дидезокси

Дидезокси-1,6-дииодид-2,4 3,5-диметилен-0-сорбит 85,220. [c.97]

Нами разработан перспективный путь к соединениям такого типа, заключаюпшйся в реакции Дильса-Лльдера левоглюко-зенона (1, б-ангидро-3,4-дидезокси-р-0-пиранозен-2-она) с 6-метилгепта-2,4-диеном. [c.15]

Микозамин, 3,6-дидезокси-3-амино-г/-манноза имеет структуру кресла [c.691]

Комплекс (2 1) дезоксигуанозин — актиномицин был получен в кристаллическом виде, и его строение исследовано методом рентгеноструктурного анализа . Оказалось, что феноксазиновое кольцо расположено в центре комплекса, одна пептидная петля находится над ним, а другая — под ним (на рисунке справа). Строение пептидной цепи наиболее удобно можно проследить для верхней петли. В дидезокси-гуанозиновом комплексе сохраняется та же симметрия второго порядка, что и в самом актиномицине. Фенаксозиновое кольцо удерживается между плоскими гуанозиновыми кольцами за счет сил Ван-дер-Ваальса. Обратите внимание, что две аминогруппы гуаниновых колец образуют прочные водородные связи с карбонильными группами остатков треонина. Наряду с ними имеются также более слабые, нелинейные водородные связи между атомами N-3 гуанинов и NH-группами тех же остатков треонина. Симметричная пара водородных связей соединяет две карбонильные и NH-группы D-валиновых остатков в пептидных петлях. [c.210]

L-Рамноза и L-фукоза - структурные фрагменты гликозидов и полисахаридов наземных растений, водорослей и грибов. L-фукоза содержится также в углеводных детерминантах групповых в-в крови и ряда др. биологически важных гликопротеинов и гликолипидов животных. 3,6-Дидезокси-гексозы найдены в составе липополисахаридов грамотрицательных бактерий, нек-рые более редкие Д.- в составе антибиотиков. Специфич. углеводный компонент ДНК-2-дезок- H-D-рибоза (III). [c.15]

Если PLP является специфичным кофактором, предназначенным для реакций с аминогруппами субстратов, то не может ли пиридоксаминфосфат (РМР) функционировать в роли кофермента в реакциях превращения карбонильных соединений Первый пример подобной функции РМР был обнаружен в реакции образования 3,6-дидезокси-гексоз, необходимых для синтеза антигенов поверхности бактериальных клеток [46] (рис. 5-8). Глюкоза (в форме цитидиндифосфатглюкозы, или DP-глюкозы) сначала превращается в 4-кето-б-дезокси-СОР-глюкозу. Ее превращение в 3,6-дидезокси-СОР-глюкозу требует пиридоксаминфосфат наряду с восстанавливающим агентом (NADH или NADPH) [c.222]

Химическое наименование. [ЗЙ-(ЗД, 45 , 58, бД, 7/ , 9/ , 11/ , 12/ , 13S, 14/ ) ]-4-[ (2,6-дидезокси-3-С-метил-3-0-метил-а-ь-ри-бо-гексопиранозил) оксил]-14-этил-7,12,13-тригидрокси - 3,5,7,9,11, 13-гексаметил-6-[ [3,4,6-тридезокси-3- (диметилам1ино) - -п-ксило- [c.136]

Применение азидов в качестве нуклеофилов для прямого замещения сульфонилоксигрупп и раскрытия эпоксидного цикла хорошо иллюстрируется синтезом 2,3-диамино-2,3-дидезокси-Л-глю-козы из метил-2,3-ангидро-4,6-0-бензилиден-а-Л-аллогшранозида [c.182]

Способы введения двойной связи в другие положения пираноз или фураноз приведены на примере синтеза метил-4,6-0-бензили-ден-2,3-дидезокси-а-0-эригро-гексен-2-озида (222) (схема 58). Одним из наиболее широко применяемых способов введения двойной связи в молекулу углеводов является метод Типсона — Коэна [171], в котором а,р-дитозилат нагревают с цинковой пылью и иодидом натрия в диметилформамиде. [c.198]

Термин гликопротеин часто используют для обозначения любого соединения, содержащего углеводную и белковую части, в том числе для гликопротеинов, протеогликанов и углевод-белко-вых комплексов. Гликопротеины содержат белковую цепь, состоящую из 300 и более остатков природных -а-аминокислот. С основной белковой цепью ковалентно связаны боковые углеводные Цепи, являющиеся остатками гетероолигосахаридов. Они обычно разветвлены (см. рис. 26.3.2) и могут содержать нейтральные моносахариды (Л-глюкозу, Л-галактозу, Л-маннозу, -фукозу), сновные (2-амино-2-дезокси-Л-глюкозу, 2-амино-2-дезокси-Л-га-актозу) и кислые (б-амино-З.б-дидезокси-Л-глицеро- -гала/сго- [c.215]

М 13-векторов, содержащих перекрывающиеся субклонированные последовательности, значительно увеличивается. Чтобы решить эту задачу, были разработаны методы секвенирования двухцепочечных плазмидных ДНК, не требующие субклонирования. Плазмидную ДНК, содержащую нужную вставку, вьщеляют и отжигают с синтетическим олигонуклеотидным праймером, который гибридизуется с последовательностью в одной из цепей векторной ДНК, находящейся вблизи вставки. Затем осуществляют дидезокси-секвенирование, позволяющее идентифицировать первые 250-350 нуклеотидов вставки. Исходя из этих данных синтезируют второй олигонуклеотидный праймер, комплементарный сегменту вставки, отстоящему примерно на 300 нуклеотидов от места связывания первого праймера, и секвенируют следующие 250-350 нуклеотидов. Аналогичным образом синтезируют третий праймер и определяют нуклеотидную последовательность следующих 250—350 нуклеотидов (рис. 5.17). Эту процедуру, называемую праймер-опосредованной прогулкой, продолжают до тех пор, пока не секвенируют весь фрагмент. Аналогичным образом секвенируют вторую цепь, начиная с праймера, который гибридизуется с этой цепью вблизи вставки. [c.93]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология