Вегетативный фонд

Наблюдавшиеся значительные различия в содержании свободных аминокислот вегетативной массы вики позволяли предполагать, что это должно сказаться и на процессах синтеза белков, так как обменный фонд аминокислот является, в первую очередь, субстратом белкового синтеза, обладающим рядом регуляторных функций но отношению к нему. Изучение аминокислотного состава гидролизатов суммарного белка вегетативной массы вики не позволило, однако, отметить каких-либо отклонений. Наши результаты в этом отношении полностью согласуются с данными, полученными ранее на горохе [5]. Следует сказать, что суммарный белок вегетативной массы растений чрезвычайно гетероге-нен по составу индивидуальных белковых компонентов и обладает, вследствие этого, высокой буферностью в отношении изменений общего аминокислотного состава [9]. Вместе с тем, отдельные отклонения в его составе позволяют предполагать наличие изменений в соотношениях групп белков, а наблюдавшиеся изменения содержания большинства свободных аминокислот, возможно, связаны с активностями ряда ферментных комплексов их обмена. [c.94]

До сих пор мы рассматривали скрещивание фагов как обмен генетическим материалом между геномами двух инфицирующих родительских фагов и считали, что смешанное заражение более или менее аналогично скрещиванию двух организмов. Однако при дальнейшем изучении генетической рекомбинации у фагов выяснилось, что скрещивание фагов не сводится к простому обмену генетическим материалом между двумя родительскими фагами. Рекомбинация включает также повторные генетические взаимодействия во внутриклеточной популяции геномов вегетативных фагов, являющихся потомками родительских частиц, заразивших клетку. Учитывая это обстоятельство, Висконти и Дельбрюк в 1953 г. сформулировали теорию генетических рекомбинаций у фагов, которая позволила количественно объяснить частоты рекомбинаций, полученные в разных экспериментальных условиях. Согласно этой теории, вегетативные фаговые геномы составляют внутриклеточный вегетативный фонд, в котором между ними происходят повторные попарные скрещивания. В результате каждого такого скрещивания происходит обмен генетическим материалом за счет одного или нескольких перекрестов между скрещивающимися геномами. [c.292]

По теории Висконти — Дельбрюка доля фагов-потомков, рекомбинантных по двум генетическим маркерам, участвующим в скрещивании, зависит, следовательно, не только от сцепления рассматриваемых мутантных генов, но и от числа актов скрещивания, прошедших в вегетативном фонде к моменту завершения внутриклеточного процесса роста в результате лизиса зараженной бактерии. Следовательно, сцепление генетических локусов нельзя прямо приравнять к частоте рекомбинаций. Поэтому истинное сцепление двух генетических локусов х и у определяется как среднее число перекрестов, происходящих в точках, которые расположены между этими локусами, при каждом скрещивании двух вегетативных фагов, находящихся в фонде. Чем больше расстояние между локусами в хромосоме фага, тем больше среднее число таких перекрестов на одно скрещивание. Однако наблюдаемая рекомбинция генетических признаков произойдет лишь в том случае, если между генами, определяющими эти признаки, возникнет нечетное число перекрестов. При четном числе перекрестов рекомбинации не наблюдается, так как сохраняется приходное расположение двух генов. Следующая схема иллюстрирует отсутствие рекомбинации в случае двух перекрестов [c.292]

На основании анализа результатов многочисленных скрещиваний у Т-четных фагов с использованием различных мутаций и учитывая уравнение (ХП.2), Висконти и Дельбрюк заключили, что к концу нормального латентного периода роста Т-четных фагов т = 5, т. е. в вегетативном фонде происходит примерно пять циклов скрещивания. Поскольку единица карты была определена как расстояние, разделяющее два локуса. V и у, для которых в стандартном скрещивании (т = 5) рекомбинанты появляются с частотой 1% Н у = 0,01), то из уравнений (XII. 1) и (ХП.2) следует, что единица карты соответствует истинному сцеплению в [c.293]

Если элементарное мутационное событие представляет собой [включение неправильного нуклеотида в определенный участок синтезируе-мой полинуклеотидной реплики и если ДНК вегетативного фага реплицируется в соответствии с полуконсервативным механизмом Уотсона и Крика, то мы можем предсказать такую особенность вновь рождаюш егося мутантного генома, которую без знания молекулярной основы процесса мутирования вообще невозможно было бы предвидеть. Предположим, что во время синтеза цепи-реплики происходит одна из редких ошибок копирования, например остаток тимина в родительской цепи незаконно спаривается с гуанином, а не с аденином. В результате этого мутагенного акта репликации возникает двойная спираль с исходной ин-формацией в старой (родительской) цепи и мутантной информацией в цепи, синтезированной заново (фиг. 160). При следующем цикле репликации комплементарные нити этой мутантной молекулы вновь разъединяются и каждая из них, функционируя как матрица, синтезирует новую комплементарную цепь. В результате появляется одна двойная спираль ДНК, несущая мутантную информацию в обеих цепях, и одна немутантная двойная спираль. Исходная мутантная молекула ДНК представляет собой, следовательно, гетеродуплексную гетерозиготу, которая несет в одном участке два аллеля — мутантный и немутантный, по которым при следующем цикле репликации происходит расщепление. Можно ожидать, что во время внутриклеточного размножения фага некоторые молекулы ДНК фага с мутацией, возникшей в результате ошибки копирования при последней репликации, будут извлечены из вегетативного фонда фага и войдут в состав зрелых инфекционных частиц. Эти частицы и будут мутационными гетерозиготами. [c.325]

В связи с этим представляло интерес исследование отдельных азотистых компонентов аминокислот обменного фонда и белков. Результаты проведенных исследований даны в табл. 1—3. В вегетативной массе яровой вики нами было обнаружено в свободном состоянии 19 аминокислот, амиды, а также пять пеидеп-тифицированпых компонентов (предположительно аминокислот). [c.90]

Таким образом, вырисовывалась нримерно следующая картина механизма трансдукции. При размножении фага Р22 в чувствительных бактериях небольшой фрагмент бактериальной ДНК проникает в головку дочерней частицы фага. (Это происходит, когда молекулы фаговой ДНК извлекаются из фонда вегетативного фага при созревании инфекционных фаговых частиц). Когда такая необычная фаговая частица, освободившись из клетки-донора, заражает бактерию-реципиент, бактериальная ДНК, безбилетный пассажир , инъецируется в клетку, как если бы это была ДНК фага. Если не происходит литической реакции и бактерия выживает, между трансдуцированной бактериальной ДНК и гомологичным [c.354]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология