Аргинин адсорбция

Адсорбционное равновесие при этом достигается быстро и не сопровождается гидролизом белка шерсти или какими-либо его структурными изменениями. Существование такого взаимодействия подтверждается тем, что никакого разделения не наблюдается, если адсорбцию проводить на оптически-неактивном синтетическом полиамидном волокне (найлон). Кроме того, показано, что при взаимодействии рацемической миндальной кислоты с /-аргинином или /-лизином, главными аминокислотами белка шерсти, образующаяся соль содержит в большем количестве (- [-)-миндаль ную кислоту (до 20—30%). [c.179]

Глутаминовая кислота, например, кристаллизуется прямо из концентрированного гидролизата, насыщенного хлористым водородом, цистин и тирозин отделяют благодаря их плохой растворимости в воде. Селективное отделение ароматических аминокислот удается выполнить с помощью адсорбции на активированном угле. Полученную при гидролизе смесь аминокислот лучше всего разделить хроматографически. Выделению отдельных компонентов предшествует обычно разделение на кислые, основные и нейтральные группы аминокислот, при этом большое значение имеют электрофорез и специфические иоиообменники. Раннее распространенные методы разделения, такие, как фракционная перегонка эфиров (по Фишеру), экстракция моноаминокарбоновых кислот н-бутиловым или амиловым спиртом (по Дакину), осаждение гексоновых оснований лизина, аргинина и гистидина фосфорновольфрамовой кислотой или флавиановой кислотой, теперь имеют только второстепенное значение. [c.39]

Аминокислоты белковых гидролизатов разделяют на колонке 0,9x150 см в две стадии. Вначале 0,2 н. буферным раствором с pH 3,25 элюируют кислые и часть нейтральных аминокислот, а после выхода глицина (250 мл 8 ч 20 мин) насос переключают на подачу второго 0,2 н. буферного раствора с pH 4,25, которым элюируют остальные нейтральные и ароматические аминокислоты (тирозин и фенилаланин). В соответствии с константами диссоциации тирозин и фенилаланин должны элюироваться в меньших объемах их задержка объясняется адсорбцией на матрице ионита. Основные аминокислоты элюируются с большой задержкой, ускорить их выход можно лишь существенным увеличением концентрации буфера. Однако это в свою очередь вызывает дрейф нулевой линии, изменение объема смолы и ряд других отрицательных последствий. Поэтому элюирование заканчивают, а оставшиеся аминокислоты вымывают разбавленным раствором гидроокиси натрия. Вторую половину образца хроматографируют на короткой колонке (15 см) в 0,38 н. буфере с pH 5,28. При этом вначале получают суммарный пик кислых и нейтральных аминокислот, а затем в области между триптофаном и аргинином элюируют основные аминокислоты. При скорости подачи 30 мл/ч и 50 °С общее время анализа составляет 21 ч 30 мин (16 ч 30 мин и 5 ч). Хроматограмма стандартной смеси аминокислот приведена на рис. 32.12. [c.343]

Основы метода. Аргинин очищают от гуанидил-уксусной кислоты и других веществ предварительной адсорбцией на пермутите (обмен катионов). [c.53]

Вместе с тем многие авторы получили в своих исследованиях yбeдvI-тельные данные, говорящие о положительном влиянии глинистых минералов па деятельность микроорганизмов. Так, Звягинцев и Великанов (1968) нашли, что основные аминокислоты (аргинин, гистидин, лйзин), адсорбированные минералами монтмориллонитовой группы (бентонитом, гумбрином, нонтронитом), оставались вполне доступными микроорганизмам, а в ряде случаев адсорбенты даже стимулировали процесс. Авторы указывают па разнообразие явлений, зависящих от природы аминокислот и минералов, от адсорбции микробных клеток или субстрата. К аналогичным выводам пришел Филип (1968). [c.148]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология