Хенкса раствор

Предложенный механизм действия нефтяной фазы в пластичных породах, как видно из главы VII, приложим и к смазочным добавкам, являющимся еще более эффективным гидрофобизирующим и смазочным средствам. Эмульгированная нефть и смазочные добавки улучшают условия работы вооружения и опор долот, увеличивая их проходку и долговечность. Большое значение имеет при этом снижение контактных температур, вызванное уменьшением трения. Улучшение смазочных свойств растворов сказывается на показателях бурения и вследствие уменьшения крутящего момента на трубах, доходящего, по данным Р. Хенкса,до 40 %, а также уменьшения гидравлических сопротивлений, позволяющего при той же производительности насосов увеличить скорость циркуляции [102]. Последнее обстоятельство обусловливает повышение производительности турбобуров и долот. В этом же направлении действует обнаруженная А. X. Мирзаджанзаде ранняя турбулизация эмульсионных растворов, усиливающая очистку забоя. [c.374]

Приготовление клеточной взвеси. Ткань, доставленную в лабораторию, отмывают от крови, жировых компонентов, клеточного детрита и других примесей в растворе Хенкса или фосфатного буфера с антибиотиками, измельчают ножницами и продолжают отмывать до полной прозрачности раствора. Затем ее заливают трипсином (на 100 г ткани — 200 — 300 мл раствора трипсина) и диспергируют при помощи магнитной мешалки или пипетирова-нием. Надосадочную жидкость, содержащую трипсинизированные клетки, сливают и помещают в холодильник при 4 °С. [c.260]

Пробы для исследования нужно брать, соблюдая правила асептики, чтобы предотвратить внесение посторонней микрофлоры и не инфицировать себя. Сохраняют пробы во влажном состоянии на холоде и пересылают в контейнерах с сухим льдом. Если пробы не использованы сразу, их следует заморозить, желательно при -70 °С. Такие материалы, как мазки из носоглотки и соскобы с пораженных участков кожи, погружают в стабилизирующую среду (нейтральный ИХН с белком и антибиотиками). Можно использовать также питательные среды или раствор Хенкса с добавлением 10 % инактивированной коровьей сыворотки и антибиотиков (для подавления сопутствующей микрофлоры). [c.262]

Культуры клеток. Для выделения вируса отбирают пробирки со сформированным монослоем, сливают питательную среду и промывают клетки несколько раз раствором Хенкса для удаления сы- [c.262]

При заболеваниях, вызванных парамиксовирусами, респираторно-синцитиальным, корона-, peo- и аденовирусами, для диагностики используют смывы с носоглотки и отделяемое слизистой оболочки задней стенки глотки, которое снимают несколькими ватными тампонами. Из одного тампона делают мазки-отпечатки, а остальные погружают в 2 — 5 мл раствора Хенкса. Для повышения жизнеспособности парамиксовирусов к раствору добавляют 0,5 % желатина или бычьего альбумина. [c.281]

Из исследуемого материала в асептических условиях готовят 10%-ю суспензию в ИХН, растворе Хенкса (pH 7,4 —7,6) или в питательных средах при заражении клеточных культур. Добавляют 0,75 — 2,0 % бычьего альбумина или 10 — 25 % нормальной кроличьей сыворотки и центрифугируют при 4 °С в течение 20 мин при 1500 — 2000 об/мин. [c.291]

Фекалии (4 — 6 г) собирают с интервалом 1 — 2 дня. Готовят 10%-ю суспензию в растворе Хенкса, встряхивают и осветляют центрифугированием в течение 30 мин при 3000—10 000 об/мин. Надосадочную жидкость обрабатывают эфиром (добавляют равный объем диэтилового эфира, смесь оставляют в холодильнике под ватно-марлевой пробкой на 12—16 ч) и антибиотиками. [c.296]

Ректальные тампоны помещают в пробирку с 1 — 2 мл раствора Хенкса или Эрла, споласкивают, отжимают. Материал центрифугируют и обрабатывают эфиром и антибиотиками. [c.296]

Глоточный смыв в объеме 20 мл получают при 2-кратном (с интервалом 3 мин) полоскании горла стерильным солевым раствором или дистиллированной водой. Тампонами протирают заднюю стенку глотки, миндалины и небные дужки и погружают в пробирку с 1 — 2 мл раствора Хенкса. Материал центрифугируют и обрабатывают эфиром и антибиотиками. [c.296]

Пробы секционного материала растирают в стерильной ступке, готовят 20%-ю суспензию в растворе Хенкса, центрифугируют 5—10 мин при 2000 об/мин. [c.296]

Для ЭМ и вирусологического исследования готовят 10 — 20%-ю суспензию фекалий на растворе Хенкса. Суспензию центрифугируют 30 мин при 3000 об/мин для удаления крупных частиц, надосадочную жидкость переносят в стерильный флакон, добавляют пенициллин (1000 ЕД/мл) и стрептомицин (500 ЕД/мл) и выдерживают 10 — 12 ч при 4°С. [c.300]

Модифицированный метод Хенкса. После приготовления мазка и фиксации его в пламени горелки на него в избытке наливают раствор карболового фуксина и выдерживают 5 мин. Затем краску сливают, заливают мазок 50%-м этанолом и сразу промывают мазок водой. Для обесцвечивания фона на мазок наносят 1 %-ю серную кислоту, после чего тщательно промывают мазок водой. Для контрастирования фона мазок докрашивают 2,5%-м метиленовым синим (в 95%-м этаноле) в течение ] мин. No ardia spp. и другие кислотоустойчивые грибы окрашиваются в бордово-красный цвет, фон — голубой. [c.315]

После застывания агара пробирки помещают на одни сутки в термостат для проверки на стерильность и получения конденсационной жидкости. При недостатке конденсата можно асептически добавить около 1 мл одного из растворов (ИХН, 1%-й пептон, раствор Хенкса, гидро-лизат лактальбумина). Хранят среду в холодильнике. Материал засевают в конденсационную жидкость. [c.346]

Для культивирования вируса классической чумы птиц FPV использовали клетки фибробластов эмбриона кур 8—11-дневного возраста. Яйца мыли в проточной воде с мылом, затем скорлупу несколько раз обрабатывали спиртом, обжигали тупой конец яйца и обеззараживали йодом. Скорлупу над воздушным пространством срезали ножницами. Извлекали зародыш, удаляли глаза, клюв, лапки и крылья, а тело промывали раствором Хенкса. Суспеи 1гю клеток готовили путем механического измельчения зародыша с последующей трипсинизацией ткани. Готовили взвесь клеток фибробластов из расчета 300 ООО клеток на 1 мл среды и заливали по 5 мл в камеры. В качестве питательной среды использовали среду 199 с добавлением 10% сыворотки крупного рогатого скота. [c.39]

Среда ГКИ состоит из раствора Хенкса с добавлением 40% стерильной бычьей сыворотки, предварительно инактивированной при температуре 56 °С в течение 30 мин. Среду доводят с помощью бикарбоната натрия до pH 7,2—7,4 и разливают в пробирки по 2 мл. Посевы инкубируют при 37° С в течение 16—18 ч, после чего из выросшей культуры готовят мазки для выявления капсульных палочек. [c.381]

При обработке клеток в суспензии их снимают с подложки смесью растворов трипсина и версена, центрифугированием отделяют от снимающей жидкости и промывают раствором Хенкса или средой без сыворотки. Суспензию клеток или суспензионную культуру помещают в силиконизированный стеклянный сосуд. В среду добавляют мутаген в определенной концентрации (так как снятые с подложки клетки более чувствительны к повреждающему действию мутагена, его концентрация может быть меньше, чем та, которая использовалась для обработки клеток в монослое, однако в любом случае выживаемость клеток после обработки мутагеном является критерием для выбора концентрации мутагена). Клетки помещают в термостат, обработка производится при мягком покачивании или встряхивании суспензии клеток. Такой способ позволяет обработать большое число клеток, не загрязняя при этом мутагеном чашки или флаконы, большие количества клеток особеяно нужны в тех случаях, когда определяют время, необходимое для оптимального проявления исследуемого признака. [c.152]

В нижнее отделение камеры Бойдена вносят раствор Хенкса (или иную среду, в которой ресуспензированы клетки) или хемоаттрактант (табл. 19). Фильтры, смоченные раствором Хенкса, помещают в камеру Бойдена и собирают ее. В верхнее отделение камеры вносят клеточную суспензию в присутствии контрольной среды или изучаемых факторов. Камеру инкубируют 30 мин при 37 °С в присутствии 5 %-ного СО . Фильтры фиксируют, окрашивают и подсчитывают процент мигрировавших (прошедших через фильтр) нейтрофилов. [c.92]

Смочен раствором Хенкса [c.93]

Раствор Хенкса или контрольная среда [c.93]

Спонтанная миграция Хемотаксис Хемокинез Клетки больного Хемоаттрактант Раствор Хенкса или контрольная среда Клетки больного Клетки больного + хемоаттрактант Клетки здорового Раствор Хенкса или контрольная среда Хемоаттрактант [c.93]

Из исследуемого материала в асептических условиях готовят 10%-ю суспензию в ИХН, растворе Хенкса (pH 7,4—7,6) или в питательных средах при заражении клеточных культур. Добавляют [c.291]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология