеси [И 19], следы металлов в биологических тканях и др. Во всех этих работах применялись смеси веществ, меченных соответствующими радиоактивными изотопами. Разделение облегчается комбинацией хроматографии с электролизом бумаги, смоченной комплексообразующим раствором. Например, трехдневный электролиз бумаги, смоченной молочной кислотой или тартратом аммония, дал полное разделение смеси лантанидов в 50 мм раствора с активностью 0,3 каждого из них [1120]. Дальнейшие примеры сочетания бумажной хроматографии с радиографией приведены на стр. 477. [c.435]

Разделение ацетилацетоном. Ацетилацетон реагирует практически со всеми металлами, образуя устойчивые внутрико.мп-лексные соединения, не растворимые в воде, но растворимые полярных органических растворителях [1101]. Предложен метод отделения небольших количеств кобальта от железа экстракцией ацетилацетоната кобальта четыреххлористым углеродо.м из аммиачных растворов, содержащих этилендиаминтетрауксусную кислоту [20]. Вместе с кобальтом в неводный слой переходят также ацетилацетонаты меди, никеля, свинца, кадмия, цинка и марганца. Отделение бериллия от кобальта и многих других элементов основано на том, что из водного раствора с pH 9, содержащего ко.мплексон III и ацетилацетон, хлороформом извлекается только ацетилацетонат бериллия [19]. Экстрагирование ацетилацетоната трехвалентного кобальта описано в работе [225]. Разработана методика определения кобальта, основанная на предварительной экстракции ацетилацетонатов железа и кобальта [512]. Предложен способ выделения следовых количеств кобальта и других элементов из золы биологических материалов экстрагирование.м ацетилацетоно.м [680]. [c.78]

Выделение радионуклидов в ходе радиохимического анализа может быть осуществлено как с применением носителей, так и без них. Разделение смзси изотопов без носителей особенно характерно для физико-химических методов анализа. Метод изотопного разбавления требует введения соответствующих носителей до выпаривания водных проб и непосредственно перед растворением (в пробах атмосферной пыли, золы биологических материа.чов, пищевых продуктов и т. д.). При дробном анализе носители соответствующих изотопов вносятся в отдельные части пробы, из которых затем производится выделение групп элементов, нередко родственных по своим химическим свойствам. Например, Ва, Зг и Са — в виде сульфатов или Ад, Сс1 и Мо — в виде растворимых аммиачных комплексов. Разделение элементов внутри каждой группы может осуществляться различными широко известными способами [116]. Однако в каждом конкретном случае должны разрабатываться свои условия выделения. Это связано с характером макросостава анализируемой пробы, ее радиохимическим составом и необходимостью выделения тех или иных изотопов. Наиримзр, радиохимический анализ многочисленных биологических материалов, пищевых продуктов и почв проводится с целью оиределения Зг . В таких случаях отделение второй аналитической группы, к которой относится стронций, производится либо осаждением карбонатов элементов этой группы, либо их фосфатов, оксалатов или сульфатов [79, 117]. [c.54]

Разделение фаз в анизотропных золях естественно было бы объяснить фиксацией частиц во вторичном потенциальном минимуме. Некоторые авторы, полагающие, что лондонов-ские силы притяжения слишком слабы для фиксации частиц на расстоянии 500 А, пытались найти этому другое объяснение [5, 25], ссылаясь при этом на теорию самопроизвольного энтропийного разделения фаз Онзагера [26]. Однако эта теория объясняет разделение фаз только в случае небольшого различия в их концентрациях. В тактоидных же золях это различие может быть очень большим. Кроме того, эта теория не пригодна для монодисперсных систем (многие латексы, бактерии), а также грубых дисперсий, при разделении которых энтропийный эффект из-за крупности частиц вообще не может иметь существенного значения. С другой стороны, в колониях бактерий расстояние между клетками так велико, что молекулярными силами притяжения, по всей вероятности, нельзя объяснить фиксацию клеток. Большие трудности встречаются при объяснении природы сил притяжения и отталкивания в случае взаимодействия хромосом в процессе митоза, движения митохондрий и других биологических микрообъектов [12]. [c.13]